Rinaldi Idroes

Khairan

Novi Wulan Nurisma

Nurul Mawaddah

Rd. Rhegyn Gheisyara Pradysta

Rofina

Skrining Aktivitas Tumbuhan Yang Berpotensi

Sebagai Bahan Antimikroba Di Kawasan Ie Brôk

(Upflow Geothermal Zone) Aceh Besar

SYIAH KUA UNIVERSITY PRESS

Skrining Aktivitas Tumbuhan Yang Berpotensi Sebagai Bahan Antimikroba Di Kawasan Ie Brôk (Upflow Geothermal Zone) Aceh Besar Penulis : Prof. Dr.rer.nat. Rinaldi Idroes, S.Si Dr.rer.nat. Khairan, S.Si., M.Si Novi Wulan Nurisma, S.Farm Nurul Mawaddah, S.Farm Rd. Rhegyn Gheisyara Pradysta, S.Farm Rofina, S.Farm

Desain Sampul dan Penata Letak :

Rivansyah Suhendra, S.Kom Zahriah, S.T., M.T

Cetakan Pertama 2019 © 2019 Syiah Kuala University Press Penerbit Syiah Kuala University Press Jl. Teuku Chik Pante Kulu, Kopelma Darussalam, Banda Aceh Aceh, Indonesia, 23111 ISBN 978-623-7086-29-1

Hak Cipta Dilindungi Undang-Undang Dilarang memperbanyak, mencetak dan menerbitkan sebagian atau seluruh isi buku ini dengan cara dan dalam bentuk apapun juga, tanpa izin tertulis dari editor.

iii

KATA PENGANTAR

Syukur Alhamdulillah penulis panjatkan ke hadirat Allah SWT

yang telah melimpahkan rahmat dan hidayah-Nya, sehingga penulis

dapat menyelesaikan buku monograf yang berjudul “Skrining

Aktivitas Tumbuhan yang Berpotensi Sebagai Bahan Antimikroba di

Kawasan Ie Brôk (Upflow Geothermal Zone) Aceh Besar”. Shalawat

dan salam penulis sanjungkan kepada Nabi Muhammad SAW, beserta

para sahabat dan keluarga beliau yang telah membawa umat manusia

dari zaman kebodohan ke zaman yang berilmu pengetahuan seperti

saat ini.

Buku monograf ini berisi tentang beberapa tumbuhan yang

mampu tumbuh serta beradaptasi di lingkungan panas bumi dengan

kondisi yang ekstrim. Tumbuhan di kawasan ini juga diduga memiliki

potensi sebagai bahan obat, terutama sebagai antimikroba. Informasi

serta data penelitian terkait tumbuhan di kawasan panas bumi baik

biodiversitasnya maupun potensinya yang dapat digunakan dalam

bidang kesehatan masih sangat kurang hingga saat ini. Harapan

penulis semoga buku monograf ini dapat membantu pemerintah

maupun ilmuwan dalam pengembangan obat baru dari kawasan panas

bumi serta bermanfaat bagi perkembangan ilmu pengetahuan.

Penulis menyadari masih banyak kesalahan maupun

kekurangan dalam penulisan buku monograf ini, untuk itu segala

iv

kritikan dan saran demi kesempurnaan buku monograf ini sangat

diharapkan.

Banda Aceh, April 2019

Penulis

v

DAFTAR ISI

Halaman

KATA PENGANTAR................................................................................ iii DAFTAR ISI ............................................................................................ v DAFTAR TABEL.................................................................................... viii DAFTAR GAMBAR................................................................................. ix DAFTAR LAMPIRAN .............................................................................. xi

BAB I. PENDAHULUAN ................................................................. 1

BAB II. KAWASAN MANIFESTASI IE BRÔK .................................... 9

2.1. Panas Bumi ............................................................................. 9 2.2. Karakteristik Permukaan Manifestasi Ie Brôk ...................... 11 2.3. Penyebaran Vegetasi di Sekitar Manifestasi Ie Brôk............ 16

BAB III. KLASIFIKASI TUMBUHAN ................................................ 18

3.1. Tumbuhan di Kawasan Ie Brôk ............................................. 18 3.1.1. Ficus Dimorpha King...................................................... 18 3.1.2. Baccaurea pyriformis Gage ........................................... 19 3.1.3. Donax canniformis (G. Forst.) K. Schum ....................... 21 3.1.4. Sumbaviopsis albicans (Blume) J.J. Sm. ........................ 23 3.1.5. Streblus asper Lour........................................................ 24 3.1.6. Salacia sp....................................................................... 26 3.1.7. Antidesma montanum Blume ....................................... 27 3.1.8. Choromolaena odorata (L) R.M.King & H.Rob .............. 29

3.2. Uji Mikroskopik dan Makroskopik........................................ 31

BAB IV. METABOLIT SEKUNDER ................................................... 36

4.1. Alkaloid ................................................................................. 38 4.2. Flavonoid .............................................................................. 41

vi

4.3. Saponin ................................................................................. 44 4.4. Tanin ..................................................................................... 45 4.5. Terpen .................................................................................. 49 4.6. Steroid .................................................................................. 54

BAB V. METODE PENGUJIAN ....................................................... 60

5.1. Teknik Pengambilan Sampel ................................................ 60 5.2. Makroskopis dan Mikroskopis ............................................. 65 5.3. Metode Ekstraksi.................................................................. 65 5.4. Metode Skrining Fitokimia ................................................... 68

5.4.1. Uji Alkaloid .................................................................... 69 5.4.2. Uji Flavonoid ................................................................. 69 5.4.3. Uji saponin .................................................................... 70 5.4.4. Uji tanin ......................................................................... 70 5.4.5. Uji triterpenoid/steroid................................................. 70

5.5. Metode Uji Aktivitas Antimikroba ........................................ 70 5.5.1. Macam-macam Metode Uji Aktivitas ........................... 71 5.5.2. Uji Aktivitas Antimikroba .............................................. 81

BAB VI. REIDENTIFIKASI MIKROBA .............................................. 87

6.1. Bakteri Staphylococcus aureus............................................. 87 6.1.1. Pewarnaan Gram .......................................................... 87 6.1.2. Uji Katalase.................................................................... 88 6.1.3. Hasil Reidentifikasi Bakteri Staphylococcus aureus ...... 88

6.2. Bakteri Escherichia coli ......................................................... 90 6.2.1. Pewarnaan Gram .......................................................... 90 6.2.2. Uji Triple Sugar Iron Agar (TSIA) ................................... 91 6.2.3. Uji Simmons Citrate Agar (SCA) .................................... 92 6.2.4. Hasil Reidentifikasi Bakteri Escherichia coli .................. 92

6.3. Jamur .................................................................................... 95 6.3.1. Pewarnaan Gram .......................................................... 95 6.3.2. Hasil Reidentifikasi Jamur Candida albicans ................. 96

BAB VII. HASIL UJI MAKROSKOPIK DAN MIKROSKOPIK TUMBUHAN KAWASAN IE BRÔK .................................... 98

vii

7.1. Hasil Makroskopik dan Mikroskopik Tumbuhan Kawasan Ie Brôk ............................................................... 98

7.1.1. Hasil Pengamatan Makroskopik.................................... 98 7.1.2. Hasil Pengamatan Mikroskopik................................... 100

BAB VIII. HASIL UJI SKRINING TUMBUHAN KAWASAN IE BRÔK .......................................................................... 110

8.1. Hasil Skrining Fitokimia Tumbuhan Kawasan Ie Brôk ........ 110 8.2. Hasil Skrining Aktivitas Antimikroba Tumbuhan Kawasan Ie Brôk ................................................................. 117

BAB IX. PENUTUP........................................................................ 129

9.1. Kesimpulan ......................................................................... 129 9.2. Kepentingan Monograf ...................................................... 129

viii

DAFTAR TABEL

Halaman Tabel 2.1. Pengukuran suhu, pH, konduktivitas, elevasi, konsentrasi anion dan kation pada fluida manifestasi kawasan Ie Brôk ............................................ 11 Tabel 5.1. Kategori diameter zona hambat antibakteri dan antijamur........................................................................... 84 Tabel 7.1. Hasil pengamatan mikroskopik terhadap epidermis ..... 101 Tabel 7.2. Hasil pengamatan mikroskopik stomata ....................... 102 Tabel 7.3. Hasil pengamatan mikroskopik trikoma (rambut) ......... 104 Tabel 7.4. Hasil pengamatan mikroskopik resin ............................. 106 Tabel 7.5. Hasil pengamatan mikroskopik sel parenkim, pembuluh kayu (xylem), dan trakea ............................... 109 Tabel 8.1. Hasil Skrining fitokimia ekstrak n-heksana, etil asetat, dan etanol sampel tumbuhan......................................... 110 Tabel 8.2. Hasil pengukuran diameter rata-rata zona hambat esktrak n-heksana, etil asetat, dan etanol beberapa

tumbuhan kawasan Ie Brôk terhadap bakteri Staphylococcus aureus ATCC 25923............................... 118

Tabel 8.3. Hasil pengukuran diameter rata-rata zona hambat esktrak n-heksana, etil asetat, dan etanol beberapa

tumbuhan kawasan Ie Brôk terhadap bakteri Escherichia coli ATCC 25922.............................................................. 119

Tabel 8.4. Hasil pengukuran diameter rata-rata zona hambat esktrak n-heksana, etil asetat, dan etanol beberapa

tumbuhan kawasan Ie Brôk terhadap jamur Candida albicans 10231 .................................................. 120

ix

DAFTAR GAMBAR

Halaman Gambar 2.1. Model konseptual sistem geotermal ........................ 10 Gambar 2.2. Diagram segitiga ternary Cl-, SO4

2-, dan HCO3-

pada manifestasi Ie Brôk ........................................... 13 Gambar 2.3. Geoindikator Na-K-Mg .............................................. 15 Gambar 3.1. Tumbuhan Ficus dimorpha King ................................ 19 Gambar 3.2. Tumbuhan Baccaurea pyriformis Gage ..................... 20 Gambar 3.3. Tumbuhan Donax canniformis (G.Forst.) K.Schum. .. 22 Gambar 3.4. Tumbuhan Sumbaviopsis albicans (Blume) J.J. Sm. .. 23 Gambar 3.5. Tumbuhan Streblus asper Lour ................................. 25 Gambar 3.6. Tumbuhan Salacia sp ................................................ 27 Gambar 3.7. Tumbuhan Antidesma montanum Blume................. 28 Gambar 3.8. Tumbuhan Chromolaena odorata (L.) R.M.King &

H.Rob......................................................................... 30 Gambar 4.1. Jalur Biosintesis Metabolit ........................................ 37 Gambar 4.2. Klasifikasi senyawa alkaloid berdasarkan kerangka strukturnya ................................................ 39 Gambar 4.3. Klasifikasi senyawa alkaloid berdasarkan bentuk dan asal usulnya ........................................................ 40 Gambar 4.4. Kerangka dasar flavonoid.......................................... 42 Gambar 4.5. Senyawa-senyawa flavonoid..................................... 42 Gambar 4.6. Senyawa saponin....................................................... 44 Gambar 4.7. Senyawa tanin ........................................................... 46 Gambar 4.8. Jalur pembentukan asam galat ................................. 47 Gambar 4.9. Jalur biosintesis ellagitanin ....................................... 48 Gambar 4.10. Senyawa-senyawa terpenoid .................................... 50 Gambar 4.11. Unit isopren............................................................... 51 Gambar 4.12. Reaksi biosintesis isopren melalui jalur asam mevalonat ........................................................ 52 Gambar 4.13. Biosintesis senyawa-senyawa terpenoid .................. 53 Gambar 4.14. Struktur steroid ......................................................... 54

x

Gambar 4.15. Reaksi jalur biosintesis steroid .................................. 56 Gambar 5.1. Peta lokasi pengambilan sampel geotermal kawasan Ie Brôk........................................................................ 61 Gambar 5.2. Sketsa plot pengambilan sampel .............................. 62 Gambar 5.3. Simplisia tumbuhan................................................... 64 Gambar 5.4. Proses uji antimikroba dengan metode difusi cakram ....................................................................... 72 Gambar 5.5. Isolat Staphylococcus aureus diuji dengan metode

difusi gradien (E-test).. .............................................. 73 Gambar 5.6. Metode difusi agar sumuran..................................... 74 Gambar 5.7. Metode difusi agar plug............................................ 75 Gambar 5.8. Penghambatan bakteri Pseudomonas aeruginosa

dengan metode cross-streak .................................... 76 Gambar 5.9. Skema bioautografi kontak ....................................... 77 Gambar 5.10. Skema proses bioautografi langsung ........................ 78 Gambar 5.11. Diagram skema metode Agar Overlay Bioassay ....... 79 Gambar 5.12. Plat mikrotitrasi pada metode Broth microdilution 80 Gambar 5.13. Metode mikrodilusi Broth untuk pengujian antibakteri ................................................................. 81 Gambar 6.1. Hasil uji reidentifikasi bakteri Staphylococcus aureus. ....................................................................... 90 Gambar 6.2. Hasil uji reidentifikasi bakteri Escherichia coli. ......... 95 Gambar 6.3. Hasil uji reidentifikasi Candida albicans.................... 96 Gambar 8.1. Diameter zona hambat............................................ 126

xi

DAFTAR LAMPIRAN

Halaman Lampiran 1. Surat Keterangan Hasil Identifikasi Tumbuhan ............ 131 Lampiran 2. Sertifikat Mikroba ......................................................... 135

1

BAB I PENDAHULUAN

erhatian dunia terhadap obat-obatan yang berasal dari

bahan alam terus mengalami peningkatan, baik di negara

maju maupun di negara berkembang. Indonesia termasuk negara

berkembang yang memiliki sumber daya alam yang sangat melimpah,

terutama sebagai bahan obat. Indonesia merupakan negara urutan

kedua setelah Brazil yang memiliki tingkat keanekaragaman hayati

terbesar didunia dengan 30.000 spesies tumbuhan (Depkes RI, 2007).

Semakin berkembang ilmu pengetahuan dan teknologi, berbagai

penemuan keanekaragaman hayati baru untuk berbagai kegunaan

akan terus berkembang (Royana, 2013). Panas bumi termasuk salah

satu potensi sumber daya mineral dan energi yang melimpah di

Indonesia. Geotermal merupakan pembentukan energi panas yang

terbentuk secara alami di bawah permukaan bumi (Arrahman, 2015).

Daerah yang memiliki potensial sebagai panas bumi

merupakan daerah yang memiliki temperatur 200 sampai 300oC pada

kedalaman 5 km di bawah permukaan bumi. Gunung Seulawah Agam

merupakan salah satu gunung berapi yang masih aktif yang terdapat

di Kabupaten Aceh Besar. Gunung Seulawah Agam diketahui memiliki

potensi panas bumi yang tersebar dibeberapa kawasan diantaranya

kawasan Ie Seu-um, Ie Jue, dan Ie Brôk (Marwan, 2014). Kondisi

P

7

rata-rata >255oC dan cocok untuk pengembangan pembangkit listrik

(Idroes, 2018).

Referensi:

Alatas, M. 2017. Kajian Geokimia Air Panas Bumi Manifestasi Ie Jue Daerah Upflow Lamteuba Seulawah Agam, Aceh Besar. Skripsi. Universitas Syiah Kuala, Banda Aceh.

Arrahman, R. dan Putra, A. 2015. Perkiraan Suhu Reservoir Panas Bumi Dari Sumber Mata Air Panas Di Nagari Panti, Kabupaten Pasaman Menggunakan Persamaan Geotermometer Sebagai Dasar Penentuan Potensi Panas Bumi.

Jurnal Fisika Unand 4 (4): 391-396.

Borges, C. V., Minatel I. O., Gomez-Gomez, H. A., and Lima, G. P. P. 2017. Medicial

Plants: Influence of Environmental Factors on the Content of Secondary Metabolites, p.259-277. In Medicinal Plants and Environmental Challenges (Eds: M. Ghorbanpour and A. Varma). Springer International Publishing, Brazil.

Burns, B. 1997. Vegetation Change along geothermal Stress Gradient at the Te Kopia Steamfield. Journal of The Royal Society of New Zealand 27 (2): 279-295.

Compean, K.L., and Ynalvez, R.A. 2014. Antimicrobial Activity of Plant Secondary Metabolites. Res. J. Med. Plant. Rev. 8 (5): 204-213.

Depkes RI. 2007. Kebijakan Obat Tradisional. Departemen Kesehatan RI, Jakarta.

GNC. 2015. Some like it hot: Life in New Zealand’s Gheothermal Environments. GNC Science, New Zealand.

Haghighi, Z., Modarresi, M., & Mollayi, S. 2012. Enhancement of compatible solute and secondary metabolites production in Plantago ovata Forsk. by Salinity

Stress. J. Med. Plants. Res. 6 (18): 3495-3500.

Hochstein, M. P. 1990. Classification and assessment of geothermal resources, p.31-59. In Small Geothermal Resources (Eds: M. H. Dickson and M. Fanelli).

UNITAR/UNDP Centre on Small Energy Sources, Italy.

8

Idroes, R., Khairan, Fakri, F., dan Zulfendi. 2016. Skrining aktivitas Tumbuhan Yang Berpotensi Sebagai Bahan Antimikroba di Kawasan Ie Seu-um (Outflow Geotermal Zone) Aceh Besar. Syiah Kuala University Press, Banda Aceh.

Idroes, R., Khairan, dan Fakri, F. 2017. Skrining aktivitas Tumbuhan Yang Berpotensi Sebagai Bahan Antimikroba di Kawasan Ie Jue (Opflow Geotermal Zone) Aceh Besar. Syiah Kuala University Press, Banda Aceh.

Idroes, G. M. 2018. Potensi Panas Bumi pada Manifestasi Ie Brôk Lamteuba. Gunung Seulawag Agam, Aceh Besar secara Geokimia. Skripsi. Universitas Syiah Kuala, Banda Aceh.

Marwan. 2014. Study of Seulawah Agam’s Geothermal Source Using Gravity Method. Jurnal Natural 14 (2): 1-5.

Royana, R. 2013. Panduan Kelestarian Ekosistem untuk Pemanfaatan Panas Bumi . WWF-Indonesia, Jakarta.

Sampaio, B. L., Edrada-Ebel, R., and Batista F. Da Costa. 2015. Effect of the environment on the secondary metabolic profile of Tithonia diversifolia: a model for enviromental metabolomics of plants (Reports). Scientific Reports 6: 1-9.

Subhan. 2017. Kajian Geokimia Air Panas Bumi Manifestasi Ie Seu-um Daerah Outflow Seulawah Agam, Aceh Besar. Skripsi. Universitas Syiah Kuala, Banda

Aceh.

Utami. 2011. Antibiotika, Resistensi, Dan Rasionalitas Terapi. El-Hayah. 1 (4): 191-198.

9

BAB II KAWASAN MANIFESTASI

IE BRÔK

2.1. Panas Bumi

ndonesia memiliki total energi 28.100 megawatt electrical

(MWe) yang tersebar pada 265 titik lokasi panas bumi.

Indonesia memiliki sekitar 40 persen potensi panas bumi dunia, akan

tetapi pemanfaatnya baru sekitar 4 persen. Sedangkan pemanfaatan

panas bumi di negara Filipina telah mencapai sebesar 44,5 persen

(Suhartono, 2012). Indonesia termasuk kedalam sistem panas bumi

hidrotermal yang memiliki temperatur >225oC. Sistem panas bumi

hidrotermal terdapat dikawasan Sumatera, Jawa, dan Sulawesi. Jenis

sistem hidrotermal yang terdapat dibawah permukaan bumi dapat

menunjukkan manifestasi panas bumi dipermukaan seperti mata air,

geyser, dan sebagainya. Sistem panas bumi yang memiliki temperatur

tinggi, berpotensi untuk dikembangkan sebagai pembangkit listrik

(Royana, 2013). Aceh, merupakan provinsi yang memiliki beberapa

kawasan sumber panas bumi, salah satu kawasan sumber panas bumi

yang terdapat di Provinsi Aceh adalah Kawasan Geotermal Gunung

Seulawah Agam yang terletak di Kabupaten Aceh Besar (Wangsa et al.,

2017).

I

17

Berdasarkan pengamatan di sekitar manifestasi panas bumi

kawasan Ie Brôk vegetasi tumbuhan yang paling banyak terdapat

disekitar kawasan ini berupa perdu, herba, dan tumbuhan tingkat

pohon.

Referensi:

Cumming, W. 2009. Geotermal Resource Conseptual Models Using Surface

Exploration Data. Proceedings Thirty-Fourth Workshop on Geothermal Reservoir Engineering. Standford, California.

Hochstein, M. P. and Browne, P. R. L., 2000. Surface manifestation of geothermal

system with volcanic heat sources, p.835-855. In Encyclopedia of Volcanoes (Ed: Sigurdsson). Academic Press, New York.

Idroes, G. M. 2018. Potensi Panas Bumi pada Manifestasi Ie Brôk Lamteuba. Gunung Seulawah Agam, Aceh Besar secara Geokimia. Skripsi. Universitas Syiah Kuala, Banda Aceh.

Ochieng, L. 2013. Overview of Geothermal Surface Exploration Methods in Explor. Geotherm. Resour. pp. 1-13.

Royana, R. 2013. Panduan Kelestarian Ekosistem untuk Pemanfaatan Panas Bumi . WWF-Indonesia, Jakarta.

Smale, M. C. and Wiser, S. K. 2015. A Classification of the Geothermal Vegetation of

the Taupo Volcanic Zone, New Zealand. Proceedings World Geothermal Congress. New Zealand, 1-11.

Suhartono, N. 2012. Pola Sistim Panas Dan Jenis Geotermal Dalam Estimasi Cadangan

Daerah Kamojang. Jurnal Ilmiah MTG 5 (2).

Wangsa, A. and Ismail, N. 2017. Quantitative Interpretation of Gravity Anomaly Data

in Geothermal Field Seulawah Agam, Aceh Besar. Journal of Aceh Physics Society 7(1): 6-12.

18

BAB III KLASIFIKASI TUMBUHAN

3.1. Tumbuhan di Kawasan Ie Brôk

3.1.1. Ficus Dimorpha King

icus merupakan salah satu salah tumbuhan yang sangat

penting dari ekosistem hutan, karena beberapa dari

organisme hidup seperti serangga bergantung pada tumbuhan ini

(Whitmore, 1978 dalam Nuraini et al., 2013). Masyarakat umum

mengenal tumbuhan ficus dengan sebutan beringi, aro/ara. Ficus

terdiri dari 800 jenis yang tersebar diseluruh dunia, tetapi tumbuhan

ini banyak terdapat pada daerah tropis dan sebagian besar terdapat di

daerah Indonesia-Malaysia (Ridley, 1925 dalam Nuraini et al., 2013).

Tumbuhan F. dimorpha King merupakan tumbuhan dengan jenis

pohon yang memiliki tinggi sekitar 10 m. F. dimorpha King berasal dari

famili Moraceae dan pertumbuhannya tersebar dikawasan Sumatera

(Gambar 3.1). F. septica dan F. benjamina merupakan salah satu

tumbuhan yang berasal dari genus Ficus. Secara tradisional, daun

tumbuhan ini dapat dimanfaatkan sebagai obat sakit pinggang dan

maag (Kemenkes RI, 2015).

F

32

mikroskopik, dan uji histokimia. Uji mikroskopik dilakukan dengan

menggunakan mikroskop yang derajat pembesarannya disesuaikan

dengan keperluan. Simplisia yang diuji dapat berupa sayatan

melintang, radial, paradermal maupun membujur atau berupa serbuk.

Pada uji mikroskopik, dilakukan pencarian fragmen jaringan yang khas

dari suatu simplisia tumbuhan. Dari pengujian ini akan diketahui jenis

simplisia berdasarkan fragmen pengenal yang spesifik dari masing-

masing simplisia. Sedangkan uji makroskopik dilakukan dengan

menggunakan kaca pembesar atau tanpa menggunakan alat. Cara ini

dilakukan untuk mencari khususnya morfologi, ukuran, dan warna

simplisia yang diuji (Depkes RI, 1979).

Referensi:

Ami, A. A. 2007. Pharmacological Investigation of Leaves of Streblus asper. Thesis.

East West University Departement of Pharmacy, Aftabnagor, Dhaka.

Azliza, M. A., Ong, H. C., Vikineswary, S., Noorlidah, A., and Haron, N. W. 2012. Ethno-

medicinal Resources Used by the Temuan in Ulu Kuang Village. Ethno. Med. 6 (1): 17-22.

Bangun, A. 2011. Uji Aktivitas Penghambatan Enzim Alfa -Glukosidase dan Penapisan

Fitokimia Pada Beberapa Tanaman Famili Euphorbiaceae. Skripsi. Universitas Indonesia, Depok.

Bharti, R., Ahuja, G., Ganapathy, S., and Dakappa, S. S. 2012. A review on medicinal

plants having Antioxidant potential. Journal of Pharmacy Research Review 5 (8): 4278-4287.

Depkes RI. 1979. Farmakope Indonesia Edisi Ketiga. Direktorat Jenderal Pengawasan Obat dan Makanan, Jakarta.

Chakraborty, A.K., Rambhade, S., and Patil, U.K. 2011. Chromolaena odorata (L.) : An

Overview. Journal of Pharmacy Research 4(3): 573-576.

33

Global Biodiversity Information Facil ity. Baccaurea pyriformis Gage. https://www.gbif.org/species/3082088. Tanggal akses 13 Februari 2019.

Global Biodiversity Information Facil ity. Choromolaena odorata (L).

https://plants.jstor.org/stable/10.5555/al.ap.specimen.k000061456 . Tanggal akses 13 Februari 2019.

Global Biodiversity Information Facil ity. Choromolaena odorata (L). https://www.gbif.org/species/3087725. Tanggal akses 13 Februari 2019.

Global Biodiversity Information Facil ity. Ficus dimorpha King.

https://www.gbif.org/species/145833673/verbatim. Tanggal akses 13 Februari 2019.

Global Biodiversity Information Facil ity. Streblus asper Lour.

https://www.gbif.org/species/5569628. Tanggal akses 13 Februari 2019.

Gunawan, Chikmawati, T., Sobir, dan Sulistijorini. 2016. Review: Fitokimia genus

Baccaurea spp. Bioeksperimen 2(2): 96-110.

Haegens, R. M. A. P. 2000. Taxonomy, Phylogeny, and Biogeography of Baccaurea, Distichirhops, and Nothobaccaurea (Euphorbiaceae). Dissertation.

University of Leiden, Netherlands.

Harishekar, M., Kiran, B., and Lalitha, V. 2016. Investigation of Antibacterial Activity

of Salacia reticulatta (Root) Against some Important Pathogenic Bacteria. European Journal of Pharmaceutical and Medical Research 3 (6): 316-321.

Hariyadi, B. and Tickin, T. 2012. Uras: Medicinal and Ritual Plants of Serampas, Jambi

Indonesia. Ethnobotany Research and Applications vol 10: 133-149.

Hendra, M. 2009. Etnoekologi Perladangan dan Kearifan Botani Lokal Masyarakat Dayak Benuaq di Kabupaten Kutai Barat Kalimantan Timur. Disertasi.

Institut Pertanian Bogor, Bogor.

Integrated Taxonomic Information System. Sumbaviopsis albicans (Blume) J.J. Sm.

https://www.itis.gov/servlet/SingleRpt/SingleRpt?search_topic=TSN&search_value=1027283#null . Tanggal akses 13 Februari 2019.

Kementerian Kesehatan RI. 2015. Riset Khusus Eksplorasi Pengetahuan Lokal

Etnomedisin dan Tumbuhan Obat Berbasis Komunitas di Indonesia . Kementerian Kesehatan RI, Jakarta.

34

Koch, M., Kehop, D. A., Kinminja, B., Sabak, M., Wavimbukie, G., Barrows, K. M., Matainaho, T. K., Barrows, L. R., and Rai, P. P. 2015. An ethnobotanical survey of medicinal plants used in the East Sepik province of Papua New Guinea. J. Ethnobiol. Ethnomedic. 11 (79): 1-26.

Nuraini, Syamsuardi, dan Arbain, A. 2013. Tumbuhan Ficus L. (Moraceae) di hutan konservasi Prof. Soemitro Djojohadikusumo, PT. Tidar Kerinci Agung (TKA),

Sumatera Barat. J. Bio. UA. 2 (4): 235-241.

Nurrohman, Oman. 2011. Potensi Tumbuhan Berguna Pada Areal HCV (High Conservation Value) di Perkebunan Kelapa Sawit Kabupaten Ketapang,

Kalimantan Barat. Skripsi. Institut Pertanian Bogor, Bogor.

Plant Data Base. Donax canniformis (G. Forst.) K. Schum. https://plants.sc.egov.usda.gov/core/profile?symbol=DOCA5. Tanggal

akses 13 Februari 2019.

Pratap, S. S. 2015. A brief study on Streblus asper L.- A Review. Research Journal of

Phytomedicine 01(02): 65-71.

Rahayu, M., Sunarti, S., Sulistiarini, D., dan Prawiroatmodjo, S. 2006. Pemanfaatan Tumbuhan Obat secara Tradisional oleh Masyarakat Lokal di Pulau

Wawonii, Sulawesi Tenggara. Biodiversitas 7 (3): 245-250.

Sirinthipaporn, A. and Jiraungkoorskul, W. 2017. Wound Healing Property Review of

Siam Chromolaena odorata. Pharmacogn. Rev. 11 (21): 35-38.

Suksthan, P., Madulid, D. A., and Borchsenius, F. 2010. Marantaceae in the Philippines. Taiwania 55(1): 28-36.

Sunarty, S., Arief H, Rugayah, 2008. Keanekaragaman Tumbuhan di Hutan Pegunungan Waworete, Kecamatan Wawonii Timur, Pulau Wawonii, Sulawesi Tenggara. Biodiversitas 9 (3): 194-198.

Susiarti, S. dan Setyowati, F. M. 2005. Bahan Rempah Tradisional dari Masyarakat Dayak Kenyah di Kalimantan Timur. Biodiversitas 6 (4): 285-287.

Susilo, A. dan Denny. 2016. Keragaman tumbuhan dan potensi pemanfaatannya di kawasan hutan alam sekunder RPH Cisujen KPH Sukabumi, Jawa Barat. Prosiding Seminar Nasional Masyarakat Biodiversitas Indonesia . Jawa Barat,

Indonesia, Vol. 2 (2): 256-262.

35

Udayan, P.S., Raghu A.V., Sreekumar V.B., and Muraleedaran, E.M. 2014. A New Variety Of Salacia (Celastraceae) From the Western Ghats Of Kerala, South India. International Journal of Plant, Animal and Encironmental Sciences 4 (3): 100-103.

36

BAB IV METABOLIT SEKUNDER

umbuhan berpotensi menghasilkan senyawa-senyawa

kimia yang berguna dibidang kesehatan. Metabolit pada

makhluk hidup dibagi menjadi metabolit primer dan metabolit

sekunder. Metabolit primer merupakan metabolit pembatas (chemical

building block) untuk memproduksi metabolit sekunder. Pada

umumnya tumbuhan mengandung metabolit sekunder, beberapa

diantaranya terdapat dalam jumlah terbatas, dan beberapa diantara

lainnya terdapat dalam satu famili, serta ada tumbuhan tertentu yang

dapat menghasilkan metabolit spesifik yang tidak ditemukan pada

tumbuhan lainnya. Pemanfaatan tumbuhan yang berpotensi

menghasilkan senyawa-senyawa kimia yang berguna dibidang

kesehatan terus dikembangkan oleh para peneliti. Tumbuhan dapat

menghasilkan senyawa metabolit primer dan metabolit sekunder dari

serangkaian proses jalur metabolisme (pathway metabolism) (Gambar

4.1). Metabolit primer terlibat secara langsung dalam pertumbuhan

dan perkembangan tumbuhan. Sementara itu, metabolit sekunder

tidak terlibat dengan pertumbuhan dan perkembangan tumbuhan,

tetapi metabolit sekunder memiliki fungsi sebagai pertahanan diri

untuk melawan predator, parasit, dan penyakit.

T

57

FPP dan dikatalisis oleh enzim squalen sintase menghasilkan senyawa

squalen. Selanjutnya senyawa ini dikatalisis oleh enzim squalen

epoksidase menjadi 2,3-oksidosqualen (squalen epoksid). Proses ini

merupakan langkah awal dalam mengkonversi rantai squalen C30

menjadi kerangka sterol tetrasiklik. Selanjutnya enzim 2,3-

oksidosqualen siklase mengubah senyawa 2,3-oksidosqualen menjadi

lanosterol yang merupakan prekursor untuk semua struktur steroid.

Setelah itu juga terjadi beberapa transformasi untuk membentuk

senyawa kolesterol pada mamalia dan ergosterol pada

trypanosomatida dan jamur (Souza and Rodrigues, 2009).

Referensi:

Abdallah, I. I., and Quax, W. J. 2017. A Glimpse into the Biosynthesis of Terpenoids. Natural Resources and Life Sciences. Conference Proceedings. Netherlands,

Vol. 2017:81-89.

Aniszewski, T. 2007. Alkaloids – Secrets of Life. Elsevier, Amsterdam.

Anulika, N. P., Ignatius, E. O., Raymond, E. S., Osasere, O. I., and Abiola, A. H. 2016. The Chemistry of Natural Product: Plant Secondary Metabolites. Inter. J. of Tech. Enhanhc. and Emerg. Engineer. Res. 4 (8): 1-8.

Barnes, J., Anderson, L. A., and Phill ipson, J. D. 2007. Herbal Medicines Third edition. Pharmaceutical Press, London.

Compean, K. L., and R. A. Ynalvez. 2014. Antimicrobial Activity of Plant Secondary Metabolites: A Review. Res. J. Med. Plant, 8 (5): 204-213.

Cook, N. C. and Samman, S. 1996. Flavonoid-Chemistry, metabolism, cardioprotective effects, and dietary sources. J. Nutr. Biochem. Rev. 7:66-76.

58

Costa, T.A., Vieira, R.F., Bizzo, H. R., Si lveira, D. and Gimenes, M.A. 2012. Chromatography and its Applications. In Thech, Europe.

Cowan, M. M. 1999. Plant Products as Antimicrobial Agents. Clin. Microbiol. Rev. 12

(4): 564-582.

Dewick, P. M. 2002. Medicinal Natural Products: A Biosynthetic Approach Second

Edition. John Wiley and Sons, UK.

Farnsworth, N.R. 1966. Biological and Phytochemical Screening of Plants. J. Pharma. Sci. 55 (3): 225-276.

Gross, G.G. 1992. Enzymes in the Biosynthesis of Hydrolyzable Tannins, p.43 -60. In Plant Polyphenols Synthesis, Properties, Significance (Eds: R. W. Hemingway and P. E. Laks). Plenum Press, New York.

Harborne, J. B. 1973. Phytochemical Methods. Chapman and Hall in association, USA.

Heinrich, M., Barnes, J., Gibbons, S., dan Will iamson, E. M. 2009. Farmakognosi dan Fitoterapi. EGC, Jakarta.

Hostettmann, K. and Marston, A. 1995. Saponins. Cambridge University Press,

Cambridge.

Jones, W.P. and Kinghorn, A.D. 2012. Extraction of Plant Secondary Metabolites.

Methods Mol. Biol. 20: 323-351.

Mendoza, N. and Silva, E. M. E. 2018. Introduction to Phytochemichals: Secondary Metabolites from Plants with Active Principles for Pharmacological

Importance, p.25-47. In Phytochemical – Source of Antioxidant and Role in Disease Prevention (Eds: T. Asao and M. Asaduzzaman). Intech Open, London.

Panche, A. N., Diwan, A. D., and Chandra, S. R. 2016. Flavonoids: an overview. Journal of Nutritional Science 5 (47): 1-15.

Robinson, T. 1995. Kandungan Organik Tumbuhan Tinggi. Terjemahan dari The Organic Constituents of Higher Plants , oleh Kosasih Padmawinata, ITB, Bandung.

Saifudin, A. 2014. Senyawa Alam Metabolit Sekunder Teori, Konsep, dan Teknik Pemurnian. Deepublish, Yogyakarta.

59

Sandjo, L. P. and Kuete, V. 2013. Triterpenes and Steroids from the medical Plants of Africa. Medical Plant Research in Africa, p.136-202.

Souza, W. and Rodrigues, J. C. F. 2009. Sterol Biosynthesis Pathway as Target for Anti -

trypanosomatid Drugs – A Review. Interdiscliplinary Perspectives on Infections Diseases, 2009: 1-19.

Sultan, A. and Raza, A. R. 2015. Steroids : A Diverse Class of Secondary Metabolites. Med. Chem. 5 (7): 310-31.

60

BAB V METODE PENGUJIAN

5.1. Teknik Pengambilan Sampel

ampel tumbuhan di kawasan Ie Brôk yang terletak di

bagian utara Gunung Api Seulawah Agam, tepatnya di Desa

Meurah, Kecamatan Mesjid Raya, Kabupaten Aceh Besar diambil

berdasarkan lokasi manifestasi geotermal. Pengambilan sampel

tumbuhan dilakukan disekitar lokasi manifestasi geotermal. Ada dua

lokasi manifestasi geotermal dikawasan Ie Brôk yaitu lokasi B1 dan B2.

Lokasi B1 selanjutnya dibagi menjadi dua area pengambilan sampel

yaitu B1-1 dan B1-2, sementara, lokasi B2 menjadi B2-1 dan B2-2 (Gambar

5.1). Penamaan Ie Brôk berasal dari Bahasa Aceh, dimana Ie artinya air,

sementara Brôk artinya busuk. Air dikawasan manifestasi ini

mengeluarkan bau atau aroma busuk akibat semburan belerang.

Untuk memudahkan dalam pengamatan selanjutnya keempat lokasi

ini ditentukan titik koordinanya dengan menggunakan sistem GPS

(Global Positioning System) untuk menentukan posisi Lintang Utara

(LU) dan Bujur Timur (BT) serta ketinggian lokasi meter diatas

permukaan laut (mdpl). Area B1-1 terletak pada titik koordinat GPS

05º31’04.8” LU dan 095º37’01.7” BT dengan ketinggian 209 mdpl (di

atas permukaan laut), area B1-2 terletak pada titik koordinat GPS

S

84

menggunakan jangka sorong (mm) (Singh et al., 2018). Hasil

pengukuran zona hambat tersebut diinterpretasikan berdasarkan

kategori zona hambat pertumbuhan mikroba seperti pada Tabel 5.1.

Tabel 5.1. Kategori diameter zona hambat antibakteri dan antijamur

Kategori aktivitas

Diameter zona hambat (mm)

Zona hambat antibakteri

Zona hambat antijamur

Lemah 6-10 8-13

Sedang 11-20 14-19

Kuat 21-30 20-25 Sangat kuat >30 >25

Sumber: Morales et al. (2003); Sytykiewicz et al.(2015)

Referensi:

Balouiri, M., Sadiki, M., and Ibnsouda, S. K. 2016. Methods for in vitro evaluating antimicrobial activity: A review. J. Pharmaceutical Analysis 6: 71-79.

Bismark, M. 2011. Prosedur Operasi Standar (SOP) untuk Survei Keragaman Jenis pada Kawasan Konservasi. Badan Penelitian dan Pengembangan Kehutanan, Bogor.

Compean, K. L., and Ynalvez, R. A. 2014. Antimicrobial Activity of Plant Secondary Metabolites: A Review. Res. J. Med. Plant 8 (5): 204-213.

Depkes RI. 1977. Materia Medika Indonesia Jilid 1 dan 2. Direktorat Jenderal

Pengawasan Obat dan Makanan, Jakarta.

Dewanjee, S. Gangopadhyay, M., Bhattacharya, N., Khanra, R., and Dua, T. K. 2015.

Bioautography and its scope in the field of natural product chemistry. J. Pharmaceutical Analysis 5 (2): 75-84.

Harborne, J. B. 1973. Phytochemical Methods. Chapman and Hall in association, USA.

Idroes, R., Khairan, dan Fakri, F. 2017. Skrining Aktivitas Tumbuhan yang Berpotensi sebagai Bahan Antimikroba di Kawasan Ie Jue (Upflow Geothermal Zone) Aceh Besar. Syiah Kuala University Press, Banda Aceh.

85

Jorgensen, J.H. and Ferraro, M. J. 2009. Antimicrobial Susceptibil ity Testing: A Review of General Principles and Contemporary Practices. Medical Microbiology 49: 1749-1755.

Misna dan Diana, K. 2016. Aktivitas Antibakteri Ekstrak Kulit Bawang Merah (Allium cepa L.) Terhadap Bakteri Staphylococcuc aureus. Galen. J. of Pharm. 2 (2): 138-144.

Morales, G., Sierra, P., Mancilla, A., Paredes, A., Loyola, L.A., Gallardo, O., and

Borquez J. 2003. Secondary Metabolites From Four Medicinal Plants From Northern Chile: Antimicrobial Activity And Biotoxicity Against Artemia

salina. J. Chil. Chem. Soc. 49 (1): 44-49. Najib, A. 2018. Ekstraksi Senyawa Bahan Alam. Deepublish, Yogyakarta.

Prasetyo dan Inoriah, E. 2013. Pengelolaan Budidaya Tanaman Obat-obatan (Bahan Simplisia). Badan Penerbitan Fakultas Pertanian UNIB, Bengkulu.

Safitri, R. dan Novel, S. S. 2010. Medium Analisis Mikroorganisme. Trans Info Media, Jakarta.

Sandjo, L. P. and Kuete, V. 2013. Triterpenes and Steroids from the medical Plants of

Africa. Medical Plant Research in Africa, p. 136-202. Singh, A., Tiwari, A., Bajpai, J., and Bajpai, A. K. 2018. Polymer-Based Antimicrobial

Coatings as Potential Biomaterials : From Action to Application, p. 27-61. In Handbook of Antimicrobial Coating (Eds: Atul Tiwari). Matthew Deans, USA.

Sytykiewicz, H., Chrzanowski, G., Czerniewicz, P., Leszczynski, B., Sprawka, I.,

Krzyzanowski, R., and Matok H. 2015. Antifungal Activity of Juglans regia (L.) Leaf Extracts Against Candida albicans Isolates. Pol. J. Environ. Stud. 24 (3): 1339-1348.

Xu, L., Wang, F., Shen, Y., Hou, H., Liu, W., Liu, C., Jian, C., Wang, Y., Sun, M., and Sun, Z. 2014. Pseudomonas aeruginosa inhibits the growth of pathogenic fungi: In vitro and in vivo studies. Experimental and Therapeutic Medicine 7: 1516-

1520. Yadav, R. N. S. and Agarwala, M. 2011. Phytochemical analysis of some medicinal

plants. J. of Phytol. 3 (12): 10-14.

World Health Organization. 2003. Manual for the Laboratory Identification and

Antimicrobial Susceptibility Testing of Bacterial Pathogens of Public Health

86

Importance in the Developing World. Centers for Disease Control and Prevention, USA.

World Health Organization. 2009. Laboratory Manual For Diagnosis Of Fungal

Opportunistic Infections In HIV/AIDS Patients. Regional Office for South-East Asia.

87

BAB VI REIDENTIFIKASI MIKROBA

eidentifikasi mikroba dilakukan untuk memastikan bahwa

mikroba yang digunakan pada penelitian ini adalah

mikroba yang diinginkan, yaitu bakteri Staphylococcus aureus (S.

aureus), Escherichia coli (E. coli), dan jamur Candida albicans (C.

albicans). Reidentifikasi terhadap bakteri S. aureus meliputi uji

pewarnaan Gram dan uji Katalase, sementara itu bakteri E. coli

meliputi uji pewarnaan Gram, uji TSIA (Triple Sugar Iron Agar), dan uji

SCA (Simmons Citrate Agar) sedangkan jamur C. albicans hanya

pewarnaan Gram saja. Pengujian terhadap reidentifikasi mikroba ini

tidak dilakukan secara spesifik dengan beberapa uji lainnya

dikarenakan telah adanya sertifikat mikroba yang menjadi acuan

keakuratan mikroba yang digunakan tersebut.

6.1. Bakteri Staphylococcus aureus

6.1.1. Pewarnaan Gram

Prosedur yang dilakukan yaitu mencuci kaca objek dengan

alkohol 70% dan dikeringkan di atas pembakaran spiritus. Bakteri

dioleskan pada kaca preparat tersebut menggunakan jarum Ose yang

telah dipijarkan dan didinginkan. Preparat difiksasi diatas nyala api

R

96

gambaran seperti sekumpulan jamur dalam bentuk blastospora, hifa

atau pseudohifa, atau campuran keduanya (Mutiawati, 2016).

6.3.2. Hasil Reidentifikasi Jamur Candida albicans

Hasil yang diperoleh yaitu morfologi jamur berbentuk oval yang

didominasi oleh warna ungu. Sel jamur C. albicans mampu

mempertahankan kompleks kristal violet-iodin karena memiliki

lapisan peptidoglikan yang tebal di dinding sel (Haw et al., 2013). Hasil

ini positif terhadap jamur C. albicans (Gambar 6.3). Bukti bahwa jamur

yang digunakan adalah C. albicans juga dapat dilihat pada Lampiran 2.

Gambar 6.3. Hasil uji reidentifikasi C. albicans dengan pewarnaan Gram

Referensi:

Bhavan, P. S., Rajkumar, R., Radhakrishnan, S., Seenivasan, C., Kannan, S. 2010. Culture and Identification of Candida albicans from Vaginal Ulcer and

Separation of Enolase on SDS-PAGE. Inter. J. Biol. 2 (1): 84-93.

Brooks, G. F., Carroll, K. C., Butel, J. S., Morse, S. A., and Mietzner, T. A. 2013. Jawetz, Melnick & Adelberg's Medical Microbiology 26th ed. McGraw-Hill Company,

New York.

Hadioetomo, R.S. 1990. Mikrobiologi Dasar dalam Praktek. Gramedia, Jakarta

97

Haw, B. P., Asma, I., Eugene, O. and Sasidharan, S. 2013. Phenotyping identification of Candida albicans for the production of in house helicase for nucleic acid-based detections for fast diagnosis. Res. J. Pharm. Biol. Chem. Sci. 4 (2): 576-583.

Joel, T. J. and Sreejit, N. 2016. Antimicrobial Assay of Medicinal Plant Extracts Against

Oral Pathogens. Int. J. Pharm. Bio. Sci. 7 (1): 610-621.

Mutiawati, V. K. 2016. Pemeriksaan Mikrobiologi pada Candida albicans. Jurnal

Kedokteran Syiah Kuala 16 (1): 53-63.

Percival, S. T. and Will iams, D. W. 2014. Escherichia coli. Microbiology of Waterborne Diseases p.89-117. UK.

Safitri, R. dan Novel, S. S. 2010. Medium Analisis Mikroorganisme. Trans Info Media,

Jakarta. Safitri, R., Novel, S. S., dan Wulandari, A. P. 2010. Praktikum Mikrobiologi Dasar.

Trans Info Media, Jakarta. Zimbro, M. J., Power, D. A., Miller, S. M., Wilson, G. E., Johnson, J. A. 2009. DifcoTM

and BBLTM Manual, Manual of Microbiological Culture Media Second

Edition. Becton, Dickinson and Company, United States of America.

98

BAB VII HASIL UJI MAKROSKOPIK DAN

MIKROSKOPIK TUMBUHAN KAWASAN IE BRÔK

7.1. Hasil Makroskopik dan Mikroskopik Tumbuhan Kawasan Ie Brôk

engamatan makroskopik dan mikroskopik dilakukan

terhadap simplisia tumbuhan kawasan Ie Brôk, yang

bertujuan untuk mengetahui karakteristik spesifik dari masing-masing

simplisia tersebut. Pengamatan makroskopik dilakukan secara visual

untuk mengetahui morfologi tumbuhan, sedangkan mikroskopik

dilakukan dengan menggunakan mikroskop untuk mengetahui

fragmen pengenal masing-masing simplisia menggunakan perbesaran

40x.

7.1.1. Hasil Pengamatan Makroskopik

Hasil pengamatan secara makroskopik menunjukkan bahwa

simplisia daun D. canniformis (G. Forst.) K. Schum memiliki bentuk

daun yang lonjong, bentuk pinggiran daun bergulung, berwarna hijau

pudar, mudah rapuh, dan bau seperti daun pada umumnya, sedangkan

kulit batangnya memiliki bentuk kulit batang yang licin, berwarna hijau

P

109

Tabel 7.5. Hasil pengamatan mikroskopik sel parenkim, pembuluh kayu (xylem), dan trakea

Nama Tumbuhan

Bagian Gambar Pengamatan

Sel parenkim Pembuluh

kayu Trakea

S. asper Lour.

Kulit Batang

td td

A. montanum Blume

Kulit Batang

td

Keterangan: td = tidak diidenfikasi

Referensi:

Susilowati, S. M. E. 2006. Anatomi Tumbuhan. Kanisius. Yogyakarta.

110

BAB VIII HASIL UJI SKRINING TUMBUHAN

KAWASAN IE BRÔK

8.1. Hasil Skrining Fitokimia Tumbuhan Kawasan Ie Brôk

krining fitokimia yang diidentifikasi meliputi senyawa

alkaloid, flavonoid, saponin, steroid, triterpenoid, dan

tanin yang diuji secara kualitatif menggunakan larutan pereaksi. Hasil

yang diperoleh berdasarkan perubahan warna maupun endapan yang

terjadi antara ekstrak sampel tumbuhan dengan pereaksi pada

masing-masing uji. Hasil skrining fitokimia pada penelitian ini

menunjukkan hasil yang berbeda-beda pada setiap jenis tumbuhan di

kawasan Ie Brôk yang dapat dilihat pada Tabel 8.1.

Tabel 8.1. Hasil Skrining fitokimia ekstrak n-heksana, etil asetat, dan etanol sampel tumbuhan

Nama Tumbuhan

Bagian Ekstrak Kandungan Fitokimia

A F S T St Tt

D. canniformis (G. Forst.) K. Schum.

Daun

n-heksana - - - + + -

etil asetat - - - + + - Etanol + - + + - +

Kulit Batang

n-heksana - - - - + - etil asetat - - - + - +

Etanol + - - + + -

S. albicans (Blume) J.J.Sm.

Daun n-heksana - - - - + - etil asetat - - - + + -

Etanol - - + + + -

S

126

Gambar 8.1. Diameter zona hambat; (a) ekstrak etil asetat kulit batang D. canniformis (G. Forst.) K. Schum. terhadap bakteri S. aureus, (b) ekstrak etil asetat daun S. albicans (Blume) J.J.Sm. terhadap bakteri S. aureus, (c) ekstrak etil asetat daun S. albicans (Blume) J.J.Sm. terhadap bakteri E. coli, (d) zona hambat ekstrak etil asetat kulit batang F. dimorpha King terhadap bakteri S. aureus, (e) zona hambat ekstrak etil asetat kulit batang F. dimorpha King terhadap bakteri E. coli, (f) zona hambat ekstrak etanol daun A. montanum Blume terhadap S. aureus, (g) zona hambat ekstrak etil asetat daun Salacia sp terhadap bakteri S. aureus, (h) zona hambat ekstrak etanol kulit batang S. asper Lour terhadap bakteri S. aureus, (i) zona hambat etil asetat daun Salacia sp terhadap E. coli, (j) zona hambat ekstrak etil asetat C. odorata (L.) R.M.King & H.Rob terhadap bakteri S. aureus, (k) zona hambat ekstrak etanol daun A. montanum Blume terhadap E. coli, (l) zona hambat yang dihasilkan oleh ekstrak etil asetat dan etanol daun Salacia sp terhadap jamur C.albicans.

Keterangan gambar :1 = ekstrak n-heksana; 2 = pelarut n-heksana (kontrol negatif); 3 = ekstrak etil asetat; 4 = pelarut etil asetat (kontrol negatif); 5 = ekstrak etanol; 6 = pelarut etanol (kontrol negatif); 7 = suspensi ciprofloxacin (kontrol positif).

Referensi:

Chaffin, W. L., Martinez, J. P., Gil, M. L., Lopez-Ribot, J. L. 1998. Serological Response

to Cell Wall Mannoproteins and Protein of Candida albicans. Clin. Microbiol. Rev. 11 (1): 121-141.

127

Farnsworth, N.R. 1996. Biological and phytochemical screening of plants. J. Pharm. Sci. 55 (3):225-276.

Kukula-Koch, W. A. and Widelski, J. 2017. Alkaloids, p.163-198. In Pharmacognosy

(Eds: S. Badal and R. Delgoda). Academic Press, United States.

Marliana, S. D., Suryanti, V., dan Suyono. 2005. Skrining Fitokimia dan Analisis

Kromatografi Lapis Tipis Komponen Kimia Buah Labu Siam (Sechium edule Jacq. Swartz.) dalam Ekstrak Etanol. Biofarmasi 3 (1): 26-31.

Maroszyńska, M., Kunicka-Styczyńska, A., Rajkowska, K. and Maroszyńska, I. 2013.

Antibiotics sensitivity of Candida cl inical and food-borne isolates. Acta Biochim. Pol. 60 (4): 719-724.

Prayoga, E. 2013. Perbandingan Efek Ekstrak Daun Sirih Hijau (Piper betle L.) dengan

Metode Difusi Disk Sumuran terhadap Pertumbuhan Bakteri Staphylococcus aureus. Skripsi. Universitas Islam Negeri Syarif Hidayatullah, Jakarta.

Quan-zhen Lv, Lan Yan, and Yuan-ying Jiang. 2016. The synthesis, regulation, and functions of sterols in Candida albicans: Well-known but stil l lots to learn. Virulence 7 (6): 649-659.

Robinson, T. 1995. Kandungan Organik Tumbuhan Tinggi. Terjemahan dari The Organic Constituents of Higher Plants , oleh Kosasih Padmawinata, ITB, Bandung.

Sangi, M. S., Momuat, L. I., dan Kumaunang, M. 2012. Uji Toksisitas dan Skrining Fitokimia Tepung Gabah Pelepah Aren (Arenga pinnata). Jurnal Ilmiah Sains 12 (2): 127-134.

Sieniawska, E. and Baj, T. 2017. Tannins, p.199-232. In Pharmacognosy (Eds: S. Badal and R. Delgoda). Academic Press, United States.

Sytykiewicz, H., Chrzanowski, G., Czerniewicz, P., Leszczynski, B., Sprawka, I., Krzyzanowski, R., and Matok H. 2015. Antifungal Activity of Juglans regia (L.) Leaf Extracts Against Candida albicans Isolates. Pol. J. Environ. Stud. 24 (3):

1339-1348.

Taleb-Contini, S. H., Salvador, M. J., Watanabe, E., Ito, I. Y., and Olievera, D. C. R. 2003. Antimicrobial Activity of Flavonoids and Steroids Is olated from Two

Chromolaena species. Brazilian J. Pharmaceu. Sci. 39 (4): 403-408.

128

Woźniak, L., Skapska, S., and Marzalek, K. 2015. Ursolic Acid -A Pentacyclic Triterpenoid with a Wide Spectrum of Pharmacological Activities. Molecules. Rev. 20 (11): 20614-20641.

129

BAB IX PENUTUP

9.1. Kesimpulan

erdasarkan hasil dari uraian diatas, maka dapat

disimpulkan bahwa:

1. Tumbuhan di kawasan Ie Brôk mempunyai aktivitas sebagai

antimikroba, terutama sebagai antibakteri. Hanya daun dari

tumbuhan Salacia sp yang memiliki aktivitas antijamur

terhadap C. albicans ATTC 10231 dengan kategori diameter

zona hambat sangat kuat (>20 mm).

2. Kandungan metabolit sekunder ekstrak n-heksana, etil asetat,

dan etanol tumbuhan di kawasan Ie Brôk umumnya

mengandung senyawa tanin dan steroid.

3. Tumbuhan yang mempunyai aktvitas sebagai antimikroba di

kawasan Ie Brôk didominasi oleh tumbuhan berpohon, perdu,

dan herba.

9.2. Kepentingan Monograf

Biodiversitas spesies yang tersebar dipermukaan bumi kini

terancam punah, karena adanya aktivitas manusia yang dapat

mengganggu kelangsungan hidup keanekaragaman hayati.

B