tinjauan pustaka.docx

5/19/2018 Tinjauan Pustaka.docx

1/32

4

II. Tinjauan Pustaka

2.1. Biologi Chaetoceros sp

2.1.1. Morfologi dan Klasifikasi

Menurut Herlinah (2010), akan menjelaskan mengnai klasifikasi dan

morfologi tentang Chaetoceros sp. Secara biologi Chaetoceros termasuk kelas

diatom yang hidup pada lingkungan perairan laut, dimana pada bagian luamya

dibungkus oleh cangkang dari silikat dengan bentuk yang geometric beraturan.

Jenis ini telah banyak diidentifikasi dan diklasifikasi berdasarkan ukuran, bentuk

dan struktur silikat pada cangkangnya. C. gracilis merupakan fitoplankton sel

tunggal dan dapat membentuk rantai menggunakan duri yang saling

berhubungan dari sel yang berdekatan. Tubuh utama berbehtuk selinder pipih.

Jika dilihat dari samping mikroalgae ini berbentuk persegi dengan panjang 12 -

14 m dan Iebar 15 - 17 m, dengan setae yang menonjol. Selnya dapat

membentuk rantai sebanyak 10 - 20 sel dan mencapai panjang 200 m. Bentuk

dari Chaetoceros dapat dilihat pada Gambar 1.

Gambar 1 . Morfologi Chaetoceros sp

Sumber : Herlinah (2010)


2/32

5

Klasifikasi mikroalga Chaetoceros menurut Botes (2003) ayng

dikemukakan Herlinah (2010), sebagai berikut:

Phylum : Chrisophyta

Klass : Bacillariophyceae

Ordo : Biddulphiales

Sub ordo : Biddulphineae

Famili : Chaetocerotaceae

Genus : Chaetoceros

Species : C. gracillis

Ukuran beberapa jenis Chaetoceros bervariasi yaitu C. Ceratosporum

berukuran 5 7 m dengan panjang setae 20 m, sedangkan C. gracillis

berukuran 6 -12 m, volume sel yaitu 30 50 m ukuran ini masih dapat

diterima larva udang yaitu sekitar 330 m.

2.1.2. Siklus Hidup

Siklus hidup Chaetoceros yaitu perkembangan secara vegetatif, seksual,

dan restingspora. Secara normal Chatoceros berkembang melalui pembelahan

sel secara vegetatif, selama pembelahan sel bagian epiteka dan hypoteka

masing-masing akan membentuk sel baru dengan ukuran yang lebih kecil

(Herlinah, 2010). Untuk siklus hidupnya dapat dilihat pada Gambar 2.


3/32

6

Gambar 2. Siklus Hidup Chaetoceros sp


2.1.3. Pertumbuhan

Menurut Herlinah (2010), akan menjelaskan tentang pertumbuhan

Chaetoceros sp. Komposisi kimia fitoplankton merupakan aspek penting dalam

akuakultur terutama pada kualitas nutriennya karena berpengaruh terhadap

perfoma dan produksi kultivan. Komposisi kimia mikroalga sangat dipengaruhi

oleh pase pertumbuhan, intensitas cahaya, suhu, ketersediaan nutrisi dan

kepadatan sel.

Pertumbuhan Chaetoceros meliputi beberapa fase pertumbuhan, yaitu

fase Lag dimana terjadi sedikit peningkatan jumah sel dalam waktu yang relatif

lama. Hal tersebut disebabkan oleh adaptasi perubahan media kultur.

Selanjutnya pada fase Eksponensia, terjadi peningkatan jumlah sel secara cepat.

Kemudian fase penurunan pertumbuhan, dimana pembelahan sel terjadi secara

lambat karena penurunan faktor pembatas seperti nutrien, cahaya, pH, karbon

dioksida dan faktor fisika kimia lainnya. Fase pertumbuhan dapat dilihat pada

Gambar 3.


4/32

7

Gambar 3. Fase Pertumbuhan Mikroalgae


Sedangkan pada fase stasioner penurunan faktor pembatas, maka laju

pertumbuhan berada dalam keseimbangan sehingga kepadatan sel relatif

konstan. Setelah itu mengalami fase kematian karena penurunan kualitas air dan

nutrien pada batas yang dapat mendukung pertumbuhan selanjutnya kepadatan

sel menurun dengan cepat atau terjadi kematian.

Algae pada fase eksponensial kemungkinan memiliki komposisi kimia

yang berbeda dibandingkan pada fase stasioner. Selain itu perubahan komposisi

media kultur dapat merubah pola asam lemak pada algae. Menurut Brown

(2002), beberapa faktor yang berpengaruh terhadap pemanfaatan mikroalga

yaitu ukuran dan bentuk, kecernaan (komposisi dan struktur dinding sel),

komposisi kimia (nutrien, enzim, dan toksin). Selanjutnya dijelaskan bahwa pada

fase akhir logaritma Chaetocerosmengandung protein (30 40 %), lemak (10

20 %) dan karbohidrat (5 15 %). Sedangkan pada fase stasioner, komposisi

nutrisi dapat berubah karena kurangnya nitrat pada media kultur sehingga

karbohidrat meningkat dan protein cenderung turun.


5/32

8

2.1.4. Komposisi Kimia

Kandungan nutrien C. gracilis yaitu vitamin C (1,6 %), chlorofil a (1,04

%), protein (27,68 %), karbohidrat (23,2 %), lemak (9,27 %), lemak (9,27 %),

EPA (5,0 %) dan DHA (0,5 %) dan DHA (0,5 %). Sedangkan C. muelleri

didapatkan protein (35 %), karbohidrat (20 %), dan kadar abu (15 %) (Herlinah,

2010).

2.2. Persyaratan Budidaya Chaetoceros sp

Menurut Balai Budidaya Laut Lampung (2002), akan menjelaskan tentang

tentang persyaratan kultur Chaetoceros sp yang meliputi faktor Teknis dan Non

Teknis. Faktor Teknis tersebut diantaranya adalah Air dan Media Kultur ( a.

Unsur Makro : Nitrogen, Fosfor, Besi, Kalium, Magnesium, Sulfur, Kalsium ; b.

Unsur Trace Element / Mikro Nutrient ; c. Komposisi Media Pupuk dan d. Faktor-

faktor yang berpengaruh terhadap pertumbuhan fitoplankton )

2.2.1. Faktor Teknis

A. Air

Pemilihan lokasi untuk budidaya fitoplankton harus mempertimbangkan

kemudahan dalam pengambilan air laut dengan perlakuan yang mudah dan

ekonomis serta memenuhi persyaratan kualitas dan kuantitas yang terkait

dengan aspek biologi, teknik, ekonomis dan higienis. Ketersediaan air tawarpun

merupakan kebutuhan pokok karena pada saat-saat tertentu seperti pada musim

kemarau terjadi peningkatan kadar garam (salinitas) pada media kultur dengan

demikian dapat digunakan untuk menurunkan salinitas. Disamping digunakan

untuk keperluan sehari-hari, seperti membersihkan peralatan kerja dan lain-lain.

Secara visual sumber air laut yang berkualitas terlihat jernih, bersih, tidak

berbau, tidak berwarna dan tidak membawa endapan baik suspensi maupun

emulsi. Namun kejernihan air laut tersebut bukanlah jaminan bahwa air tersebut


6/32

9

berkualitas, karena sumber air laut yang baik haruslah memenuhi persyaratan

secara fisika, kimia, dan biologi. Berikut ini disajikan beberapa parameter kualitas

air laut yang perlu diperhatikan dalam pembudidayaan pakan hidup meliputi

suhu, salinitas, kesadahan, pH, DO, phosphate, amoniak, kecerahan, NO2, dan

NO3. Standart mutu air untuk budidaya fitoplankton pada Tabel 1.

Tabel 1. Standar Mutu Air Laut Budidaya Fitoplankton

No Parameter Kisaran Nilai Satuan

1. Suhu 2832 C

2. Salinitas 3032 /oo

3. pH 7,88,3 -

4. DO >5 Ppm

5. Kesadahan 80120 Ppm

6. Phosphate


7/32

10

ketersediaan unsur makro nutrien dan mikro nutrien dalam media tumbuhnya

mutlak diperlukan.

Fungsi utama bahan makanan (nutrien) adalah sebagai sumber energi,

bahan pembangun sel dan sebagai aseptor elektrondidalam reaksi bioenergetik

(reaksi yang menghasilkan energi). Karena sesuai fungsi fisiologis dari masing-

masing komponen nutrien (bahan makanan) yang terdapat di dalam media harus

terdiri dari : air, sumber energi, sumber karbon, sumber aseptor elektron, sumber

mineral dan faktor pertumbuhan (vitamin atau asam amino).

a. Unsur Makro Nutrien

Nitrogen(N)

Unsur N merupakan komponen utama dari protein sel yang

merupakan bagian dasar kehidupan organisme. Nitrogen yang

dibutuhkan untuk media kultur terdiri dari beberapa substansi berikut :

KNO3, NaNO3, NH4Cl, (NH2)2CO(urea) dan lain-lain.

Fosfor(P)

Unsur P sangat dibutuhkan dalam proses protoplasma dan inti sel.

Fosfor juga merupakan bahan dasar pembentukan asam nukleat,

fosfolifida, enzim dan vitamin. Dengan demikian fosfor sangat berperan

nyata dalam semua aktifitas kehidupan fitoplankton. Fosfor yang

dibutuhkan untuk kultur fitoplankton dapat diperoleh dari : KH2PO4,

NaH2PO, Ca3PO4(TSP) dan lain-lain. Menurut Dwidjoseputro (1986), P

dibutuhkan untuk pembentukan pospolipida dan nukleoprotein.

Posporilasi dalam fotosintesis juga banyak melibatkan Puntuk senyawa

berenergi tinggi.


8/32

11

Besi (Fe)

Unsur Fe berperan penting dalam pembentukan dalam

pembentukan kloroplas dan sebagai komponen esensial dalam proses

oksidasi. Unsur besi juga merupakan bahan dasar sitrokrom dan heme

atau nonheme protein, kofaktor untuk beberapa enzim. Pada kultur alga

komponen besi dapat diperoleh dari : FeCl3, FeSO4, dan FeCaH5O7 .

Kalium (K)

Unsur K berperan dalam pembentukan protoplasma juga berperan

penting dalam kegiatan metabolisme dan aktifitas lainnya (Kurniastuty

dan Julinasari, 1995). Sumber Kdapat diperoleh dari : KCl, KNO3, dan

KH2PO4. Unsur K juga dapat dijumpai secara melimpah dalam air laut.

Dengan demikian penggunaan Ksangat dibutuhkan dalam media kultur

jika akan digunakan air laut buatan.

Magnesium (Mg)

Unsur magnesium merupakan kation sel yang utama dan bahan

dasar klorofil. Kation sel yang utama, kofaktor organik untuk banyak

reaksi enzimatik berfungsi dalam penyatuan substart dan enzim. Menurut

Chen J dan H.P.C. shetty (1991), kandungan Mg pada air laut sangat tingi

yaitu 1200.

Sulfur (S)

Sulfur juga merupakan salah satu elemen penting yang dibutuhkan

dalam pembentukan protein. Sulfur untuk media alga dapat diperoleh dari

NH4SO4(ZA), CUSO4dan lain-lain.


9/32

12

Kalsium (Ca)

Unsur Ca berperan dalam penyelarasan dan pengaturan aktifitas

protoplasma dan kandungan pH di dalam sel. Sumber Ca antara lain :

CaCl2, dan Ca (NO3)2.

b. Unsur Trace Element (Mikro Nutrien)

Seperti halnya pada tanaman tingkat tinggi, untuk kebutuhan hidupnya

fitoplankton juga memerlukan unsur hara mikro. Walaupun yang dibutuhkan

dalam jumlah sedikit namun keberadaannya sangat mempengaruhi pertumbuhan

dan perkembangan fitoplankton. Beberapa Unsur hara mikro tersebut dalam

penggunaannya pada media kultur dapat dilihat pada Tabel 2.

Tabel 2. Jenis dan Sumber Unsur Hara Mikro

No Trace Element Sumber Material

1. Boron H3BO3

2. Mangan MnCl2

3. Seng ZnCl2

4. Kobalt C0Cl2

5. Molibdenum (NH4) 6M07O24. 4H2O

6. Tembaga CuSO4. 5H2O

Sumber : Balai Budidaya Air Lampung (2002)

c. Komposisi Media Pupuk

Berbagai kegiatan baik yang terjadi di dalam sel ataupun yang terjadi

pada keseluruhan hidupnya, memerlukan sumber energi dan elemen atau unsur

yang menjadi motor segala dari kegiatan kehidupan. Semua sumber untuk

kegiatan tersebut yang datang dari laur serta sangat berpengaruh untuk berbagai

kegiatan, berbentuk senyawa organik ataupun senyawa anorganik, yaitu


10/32

13

senyawa yang tersusun dari unsur makro atau pun unsur mikro .Tidak semua

bahan yang telah tersedia secara langsung dapat diserap dan dipergunakan oleh

sel. Beberapa persyaratan sangat diperlukan antara lain :

1. Bentuk dan sifat bahan

2. Konsentrasi bahan

3. Enzim

4. Lingkungan yang menyertai

Media dan substrat tempat tumbuh dan berkembangnya alga, tersusun

oleh komponen-komponen kimia yang diramu atau dikombinasikan sedemikian

rupa dalam bentuk formula media sehingga akan menghasilkan pertumbuhan

dan produksi sel yang tinggi. Media tersusun oleh unsur-unsur makro dan mikro

yang sesuai dengan kandungan usnur-unsur tersebut di dalam sel mikroba.

Karenanya antara amsing-masing jenis fitoplankton berbeda pula medianya,

mengingat bentuk dan sifat kehidupan dari masing-masing fitoplankton tersebut

berbeda.

d. Faktor Lingkungan yang Berpengaruh Terhadap Pertubuhan Fitoplankton

Pertumbuhan suatu jenis fitoplankton sangat erat kaitannya dengan

ketersediaan hara makrodan mikro serta dipengaruhi oleh kondisi lingkungan di

dalam media kulturnya. Faktor-faktor lingkungan yang berpengaruh terhapap

pertumbuhan fitoplankton antara lain cahaya, suhu pH, kandungan CO2bebas

dan tekanan osmose (salinitas).

Cahaya

Fitoplankton merupakan organisme autotorof yang mampu membentuk

senyawa organik dari senyawa-senyawa anorganik melalui proses fotosintesis.

Dengan demikian cahaya mutlak diperlukan sebagai sumber energi. Proses

fotosintesis pada fitoplankton dapat dituliskan dalam persamaan reaksi sebagai

berikut :


11/32

14

n CO2+ 2n H2O n (CH2O) + nO2+ n H2O

Gambar 4 . Proses Fotosintesis

Sumber : Balai Budidaya Laut Lampung

Dimana H2O bertindak sebagai donor hidrogen, sedangkan n(CH2O)

adalah karbohidrat. Proses ini memerlukan energi yang diperoleh dari

penyerapan cahaya oleh pigmen-pigmen fotosintetik. Pada alga hijau pigmen

yang menyerap cahaya adalah klorofil-a, disamping pigmen lain seperti kartinoid,

xantofil pada jenis fitoplankton lainnya.

Pada Budidaya fitoplankton didalam laboratorium, cahaya matahari dapat

digantikan dengan sinar lampu TL dengan intensitas cahaya antara 5000

10.000 lux. Intensitas cahaya adalah jumlah cahaya yang mengenai satu satuan

permukaan. Satuannya adalah footcandle atau lux. Kisaran optimum intensitas

cahaya bagi pertumbuhan fitoplankton adalah 20008000 lux.

Suhu

Suhu secara langsung mempengaruhi efisiensi fotosintesis dan

merupakan faktor yang menentukan dalam pertumbuhan fitoplankton. Umumnya

pada kondisi laboratorium, perubahan suhu air dipengaruhi oleh temperatur

ruangan dan intensitas cahaya. Sedangkan untuk skala massal yang dilakukan di

luar, suhu sangat dipengaruhi oleh keadaan cuaca.

Dalam reaksi kimia kenaikan temperatur akan menaikan kecepatan

reaksi. Biasa setiap kenaikan 10 C dapat mempercepat reaksi 2 3 kali lipat.

Karena didalam proses metabolisme terjadi suatu rangkaian reaksi kimia maka

kenaikan suhu sampai pada batas nilai tertentu, dapat mempercepat proses

metabolisme. Tetapi temperatur tinggi yang melebihi temperatur maksimum akan


12/32

15

menyebabkan denaturasi protein dan enzim. Yang akan menyebabkan

terhentinya proses metabolisme dalam sel.

Menambahkan temperatur tinggi 40 C sudah dapat menonaktifkan

bahkan mematikan enzim. Kisaran suhu optimum bagi pertumbuhan fitoplankton

umumnya adalah 25 C32 C

pH

Kebanyakan sel, termasuk fitoplankton sangat peka terhadap derajat

keasaman cairan yang mengelilinginya. Ion H sangat berpengaruh terhadap

kegiatan enzim. Jika suatu enzim menunjukkan kegiatan pada pH tertentu,

kenaikan atau penurunan pH dapat menyebabkan kegiatan enzim itu berubah.

Kandungan CO2Bebas

Tersedianya CO2di dalam media kultur merupakan faktor penting untuk

fitoplankton, karena secara langsung dipakai sebagai bahan untuk membentuk

molekul-molekul organik melalui proses fotosintesa. Dalam budidaya fitoplankton

supaiCO2 bebaske dalam media kultur, biasanya dilakukan dengan pemberian

aerasi melalui blower (pompa udara) sekaligus untuk meratakansebaran nutrien

yang ada.

Salinitas

Sebagai salah satu organisme yang hidup didalam air, salinitas

merupakan salah satu faktor pembatas bagi pertumbuhan dan perkembangan

fitoplankton. Fluktuasi salinitas secara langsung menyebabkan perubahan

tekanan osmose di dalam sel fitoplankton. Salinitas yang terlampaui rendah,

menyebakan tekanan osmosis di dalam sel menjadi lebih rendah atau lebih

tinggi, sehingga aktifitas sel menjadi terganggu. Hal ini dapat mempengaruhi pH

sitoplasma sel dan menurunkan kegiatan enzim di dalam sel. Umunya

fitoplankton air laut hidup normal pada salinitas optimum 2535 /oo.


13/32

16

2.2.2. Faktor Non Teknis

Sebagai langkah awal untuk menentukan lokasi budidaya fitoplankton,

perlu diketahui terlebih dahulu peruntukan suatu wilayah yang biasanya telah

terpetakan dalam Rencana Umum Tata Ruang (RUTR) dan tata guna lahan. Hal

ini untuk menghindari kesulitan dalam perijinan dan resiko usaha karena

perbedaan kepentingan dikemudian hari, yang mengancam kelangsungan

usaha.

Lokasi Budidaya hendaknya dipilih di daerah yang mempunyai berbagai

kemudahan-kemudahan untuk memperoleh sarana dan prasarana seperti

transportasi, telekomunikasi, listrik (PLN), tenaga kerja, keamanan dan berbagai

fasilitas sosial lainnya yang memberi kenyamanan dalam bekerja. Dengan

dukungan yang lebih baik dari faktor non teknis akan meningkatkan efisiensi dan

efektifitas usaha sehingga target produksi dapat tercapai.

2.3. Sarana dan Prasarana Kultur

Menurut Balai Budidaya Laut Lampung (2002), yang menjelaskan tentang

Sarana dan Prasarana Kultur. Sarana Kultur diantaranya adalah Peralatan Kultur

Skala Laboratorium dan Sistem Air Laut. Prasaranan Kultur yang meliputi

Laboratorium Kultur Murni, Ruang Kultur Semi Massal, Bak Kultur Massal,

2.3.1. Sarana Kultur

Ruang kultur skala laboratorium dilengkapi dengan peralatan-peralatan

untuk kultur seperti kegiatan isolasi, sterilisasi dan kegiatan kultur. Peralatan

kerja ditempatkan sedemikian rupa sehingga tertata dengan rapi dan dapat

memberikan kemudahan dalam operasional. Jenis peralatan untuk kultur murni

(kultur skala laboratorium) dapat dilihat pada Tabel 3.


14/32

17

Tabel 3. Peralatan Untuk Kultur Murni

No Jenis Peralatan

1. Botol 0,5 L sampai 20

L

Oven

2.Erlenmeyer, carbouy Refrigator

3.Pipet Timbangan sartorius

4.Beacker glass Haemacytometer

5.Pipa glass Pemanas bunsen

6.Cawan petri Plankton net

7. Tabung reaksi 20 ml,

rak Jarum ose8.

Lampu TL 10-40 wattSelang aerasi, batu timah dan batu

aerasi

9.Refraktometer Ember

10.Thermometer pH meter/DO meter

11.Mikroskop Hi. Blower

12.Autoclave

Sumber: Balai Budidaya Laut Lampung (2002)

2.3.2. Prasarana Kultur

A. Laboratorium Kultur Murni

Laboratorium kultur murni/stok merupakan bangunan terdiri dari beberapa

ruangan yang peralatan, desain dan kontruksi sesuai fungsinya. Ruang kultur

murni/stok berfungsi untuk memelihara kemurnian stok phytoplankton. Ruangan

ini didesain tanpa jendela, berpintu satu dan menghadap tempat kultur semi

massal serta dapat mempertahankan suhu sampai 23 26 0C. Konstruksi

ruangan ini dibuat dari bahan tahan karat dan tidak mudah lapuk serta bahan

yang dapat mempertahankan suhu.


15/32

18

B. Ruang Kultur Semi Massal

Ruang kultur semi massal adalah bangunan permanen semi out door

yang berfungsi untuk pengembangan stok fitoplankton dari laboratorium menjadi

skala massal semi out door atau lazim dikenal dengan kultur semi massal.

Dalam ruang ini dilengkapi dengan peralatan berupa wadah seperti akuarium,

fiberglassdengan volume 800 liter sampai dengan 1 m3.

Ruang kultur semi massal didesain agar bisa mendapat sinar matahari

yang cukup sepanjang hari, sirkulasi udara yang cukup dan dapat melindungi

dari gangguan luar. Konstruksi harus kuat dan menahan beban atap dengan

kerangka daribahan tahan karat dan tidak mudah lapuk, beratap dari bahan yang

dapat tembus cahaya seperti kaca, fiberglassatau polycarbonat.

C. Bak Kultur Massal

Menurut Balai Budidaya Laut Lampung (2002), bak kultur massal (out

door) berfungsi sebagai tempat kultur atau produksi massal fitoplankton. Bak ini

berukuran minimal 10 m3 tergantung dari jumlah phytoplankton yang diperlukan

perharinya. Semakin banyak kebutuhan phytoplankton, ukuran bak dapat

ditingkatkan sehingga dapat menghemat tenaga kerja dan lebih memudahkan

dalam pengelolaan.

Desain bak berbentuk segi empat maupun bundar dengan dasar bak

dilengkapi lubang pembuangan, berlantai miring ke arah lubang pembuangan

dan tidak ada sudut mati. Konstruksi bak harus dapat menahan volume air,

dengan permukaan halus yang bisa terbuat dari pasangan bata/fiberglass.

Bahan yang digunakan harus tidak menghasilkan bahan cemaran (Balai

Budidaya Laut Lampung, 2002).

Dalam kultur massal phytoplankton skala massal, diperlukan intensitas

penyinaran (cahaya) yang cukup. Disarankan kedalaman bak kultur sebaiknya

tidak lebih dari 1 meter karena apabila kedalaman bak kultur lebih dari 1 meter


16/32

19

dikhawatirkan daya tembus cahaya tidak sampai ke dasar bak. Apabila sinar

matahari tidak sampai ke dasar, maka phytoplankton yang dikultur akan

mempunyai laju pertambahan sel yang lambat atau bahkan bisa mati.

D. Sistem Air Laut

Tersedianya air laut bersih dan jernih mutlak diperlukan dalam kultur

phytoplankton. Untuk mendapatkan air laut bersih dan jernih sesuai dengan

persyaratan, sarana yang dibutuhkan akan sangat tergantung dari kondisi

perairan yang ada, apabila perairan laut sangat jernih filter air laut yang

digunakan akan semakin komplek. Dengan semakin tingginya tingkat kekeruhan

atau rendahnya kualitas sumber air, biaya investasi maupun operasional akan

semakin tinggi pula.

Untuk meningkatkan kualitas air laut banyak cara yang dilakukan yaitu

dengan cara mekanik, biologi dan kimia. Peningkatan kualitas air yang umum

dan mudah dilakukan adalah dengan cara mekanik yaitu dengan mengendapkan

atau dengan saringan pasir.

Pada kultur phytoplankton skala laboratorium air laut yang digunakan

disterilkan dengan cara perebusan atau dengan cara UV dan ozonisasi.

Selanjutnya air laut disaring melalui saringan 50 m, 5 m, 2 m. Sedangkan

pada kultur fitoplankton skala massal dan semi massal, air laut disterilkan

dengan cara kimia, yaitu dengan menggunakan bahan chlorin(kaporit). Air laut

yang akan digunakan sebelumnya disaring, lalu disterilkan dengan kaporit 15-20

ppm selama 1-2 hari atau sampai netral. Untuk mengetahui/mengecek chlorin

digunakan chlorintest.

Secara keseluruhan, untuk mendapatkan air baku yang dimaksud maka

harus melalui serangkaian instalasi air laut yang terdiri atas filter, pompa bak

penampungan air/tandon dan pipa pengadaan serta distribusi air laut.


17/32

20

a. Filter Air Laut

Filter hisap

Sesuai dengan nama dan fungsinya, filter ini ditempatkan pada bagian

hisap pompa. Posisi penenpatan filter bisa secara horizontal atau vertikal

disesuaikan dengan kontur dasar perairan pengaruh selisih pasang tinggi dan

surut terendah, kedalaman perairan, jenis dasar perairan dan sistem pompa yang

dipergunakan. Fungsi filter adalah untuk mencegah terhisapnya bagian kasar

dari dasar perairan seperti batuan, jasad akuatik dan bahan lain yang dapat

mengganggu atau menghambat kerja pompa. Penempatan filter sebaiknya

menggunakan kerangka tancap (rak) di dasar perairan.

Filter buang

Penempatan filter ini adalah pada bagian outlet (pengeluaran) pompa

sebelum air yang keluar dipergunakan. Filter ini terdiri dari dua macam filter yaitu

filter terbuka dan filter tertutup. Filter buang terbuka biasanya menggunakan bak

semen atau fiber glass dan pasir sebagai bahan penyaring. Mekanisme

penyaringan pada filter terbuka dengan mengalirkan air dari bawah ke atas Up

Welling Filter, pengaliran ini bertujuan agar penyaringan lebih efisien. Filter

buang tertutup biasanya terbuat dari fiberglass yang telah dilengkapi dengan

pasir sebagai penyaring. Filter ini biasanya sering dijumpai di pasaran dengan

ukuran bervariasi dari 1 - 2 ton.

b. Pipa distribusi air laut

Pipa diperlukan untuk mengalirkan air laut dari filter ke tandon (bak

penampungan) atau dari bak penampungan ke bak - bak yang membutuhkan.

Dalam proses pengaliran atau distribusi diperlukan stop kran untuk mengatur

kebutuhan air sesuai kapasitas bak atau untuk membuka dan menutup aliran air.


18/32

21

Jaringan pipa distribusi terdiri dari pipa utama (primer), pipa pembagi

(sekunder) dan pipa pengguna (tersier). Perbandingan pipa primer, sekunder,

dan tersier adalah 1 : 0,5 : 0,25 atau 1 : 0,75 : 0,5 dengan tujuan agar air yang

diterima bak dapat merata, khususnya untuk distribusi yang menggunakan

pompa langsung.

c. Bak penampungan

Bak penampungan adalah bak yang digunakan untuk menampung air

bersih yang merupakan hasil penyaringan atau hasil sterilisasi dengan kaporit.

Ketersediaan bak penampungan ini mutlak diperlukan karena untuk mengurangi

adanya kontaminan yang akan masuk ke bak kultur fitotoplankton. Kelebihan lain

dari penggunaan bak tandon adalah:

- Air dapat didistribusikan secara gravitasi, untuk itu letak bak

penampungan harus lebih tinggi dibanding bak kultur.

- Sterilisasi air bisa dilakukan dengan penambahan bahan kimia misalnya

kaporit.

- Menghindari terbakarnya elektro motor pompa akibat pemakain air yang

tidak sesuai antara inlet dan outlet.

d. Sistem aerasi

Sistem aerasi adalah rangkaian proses pengambilan dan pemasukan

udara ke dalam media pemeliharaan. Dalam kultur fitoplankton secara massal

sistem aerasi sangat penting artinya karena selain sebagai sumber O2 / CO2juga

berfungsi pengaduk (sirkulasi air media pemeliharaan, pemerataan cahaya dan

pemerataan pupuk. Pengudaraan kedalam bak kultur sebaiknya dengan

kekuatan aerasi sedang dan merata dengan maksud untuk lebih memeratakan

penyebaran pupuk ke seluruhbagian bak kultur fitoplankton.

Pada kultur fitoplankton penambahan udara kedalam media pemeliharaan

dilakukan dengan cara memompa udara dari luar dengan blower (pompa udara).


19/32

22

Pompa udara yang digunakan biasanya tergantung kedalaman air media kultur,

akan tetapi yang banyak digunakan adalah Hi Blow, Vortex Blower, Root Blower

dan Aerator Akuarium. Untuk kultur phytoplankton skala laboratorium biasanya

digunakan Vortex Hi Blow (mini blower), sedangkan pada skala massal (out door)

digunakan Vortex Blower atau Root Blower tergantung skala usaha yang

dilakukan.

Dalam sistem aerasi perlengkapan lain yang harus dipenuhi adalah pipa,

stop kran, selang, pemberat dan batu aerasi. Pipa dan stop kran sebaiknya

terbuat dari bahan PVC atau bahan lain yang tidak mudah berkarat. Untuk

selang aerasi dipilih dari bahan plastik yang lentur, sehingga jika terkena panas

tidak cepat mengeras. Batu aerasi berfungsi menghasilkan gelembung udara

yang halus sehingga mempertinggi difusi O2/CO2dari udara ke dalam air media

pemeliharaan, sehingga pompa udara yang digunakan akan memberikan hasil

yang optimum. Penempatan pipa dan batu aerasi di dalam bak kultur

phytoplankton diatur sedemikian rupa sehingga terjadi arus balik aliran air dari

bak kultur ke dalam blower.

e. Tenaga listrik

Listrik merupakan sumber tenaga untuk menjalankan peralatan dan

sistem penunjang lainnya. Sumber tenaga listrik dapat berasal dari PLN atau

generator. Untuk memudahkan dalam operasional dan perawatan, sebaiknya

lokasi dipilih yang sudah ada jaringan PLN. Pemasangan generator mutlak

dilakukan terutama di daerah dimana sering terjadi pemadaman aliran listrik.

f. Tata letak

Tata letak merupakan salah satu faktor penting yang harus direncanakan

dan diperhatikan sebaik mungkin. Kesalahan dalam penentuan tata letak akan

mengakibatkan kesulitan dalam operasional. Beberapa hal yang perlu


20/32

23

dipertimbangkan antara lain: kemudahan dalam operasional, memenuhi

persyaratan teknis, dapat menekan biaya dan ketersedianya lahan.

Pada kultur skala laboratorium tata letak ruangan harus berdampingan

dengan ruang laboratorium dan dekat dengan ruang/tempat ruang semi massal

serta terpisah dari ruang kultur skala laboratorium zooplankton. Selain itu wadah

kultur untuk phytoplankton yang berwarna hijau harus dipisah dari dari wadah

kultur untuk plankton coklat (diatom), demikian juga dengan peralatan lain yang

dipakai. Untuk kultur semi massal letak ruang semi massal harus dekat dengan

ruang kultur skala laboratorium/murni tetapi tidak berdekatan ruang kultur semi

massal zooplankton.

Dalam kultur fitoplankton (chaetoceros sp), penempatan bak harus

terpisah dari bak kultur zooplankton. Hal ini untuk menghindari uterjadinya

kontaminasi fitoplankton oleh zooplankton. Dengan penempatan yang benar

kegagalan kultur fitoplankton (chaetoceros sp)karena kontaminasi zooplankton

bisa dicegah. Penempatan bak kultur fitoplankton (chaetoceros sp) tidak boleh

terlalu jauh dari bak pemeliharaan larva, karena plankton merupakan kebutuhan

pokok yang diperlukan pada pemeliharaan larva.

2.4. Pelaksanaan Kultur Chaetoceros sp

Menurut Balai Budidaya Laut Lampung (2002), yang akan menjelaskan

mengenai Pelaksanaan Kultur yang meliputi Kultur Skala Laboratorium, Kultur

Skala Semi Massal dan Kultur Skala Massal

2.4.1. Kultur Skala Laboratorium

a. Steri l isasialat dan bahan

Kultur skala laboratorium merupakan kultur fitoplankton yang murni atau

monospesies. Pada tahap ini kesterilan alat, media kultur dan tempat kultur

sangat dibutuhkan. Air laut yang digunakan kultur harus bebas dari organisme


21/32

24

lain yang bisa menjadi kompetitor fitoplankton yang dikultur, seperti fitoplankton

jenis lainnya, zooplankton, protozoa dan bakteri. Setelah melalui penyaringan

dengan Filter Bag, air laut dapat disterilisasi dengan beberapa cara antara lain

perebusan, sinar Ultra Violet (UV), ozonisasi atau chlorinasi. Sedangkan untuk

peralatan kultur yang berupa gelas (cawan petri, tabung reaksi, elenmeyer)

terlebih dahulu dicuci bersih dengan air untuk kemudian dikeringkan dan

disterilisasi dengan menggunakan autoclave, oven atau alkohol. Peralatan lain

berupa perangkat aerasi disterilisasi dengan perebusan. Ruang dan tempat

kultur senantiasa disucihamakan dengan antiseptikdan alkohol.

b. Isolasi

Tujuan isolasi untuk memperoleh fitoplankton monospesies (murni)

dengan cara mengambil air sample air laut di alam dengan menggunakan

planktonet, untuk selanjutnya diamati dibawah mikroskop. Selain bibit dari alam,

isolasijuga dilakukan pada fitoplankton hasil kultur yang mengamati kontaminasi.

Ada beberapa cara isolasi antara lain pengenceran berseri dan

menggunakan pipet kapiler. Pengenceran berseri dilakukan dengan

mengencerkan sample yang diperoleh yaitu dengan cara memindahkan sampel

ke dalam beberapa tabug reaksi yang telah berisi pupuk sesuai dengan

fitoplankton yang dominan dan diinginkan. Selanjutnya hasil pengenceran

diamati dibawah mikroskop dan biasanya fitoplankton yag dominan akan tumbuh

semakin padat dan semakin mendominasi media kultur. Pada metode pipet

kapiler dilakukan dengan cara meneteskan beberapa tetes sampel dipermukaan

cawan petri dan diberi media pupuk masing-masing satu tetes. Sampel

fitoplankton dipindahkan pada salah satu media dengan menggunakan pipet

kapiler steril (pipet yang ujungnya sekecil jarum). Pemindahan fitoplankton

dilakukan dari tetesan ke tetesan, demikian seterusnya hingga diperoleh


22/32

25

fitoplankton monospesies seperti yang diinginkan. Untuk mengetahui

keurniaanya harus selalu diamati dibawah mikroskop.

c. Kultur Media Agar

Mula-mula bacto-agarsebanyak 1,5 gram dilarutkan dalam 100 ml air laut

kemudian dipanaskan sampai mendidih dan larutan menjadi jernih. Selama

pemanasan berlangsung, larutan selalu diaduk agar tidak terjadi penggumpalan.

Setelah mendidih larutan bacto-agartersebut diangkat dan setelah agak dingin

ditambahkan pupuk sesuai dengan jenis fitoplankton yang akan ditanam.

Selanjutnya larutan dituangkan kedalam cawan petri yang sudah steril dengan

ketebalan 3 5 mm atau kedalam tabung reaksi steril dengan posisi miring.

Setelah media agar membeku, siap digunakan untuk menanam inokulum (bibit

fitoplankton) dengan metode gores, metode tetes atau metode tuang.

Pada metode gores digunakan jarum ose yang sebelumnya dibakar

terlebih dahulu dengan menggunakan lampu bunsenagar steril. Bibit fitoplankton

digoreskan pada permukaan media agar dengan menggnakan jarum ose. Dalam

metode tetes digunakan pipet tetes steril untuk mengambil dan meneteskan

inokulum pada permukaan media agar, dengan menetekan setetes demi setetes

secara terpisah. Sedangkan dengan metode tuang, inokulum dituang dan

diratakan pada permukaan media agar dengan gerakan memutar. Kegiatan

tersebut dilakukan dalam ruangan yang steril (laminar).

Untuk mencegah kontaminasi dengan mikroorganisme lain, cawan petri

yang telah ditanam bibit fitoplankton disegel atau ditutup dengan selotip,

kemudian diletakkan di rak kultur desinari dengan lampu neon TL. Cawan petri

diletakkan dalam keadaan terbalik untuk mencegah terjadinya penetesan embun

dari bagian tutup ke media agar, hal tersebut akan mengganggu pertumbuhan

fitoplankton dan koloni akan tumbuh setelah 47 hari

.


23/32

26

d. Kultur di media cair

Tahap selanjutnya adalah pemindahan dari media agar ke media cair.

Koloni yang akan tumbuh dan perkembangan di media agar dipindahkan dengan

menggunakan jarum ose kedalam tabung reaksi yang berisi air laut steril dan

setelah diberi pupuk. Sebaiknya digunakan satu jarum ose untuk satu jenis

fitoplankton. Sebelum dipindahkan, fitoplankton diamati di bawah mikroskop

untuk mengetahui kemurniaannya. Tabung-tabung reaksi yang telah berisi bibit

fitoplankton ditempatkan dalam rak tabung reaksi dan diletakkan pada rak kultur

yang dilengkapi dengan lampu neon TL.

Selama masa kultur, tabung reaksi dikocok sesering mungkin dengan

tujuan untuk menghindari terjadinya pengendapan dan untuk difusi udara. Bibit

fitoplankton dalam tabung reaksi akan semakin meningkatkepadatannya dan

dapat dipindahkan sebagian ke wadah yang lebih besar volumenya (100 300

ml), sedangkan sebagian lagi dipindahkan ke tabung reaksi lain untuk

mempertahankan kemurniaanya. Fitoplankton yag dikultur bisa diaerasi atau

tanpa aerasi. Apabila menginginkan pertumbuhan yang cepat, sebaiknya

diaerasi dan apabila tujuannya untuk persediaan tidak perlu diaerasi, cukup

dikocok sewaktu-waktu. Setelah kepadatannya cukup (sekitar 1 minggu) dapat

dipindahkan ke volume yang lebih besar (500 1000 ml). Demikian seterusnya

kultur dilakukan secara bertahap dari volime kecil ke volume yang lebih besar

(sampai dengan 5 liter) dengan waktu kultur masing-masing 47 hari.

Penyaringan dilakukan untuk memisahkan kotoran atau fitoplanktonyang

mati/menggumpal dengan menggunakan kertas saring atau kertas tisu. Kegiatan

tersebut berlangsung terus menerus dan berkesinambungan dari media agar ke

media cair dan dari volume kecil ke volume lebih besar secara bertahap.


24/32

27

e. Pembuatan pupuk

Pupuk yang digunakan pada skala laboratorium ini terbuat dari bahan

kimia PA (Pro Analise) dengan dosis pemakaian 1 ml pupuk untuk 1 liter volume

kultur. Jenis dan formula pupuk adalah yang sudah distandarkan dan umum

digunakan yaitu Conwy (Walnes medium)dan Guillard dan Rhyter Modofikasi F.

Untuk memudahkan pemakainnya, terlebih dahulu dibuat stok pupuk cair.

Komposisi pupuk untuk skala laboratorium terdapat pada Tabel 4 .

Tabel 4 . Komposisi Pupuk Untuk Kultur Skala Laboratorium

NO Bahan KimiaNama Pupuk

Conwy/Walne Guillard

1. EDTA 45 gram 10 gram

2. NaH2PO4. 2H2O 20 gram 10 gram

3. FeCl3. 6H2O 1,5 gram 2,9 gram

4. H3BO3 33,6 gram -

5. MnCl2 0,36 gram 3,6 gram

6. NaNO3 100 gram 100 gram

7. Na2SiO3. 9H2O - 5 gram/30 ml

8. Trace Metal Solution 1 ml 1 ml

9. Vitamin 1 ml 1 ml

10. Aquades 1000 ml 1000 ml

Sumber : Balai Budidaya Laut Lampung (2002)

Air yang digunakan dalam pembuatan pupuk adalah aquades atau air

tawar steril ditempatkan dalam gelas ukur 1000 ml. Bahan-bahan kimia yang

akan digunakan ditimbang dan dilarutkan satu persatu secara berurutan ke

dalam gelas ukur. Trace metal dan vitamin dibuat sendiri untuk mempermudah


25/32

28

pemakaiannya. Setelah seluruh bahan larut sempurna, pupuk cair disimpan

dalam botol gelap dan siap digunaan sesuai dengan kebutuhan. Komposisi trace

metal terdapat pada tabel 5.

Tabel 5. Komposisi Trace Metal Solution

NO Bahan KimiaNama Pupuk

Conwy/Walne Guilard

1. ZnCl2 2,10 gram -

2. CuSO4. 5H2O 2,00 gram 1,96 gram

3. ZnSO4. 7H2O - 4,40 gram

4. CoCl2. 6H2O 2,00 gram 2,0 gram

5. (NH4)6. Mo7O24. 4H2O 0,9 gram 1,26 gram

6. Aquabides 100 ml 100 ml


f. Penyimpanan Fitoplankton

Untuk menjaga kesinambungan stok murni, selain kultur di media agardari

tabung reaksi juga perlu dilakukan penyimpanan dalalm lemari es baik dalam

bentuk agar atau cair. Dengan penyimpanan, stok kultur dapat bertahan 1 6

bulan dan dapat digunakan untuk bibit kultur apabila fitplankton mengalami

penurunan kualitas. Untuk mengkulturnya kembali tentunya diperlukan adaptasi

terlebih dahulu sekitar 1 hari sampai suhunya sama dengan suhu ruangan,

selanjutnya dikultur seperti biasa.

g. Kendala Kultur Laboratorium

Kendala yang umum ditemui dalam kultur fitoplankton skala laoratorium

yaitu kontaminasi dengan bakteri, protozoa, atau fitoplankton lain. Sumber


26/32

29

kontaminasi bisa berasal dari medium kultur (air laut, pupuk), udara (aerasi) dan

wadah serta inokulum.

2.4.2. Kultur Skala Semi-Massal

a. Alat dan bahan kultur semi massal

Kegiatan kultur fitoplankton (chaetoceros sp) semi massal, tetap

mempertahankan kesterilan wadah, media dan lokasi kultur, sama halnya

dengan di skala laboratorium. Dalam pelaksanaanya memerlukan peralatan dan

bahan sebagai berikut:

Seperangkat peralatan aerasi (pengudaraan) seperti selang aerasi, batu

aerasi, batu timah, blower (blower kecil/Hi Blow).

Beberapa ukuran wadah, dari volume 50 liter sampai 1000 liter, seperti

akuarium dan bak-bak fiber tembus cahaya. Lebih praktis menggunakan

bak fiber daripada bak beton, karena bisa dipindah-pindah mudah

membersihkannya dan penyerapan sinar lebih optimal. Kultur

menggunakan wadah akuarium kaca, sebaiknya ditempatkan diatas

meja, untuk menghindari percikan dan kontaminasi. Diperlukan juga bak

tandon ukuran sedang untuk wadah sterilisasi air laut. Beberapa ukuran

selang benang atau spiral (1/2 sampai 1).

Kaporit/chlorinuntuk sterilisasiair dan wadah.

Berbagai ukuran ember dan gayung.

Bibit Chaetoceros sp murni dari hasil kultur skala laboratorium.

Bahan-bahan kimia murni atau teknis, untuk pupuk.

Peralatan pendukung untuk monitor kualitas air, seperti refraktometer,

thermometer, pH meter dan klorin test.


27/32

30

b. Teknik kultur semi massal

Kegiatan kultur semi massal ini dilakukan diuang semi out door tampa

dinding, beratapan transparan, untuk memanfaatkan cahaya matahari. Kekuatan

cahaya sinar matahari mutlak diperhatikan, berkaitan dengan jenis bahan wadah,

dan volume kultur. Kultur dengan wadah akuarium/fiber transparan pada volume

sekitar 100 liter, kekuatan cahaya yang dibutuhkan jauh lebih kecil bila memakai

bak beton atau fiber yang volumenya lebih besar. Cahaya yang terlalu kuat

menghambat pertumbuhan dan juga akan memberi pengaruh suhu yang tinggi,

sehingga kultur cenderung kurang berhasil.

Sebelum melakukan kultur, terlebih dahulu menyiapkan wadah dan

peralatan lainnya secara steril dengan kaporit 100 ppm. Sterilisasi air laut di bak

tandon dengan kaporit 15 - 20 ppm, dilakukan pengadukan/pengudaraan selama

1 - 2 hari atau sampai netral, kemudian diendapkan dengan menghentikan

pengudaraannya. Chlorin test dapat digunakan untuk mengetahui kenetralan air

laut. Sebagai catatan saat dilakukan pengadukan, harus terkena cahaya

matahari dan kontak dengan udara terbuka, untuk mempercepat air menjadi

nertal. Tidak dianjurkan untuk menggunakan penetral seperti Natrium Thiosulfat,

karena pemakaian dosis yang salah justru akan mematikan chaetoceros itu

sendiri dan juga berbahaya untuk larva udang/ikan.

Bibit murni didapat dari hasil kultur skala laboratorium, sebelum dikultur

perlu dilakukan adaptasi lingkungan, minimal satu hari. Untuk volume 100 liter

diperlukan bibit 5 - 10% dari volume total. Di awal kultur diperlukan salinitas 28

30 , suhu air laut di bawah 30 0C dan pH 7,9 - 8,3 dan kekuatan cahaya pada

kisaran 10.000 - 50.000 lux. Kekuatan cahaya yang tinggi akan berpengaruh

negatif terhadap pertumbuhannya dan pengaruh lainnya pada air media, yaitu

suhu air, salinitas dan pH menjadi tinggi akibatnya kultur tidak akan berhasil.


28/32

31

Untuk skala semi massal digunakan pupuk dari bahan kimia murni (PA :

Pro Analyzy) dan atau pupuk teknis.pemupukan dapat dilakukan di awal kultur

atau bersamaan dengan masuknya bibit, dengan dosis 1 ml/1 liter media air

kultur. Ada banyak jenis formula pupuk yang dapat digunakan beberapa contoh

nama formula yang sudah baku seperti: Conwy, Guillards, EDTA, TMRL, dan

modifikasi BBL sm (semi massal).

Bahan kimia trace metal masih menggunakan bahan kimia murni (PA),

karena belum ada bahan teknisnya dan kebutuhannya sangat sedikit, untuk

kultur dengan volume lebih dari 10 m3

tidak mutlak ditambahkan, tergantung

lokasi perairan. Trace metal adalah logam berat yang digolongkan sebagai

mikronutrien, mutlak diperlukan dalam kadar yang rendah, bila berlebih justru

akan mematikan chaetoceros sp.

Untuk mendapatkan kepadatan yang optimal diperlukan waktu kultur 3 - 5

hari, tergantung jenis phytoplanktonnya, kepadatan awal tebar dan kondisi

lingkungan (musim). Dari volume kultur 100 liter selanjutnya digunakan sebagai

bibit untuk kultur volume 1000 liter (1 m3). Pupuk yang dipakai dari bahan kimia

teknis atau dapat juga dilakukan kombinasi bahan teknis dengan pupuk

pertanian. Kultur selanjutnya pada volume yang lebih besar 10 - 100 m3 .

2.4.3. Kultur Skala Massal

a. Alat dan Bahan kultur massal

Peralatan yang diperlukan untuk kultur massal (volume 10 - 100 m)

sebagian hampir sama dengan di semi massal, seperti kebutuhan akan kaporit,

peralatan pengudaraan dan peralatan monitor kualitas air. Adapun sarana

tambahan lainnya yaitu :


29/32

32

Berbagai ukuran wadah kultur, dapat berupa bak fiber atau bak beton yang

permanen dari volume 10-100 m), tergantung kebutuhan atau jenis skala

pembenihannya.

Berbagai ukuran selang benang/spiral dan pipa.

Beberapa jenis pompa digunakan untuk pemindahan air steril dan

pendistribusian fitoplankton ke bak larva dan bak kultur zooplankton

(Branchionus).

Pupuk pertanian, seperti Urea, ZA, TSP, molase, orgami.

Bibit fitoplankton dari hasil kultur di semi-massal.

Air laut steril.

Untuk kultur bentik fitoplankton diperlukan tambahan alat/bahan untuk

menempelnya.

b. Teknik Kultur

Kegiatan di skala massal tidak jauh dengan kultur di skala semi-massal.

Aktifitas diawali dari sterilisasi bak dan peralatan dengan kaporit 100 ppm dan

sterilitasi air laut 10 - 20 ppm, tergantung kekeruhan air laut. Sterilisasipenting

dilakukan untuk lokasi pemebenihan yang kondisi perairan perairannya trelalu

subur akan bahan organik/lumpur dan mikroorganisme pathogen lainnya.

Sebagai catatan, meskipun air laut terlihat jernih karena kondisi alam memang

masih bersih dan tidak ada pencemaran lingkungan oleh kegiatan industri

ataupun telah dilakukan penyaringan, tetap diperlukan tahapan sterilisasi untuk

menghindari kontaminasi fitoplankton lainnya, sperti diatomae, karena

diharapkan kultur tetap satu jenis dan relatif murni. Kontaminan oleh fitoplankton

yang ukurannya lebih besar dari 20 m akan menimbulkan masalah, khususnya

pada tahapan panen Branchionus sp.


30/32

33

Pemupukan dilakukan dengan bersamaan dengan masuknya bibit

fitoplankton dari hasil kultur skala semi-massal, sekitar 10 - 20 % tergantung

kepadatannya. Bak kultur massa berukuran 10 - 100 m, dari bahan fiber atau

pasangan bata permanen. Jenis pupuk yang digunakan adalah pupuk pertanian

sperti Urea, ZA, NPK dan KNO3 sebagai sumber nitrogen, dan TSP, SP3, NPK

sebagai sumber phospatnya. Vitamin dan mikronutrien lainnya bisa ditambah

sebagai pelengkapnya. Hasil sampingan dari proses pembuatan gula (molase)

atau bumbu masak (orgami) dapat dijadikan sebagai sumber mikronutrien, ini

telah dibuktikan dengan kegiatan kultur fitoplankton di Balai Budidaya Laut

Lampung, dan hasilnya sangat baik. Dosis yang digunakan dalam kultur massal

adalah 1 - 2 liter untuk volume 100 m media air kultur (Pujo dkk., 1998). Kultur

phytoplankton dari kelas Diatomae perlu ditambah unsur silikat sekitar 5 - 20

ppm, tergantung jenisnya.

Waktu kultur unutk mencapai kepadatan optimal dan aman digunakan

sebagai pakan Branchionus sp, serta pemakaian secara langsung di bak

pemeliharaan larva ikan (Green Water System), umumnya berkisar sampai 4 - 6

hari. Faktor lingkungan alam sangat dominan peranannya, seperti cahaya

matahai dan musim. Salah satu kriteria phytoplankton yang baik kualitasnya

sebagai pakan hidup, harus memiliki pola tumbuh yang normal, untuk itu perlu

dilakukan pengamatan pertumbuhannya dengan melihat perubahan warna

secara fisual dan mengatur kecerahannya dengan alat sechi disk. Bila

memungkinkan, akan lebih baik dilakukan pengamatan dan perhitungan dibawah

mikroskop dengan bantuan alat hitung yaitu Haemocytometer.

Pengamatan dengan mikroskop memberi beberapa keuntungan antara

lain, dapat mengetahui penambahan jumlah sel setiap harinya, mengamati

bentuk sel dan kemungkinan adanya kontaminan mikroorganisme lainnya.


31/32

34

Pengawasan yang disiplin memberikan hasil yang baik, dengan demikian

kemurnian kultur massal dapat dipertahankan lebih lama dan berkualitas.

BBL Lampung sebagai instansi pemerintahan berfungsi sebagai Unit

Pelaksana Teknis, telah melakukan kajian-kajian dan penyempuranaan untuk

mendapatkan formula pupuk massal yang lebih efektif, disajikan pada tabel.

Salah satunya adalah dengan variasi formila pupuk pertanian (formula BBL),

dapat mengurangi waktu kultur menjadi 3 - 4 hari dari 5 - 7 hari, dengan

kepadatan populasi mencapai 16 - 19 juta sel/ml. Formula pupuk yang berbeda

memberi pola tumbuh dan warna yang berbeda pula (Ari dkk., 2001). Formula

pupuk untuk kultur fitoplankton terdapat pada Tabel 6.

Tabel 6. Beberapa Formula Pupuk Kultur Massal Fitoplankton Laut

NO Bahan KimiaNama Formula (ppm)

Yashima BBL Dt* BBL B* BBL C* BBL S*

1. Urea 10 30 30 50 50

2. ZA 100 40 30 20 50

3. TSP 10 20 1015 10 - 15 1520

4. Molase/Orgami - 10 10 10 15

5. Silikat (Teknis) - 5 - 20 - - -


Keterangan :

BBL Dt : Pupuk untuk kultur Diatomae

BBL B dan BBL C : Formula pupuk kultur massal fitoplankton hijau dan

digunakan sebagai pakan

BBL S : formula pupuk kultur awal (bibit)


32/32

35

2.5. Penghitungan Chaetoceros s p

Pertumbuhan fitoplankton ditandai dengan pertambahan kepadatan

fitoplankton yang dikultur. Untuk menghitung kepadatannya umumnya

menggunakan alat hitung Haemocytometer dengan bantuan mikroskop.

Kepadatan fitoplankton dihitung sejak dari awal kultur sampai akhir kultur setiap

24 jam. Dengan menghitung kepadatannya dapat diketahui masa puncak

fitoplankton yang dikultur. Kepadatan rata-rata kultur Chaetoceros sp adalah 400

500 x sel/ml dari ukuran 45 (m) dengan bentuk empat persegi panjang

(Balai Budidaya Laut Lampung, 2002).

2.6. Panen

Pemanenan dengan cara memindahkan langsung fitoplankton bersama

air media kultur ke bak pemeliharaan. Teknik pemanenan ada dua sistem, yaitu

panen total dan panen harian. Panen total adalah kultur hanya satu siklus dan

dipanen seluruhnya, demikian berulang. Kelebihan sistem ini adalah fitoplankton

lebih murni, akan tetapi memiliki kelemahans sering mengalami kegagalan pada

tahap kultur awalnya, kerana fitoplankton butuh adaptasi lingkungan. Sistem

panen harian, dengan memanen fitoplankton sekitar 50 75 % dari volume total,

kemudian dilakukan kultur berulang-ulang, maksimal 8 kali siklus atau dalam

waktu 2 bulan masa kultur. Berdasarkan pengalaman dari BBL Lampung, sistem

panen parsial ini lebih baik, karena fitoplankton lebih stabil namun memiliki

kelemahan yaitu kemungkinan terjadi kontaminasi, bila pelaksanaan tidak hati-

hati dan tidak menjaga kestabilan media, wadah dan peralatan lainnya (Balai

Budidaya Laut Lampung).

tinjauan pustaka.docx

Documents