laporan praktikum ekologi perairan

laporan praktikum EKOLOGI PERAIRAN

PENDAHULUAN

LatarBelakangKata ekologi pertama kali diperkenalkan oleh Ernest Haeckel, ahli Biologi Jerman pada tahun 1869. Arti kata Olkos yang berarti rumah atau tempat tinggal dan logos bersifat telaah dan studi. Jadi Ekologi didefinisikan sebagai “ilmu yang mempelajari hubungan timbal – balik antara makhluk hidup dengan lingkungannya”. Yang dimaksud makhluk hidup adalah “kelompok” dari makhluk hidup itu sendiri (Resosoedarmo, et al., 1990).Menurut Efendi (2003) dalam Apridayanti (2008), menyatakan air menutupi sekitar 7% permukaan bumi dengan jumlah sekitar 1368 juta Km3. Air terdapat berbagai bentuk, misalnya uap air, es, cairan dan salju. Air tawar terutama terdapat di sungai, danau, air tanah dan gunung es.Semua badan air di daratan dihubungkan dengan laut dan atmosfer melalui siklus hidrologi yang berlangsung secara kontinyu.Sungai merupakan suatu sitem yang dinamis dengan segala aktivitas yang berlangsung antara komponen-komponen lingkungan yang terdapat di dalamnya .Adanya dinamika tersebut akan menyebabkan suatu sungai berada dalam keseimbangan ekologis sejauh sungai tidak menerima bahan-bahan asing ini dapat ditolerir dan kondisi keseimbangan masih tetap dapat dipertahankan (Barus, 2002).

Tujuan PraktikumTujuan dari pratikum ini adalah untuk melatih dan meningkatkan kemampuan siswa dalam :

Keterampilan Kognitif :Komparansi antara teori dan kondisi di lapanganPengintegraian pemahaman berbagai teoriPenerapan teori pada keadaan nyatadi lapanganKeterampilan Afektif :Perencanaan kegiatan secara mandiriKemampuan kerja samaPengkomunikasian hasil belajarKeterampilan Psikomotrik :Penguasaan pemasangan peralatanPenggunaan peralatan dan instrument tertentuKegunaan Praktikum

Kegunaan dari pratikum ini adalah :Mengenalkan sekaligus menumbuhkan rasa empati mahasiswa terhadap ekosistem sungai

dan ekosistem kolamMeningkatkan kemampuan teknis dalam mengukur parameter kimia dan biologiBagi peneliti atau lembaga ilmiah, sebagai sumber informasi keilmuan dan dasar untuk

penulisan ataupun penelitian lebih lanjut berkaitan dengan ekosistem sungai dan ekosistem kolam

Waktu dan TempatKegiatan praktikum Ekologi Perairan dilakukan di lapang dan di laboratorium.Praktikum lapang Ekologi Perairan dilaksanakan pada tanggal 03 Mei 2014 pukul 07.00 – 12.00 WIB dilaksanakan

di mata air Sumber Awan Kecamatan Singosari, Kabupaten Malang. Praktikum laboratorium Ekologi Perairan dilaksanakan pada tanggal 04 Mei 2014 pukul 09.45 – 12.00 WIB di laboratorium Reproduksi Ikan, Pembenihan Ikan, dan Pemuliaan Ikan Gedung D Lantai 1 Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan Universitas Brawijaya Malang.

2. TINJAUAN PUSTAKA

2.1 Pengertian Ekologi PerairanEkologi adalah ilmu pengetahuan tentang hubungan antara organism dan lingkungannya. R.ester mengemukakan istilah tersebut pada tahun 1865 (Kormandy, 1965) dengan menggabungkan dua kata dari bahasa Yunani, logos yang berarti pengetahuan tentang dan oikos yang berarti rumah. Dua kata ini yang membedakan dari ilmu-ilmu yang lainnya.Haeckel mendefinisikan ekologi sebagai suatu keseluruhan pengetahuan yang berkaitan dengan hubungan-hubungan total antara organism dengan lingkungannya yang bersifat organic maupunanorganik (Wolf, et al., 1998).Biasanya ekologi didefinisikan sebagai suatu studi hubungan organism atau grup-grup organism dengan lingkungannya. Ekologi menyangkut aspek biologi dari kelompok-kelompok organisme serta fungsinya, sehingga dalam pandangan ekologi modern, ekologi didefinisikan sebagai suatu studi struktur dan fungsi alam, dalam hal ini manusia merupakan bagian dari alam (Batu, 1983).2.2 Ciri-Ciri Ekologi SungaiMenurut Barus (2002), ekosistem lotik atau sungai dibagi menjadi beberapa. Zona dimulai dengan zona krenal (mata air) yang umumnya terdapat di daerah hulu dan yang selanjutnya aliran dan beberapa mata air akan membentuk di pegunungan yang disebut zona rithal, ditandai relief aliran sungai yang terjal. Adanya perbedaan keterjalan dan topografi aliran sungai menyebabkan kecepatan arus mulai dari daerah hulu sampai hilir akan bervariasi. Daerah hulu ditandai dengan kecepatan arus yang tinggi dan kecepatan arus tersebut akan berkurang pada aliran sungai yang mendekati daerah hilir.Menurut Odum (1993) menyatakan bahwa, pada umumnya, perbedaan antara aliran air dan kolam berputar disekitar 3 kondisi :

Arus adalah factor yang paling mengendalikan dan merupakan factor pembatas di aliran air.

Pertukaran tanah – air relative lebih ekstensif pada aliran air yang menghasilkan ekosistem yang lebih “terbuka” dan suatu metabolisme komunitas tipe “heterotrofik”

Tekanan oksigen biasanya lebih merata dalam aliran air dan stratifikasi termal maupun kimiawi akan dapat diabaikan2.3 Ciri-Ciri Ekologi KolamKolam adalah daerah perairan yang kecil dimana zona litoralnya relative besar dan daerah limnetic serta profundal kecil atau tidak ada. Stratifikasi tidak terlalu penting. Kolam dapat dijumpai di kebanyakan daerah dengan curah hujan yang cukup.Kolam-kolam terus-menerus terbentuk, contohnya bila aliran berpindah, meninggalkan bekas aliran terisolasi sebagai perairan tergenang (Odum, 1993).Jika kita mengamati kolam secara keseluruhan sebagai suatu ekosistem, maka dapat dibutuhkan bahwa kolam bukan hanya tempat tumbuhan dan hewan. Akan tetapi, tumbuhan dan hewan tersebut turut dapat serta membentuk suatu system dalam kolam, jadi ada hubungan biotic dan abiotic (Batu, 1993).Ciri-ciri ekologi tawar adalah antara lain variasi suhu tidak mencolok, penetrasi cahaya kurang, dan dipengaruhi oleh iklim dan cuaca. Macam kebutuhan yang terbanyak adalah ganggang, sedangkan yang lainnya adalah tumbuhan biji. Hampir semua filum hewan terdapat dalam air tawar. Organisme yang di air tawar biasanya bersel satu dan dinding selnya kuat (Rifqi, 2009).2.4 Siklus HidrologiMenurut Irwan (1994), sebagian besar (98,6%) terdapat di laut, sebagian lainnya sekitar 1,2 % terdapat di gunung –gunung es di kutub, kurang 0,001% air terdapat di atmosfer. Air hujan jatuh kemana-mana di bumi ini dalam beberapa cara. Sebagian besar ada yang bertahan untuk sementara di tempat jatuhnya semula(di atas tanah), kemudian kembali ke atmosfer oleh penguapan (evaporasi) dan transportasi tumbuhan. Sebagian lagi mencari jalan ke tempat yang lebih rendah dan akhirnya sampai ke sungai yang disebut air larian. Ada pula yang meresap ke dalam tanah, yang kemudian air tanah.Air tanah maupun air larian (sungai). Ini pun sebagian akan kembali ke atmosfer melalui penguapan dan transpirasi tumbuhan. Disini terlihat bahwa air yang ada di atmosfer selalu dipengaruhi melalui penguapan dan jasa baik tumbuhan.Bila air hujan jatuh di tanah, segera menguap kembali ke udara. Dari air yang tidak segera menguap diantaranya ada yang diserap tanaman atau diminum hewan, ada yang run off (mengalir) pada permukaan tanah menjadi aliran air atau danau dan ada yang menembus tanah ke tingkat air di bawah. Air pada aliran air dan danau maupun air sub permukaan kemudian mengalir ke laut. Terdapat evaporasi konstan dari aliran air, sungai kecil, danau dan laut. Energi untuk evaporasi ini sebagian besar berasal dari radiasi matahari langsung maupun tidak langsung (Heddy, et al.,1997).

(Google Image, 2014)2.5 Rantai MakananRantai makanan merupakan perpindahan energi makanan dari sumberdaya tumbuhan melalui seri organisme atau melalui jalur makan-memakan (tumbuhan-herbivora-carnivora). Pada setiap tahap pemindahan 80-90% energi potensial hilang sebagai panas, karena itu langkah-langkah dalam rantai makanan terbatas 4-5 langkah saja. Dengan kata lain dapat disebutkan bahwa semakin pendek rantai makanan, makin besar energi tersedia (Heddy et al.,1994). Menurut Resosoedarmo, et al (1990) menyatakan bahwa, semakin pendek rantai pangan ini semakin dekat jarak antara organisme pada permukaan dan organisme pada ujung rantai dan semakin besar pula energi yang dapat disimpan dalam tubuh.Energi pangan sumberdaya di dalam tumbuh-tumbuhan melalui satu seri organisme dengan diulang-ulang dimakan dan memakan dinamakan rantai makanan. Rantai-rantai pangan terdiri

dari dua tipe dasar, rantai pangan rerumputan yang mulai dari dasar tumbuh-tumbuhan hijau herbivora yang merumput dan terus ke karnivora dan rantai pangan sisa, yang dimulai dari bahan-bahan mati ke mikroorganisme dan kemudian yang pemakan detrivora dan pemangsanya (Odum, 1993).

(Google Image, 2014)2.6 Hubungan Interaksi Antar Organisme

Menurut Odum (1993), terdapat 9 interaksi penting yaitu :Neutralisme, dimana tidak ada satupun populasi yang terpengaruhi oleh asosiasi dengan

lain.Tipe persaingan yang saling menghalangi (mutual inhibition competition type) dalam

mana kedua populasi secara aktif saling menghalang-halangi.Tipe persaingan penggunaan sumberdaya di dalam mana tiap populasi mempunyai

pengaruh merugikan yang lain dalam perjuangannya untuk memperoleh sumber-sumber yang persediaannya berada pada kekurangan.

Amansalisme, didalam mana satu populasi dihalang-halangi sedangkan yang lainnya tidak terpengaruhi.

Parasitisme, dimana bila salah satu organisme hidup pada organisme lain dan mengambil makanan dari inangnya sehingga bersifat merugikan inangnya.

Pemangsaan, dimana satu populasi merugikan yang lain dengan cara menyerang secara langsung tetapi meskipun begitu bergantung kepada yang lain.

Commensalisme, dimana satu populasi diuntungkan sedangkan yang lain tidak terpengaruhi

Protocooperation, dalam mana kedua populasi memperoleh keuntungan dengan adanya asosiasi itu tetapi hubungan itu tidak merupakan suatu keharusan

Mutualisme, dimana pertumbuhan dan kehidupan kedua populasi itu mendapat keuntungan dan tidak satupun dapat hidup di alam tanpa yang lain.Menurut Smith (1992), terdapat 9 perbedaan interaksi yang terjadi pada populasi yaitu antara lain :

Jika dua populasi menguntungkan satu sama lain disebut mutualismeKetika salah satu spesies memberi keuntungan untuk kesejahteraan yang lainnya tetapi

tidak berdampak apapun pada dirinya disebut dengan komensalismeJika salah satu spesies menyebabkan efek yang kurang baik untuk populasi lain, tetapi

spesies yang ditumpangi tidak terpengaruh maka disebut amensalismeJika hubungan bukan untuk bertahan hidup maka disebut non-obligatory mutualismeJika hubungan kedua spesies untuk bertahan hidup disebut obligatory mutualismeJika hubungan kedua spesies merusak atau bersaing satu sama lain disebut kompetisiJika hubungan menguntungkan salah satu spesies dengan membunuh dan memangsa

disebut predasiJika hubungan menguntungkan salah satu spesies dengan mengambil makanan organisme

lain sehingga lama-kelamaan organisme yang diambil makanannya mati disebut parasitismeSedangkan tipe spesial dari kombinasi hubungan predasi dan parasitisme disebut

parasitoidisme2.7 Faktor-Faktor Ekosistem Sungai2.7.1 Faktor Fisika

Menurut Odum (1993), didalam aliran air yang besar atau sungai, arus dapat berkurang sedemikian rupa, sehingga menyerupai kondisi air tergenang. Tetapi arus adalah faktor utama yang paling penting yang membuat kehidupan kolam dan air deras amat berbeda dan mengatur perbedaan di beberapa tempat dari suatu aliran. Kecepatan arus ditentukan oleh kemiringan, kekasaran dan kelebaran dasarnya.Kecerahan perairan adalah suatu kondisi yang menunjukkan kemampuan cahaya untuk menembus lapisan air pada kedalaman tertentu. Pada perairan alami kecerahan sangat penting karena erat kaitannya dengan aktifitas fotosintesis (Sari dan Usman, 2012).Menurut Efendi (2003) dalam Wijaya (2009), pada perairan sungai biasanya terjadi percampuran massa air secara menyeluruh dan tidak terbentuk stratifikasi vertikal kolom air seperti pada perairan lentik. Sungai dicirikan oleh arus yang searah dan relatif kencang, serta sangat dipengaruhi oleh waktu, iklim dan pola aliran air. Kecepatan arus, erosi dan sedimentasi merupakan fenomena yang umum terjadi di sungai sehingga kehidupan flora dan fauna pada sungai dipengaruhi oleh tiga varoiabel tersebut.2.7.2 Faktor KimiaMenurut Cole (1983) dalam Ward (1992), menyatakan bahwa pH perairan alami berkisar dari <3,0 sampai >12. Kebanyakan perairan yang tidak terpolusi memiliki rentang pH 6 – 9. Secara umum pH meningkat dan permukaan air ke dasar perairan sungai dan dari bawah ke atas untuk danau. Perairan yang asam ditandai dengan keragaman spesiesnya yang rendah dan produktivitasnya yang rendah. Komponen utama dapat hilang oleh fauna dari badan air yang paling asam.Walaupun organisme di dalam aliran air lebih menghadapi ekstrim. Dalam hal ini sudah dan arus, dibandingkan dengan organisme kolam, tetapi pada kondisi alam, oksigen biasanya tidak amat bervariasi karena aliran air biasanya mengandung oksigen dalam jumlah yang cukup. Bahkan dalam keadaan tanpa tanaman hijau. Oleh karena itu, binatang air biasanya mempunyai toleransi yang sempit dan terutama peka terhadap kekurangan oksigen dan cepat berubah oleh pencemaran organik dan tipe apapun yang mengurai kadar oksigen (Odum, 1993).2.7.3 Faktor BiologiMenurut Goldmen dan Home (1983), organisme yang dapat pada perairan mengalir amtara lain adalah virus, bakteri, jamur algae, makrofita, protozoa, rotifera, crustacea, serangga air, cacing, molusca, ikan dan lain-lain. Menurut Odum (1993), umumnya invertebrata bentik mempunyai kerapatan yang paling tinggi pada komunitas air deras. Semnetara nekton dan bentuk-bentuk penggali dalam aliran air seperti kerang, ogenata penggali dan Ephemerophtera lebih dijumpai diperairan tenang.Di perairan alami produsen yang sangat penting adalah algae, dimana didaratan, tumbuhan tingkat tinggi melakukan peranan ini dan mareka juga penting di zona litoral danau, di badan air yang kecil dan di sungai-sungai. Di perairan alami umumnya mungkin untuk dibedakan antara rantai konsumen pelagik dan bentik (Mahmudi, 2005).2.8 Faktor-Faktor Ekosistem Kolam

2.8.1 Faktor FisikaMenurut Odum (1971) dalam Batu (1983), menyatakan bahwa pada air kolam terdapat stratifikasi, yaitu produksi di sebelah atas dan regenerasi dimana terjadi dekomposisi di sebelah bawah. Sebagian energi yang difiksasi di zona photic.Kedalaman perairan dimana proses fotosintesi dengan proses respirasi disebut kedalaman kompensasi. Kedalaman kompensasi biasanya terjadi pada saat cahaya di dalam kolam air hanya hingga 1% dari seluruh intensitas cahaya yang mengalami penetrasi di permukaan air. Kedalaman kompensasi sangat dipengaruhi oleh kekeruhan dan keberadaan awan berfluktuasi secara harian dan musiman (Efendi, 2003).2.8.2 Faktor KimiaSumber oksigen terlarut dapat berasal dari difusi oksigen yang terdapat di atmosfer (sekitar 35%) dan aktivitas fotosintesis oleh tumbuhan air dan fitoplankton (Riovity dan olem, 1994). Difusi oksigen dan atmosfer ke dalam air dapat terjadi secara langsung pada kondisi air diam. Jadi pada ekosistem air diam sumber utama oksigen berasal dari fotosintesis pada organisme aquatik (Efendi, 2003).Menurut Odum (2002), nilai pH suatu ekosistem air dapat berfluktuasi terutama dipengaruhi oleh aktifitas fotosintesis. Organisme air dapat hidup dalam suatu perairan yang mempunyai nilai pH netral dengan kisaran toleransi antara asam lemah sampai basa lemah (Baur, 1987., Brehm dan Meijering1990., Brakke, et al., 1992). Nilai pH yang ideal bagi kehidupan organisme air pada umumnya terdapat antara 7-8,5.

2.8.3 Faktor BiologiBeberapa binatang kolam temporer seperti udang-udangan (Eubranchiopoda) terutama menonjol karena dapat beradaptasi dengan baik dan amat terbatas penyebarannya pada kolam sementara. Telurnya dapat bertahan hidup dalam tanah yang kering untuk beberapa bulan, dimana perkembangan dan reproduksi terjadi untuk periode yang pendek pada akhir musim dingi (Odum, 1993).Berdasarkan pengalaman dapat dibedakan antara kekeruhan yang disebabkan oleh plankton dan kekeruhan yang disebabkan faktor lain. Namun demikian perlu diingat bahwa blooming plankton tidak selalu bewarna hijau, dapat pula berwarna kuning, merah, coklat atau hitam (Mahmudi, 2005).2.9 Benthos2.9.1 Definisi BenthosBenthos adalah organisme melekat atau beristirahat pada dasar atau hidup di dasar endapan. Binatang benthos dapat dibagi berdasarkan cara makannya menjadi pemakan penyaring (seperti kerang) dan pemakan deposit (seperti siput) (Odum, 1993).Semua organisme air yang hidupnya terdapat pada substrat dasar suatu suatu perairan, baik yang bersifat sesil (melekat) maupun vagil (bergerak bebas) termasuk dalam kategori benthos. Berdasarkan sifat hidupnya dibedakan antara fitobenthos, yaitu organisme benthos yang bersifat hewan. Kelompok inimasih dibedakan menjadi epifauna, yaitu benthos yang hidupnya di atas substrat dasar perairan dan infauna, yaitu benthos yang hidupnya terbenam di dalam substrat dasar perairan (Barus, 2002).2.9.2 Ciri-Ciri BenthosCiri-ciri benthos menurut Barus (2002), menyatakan bahwa :

Pergerakan yang sangat terbatas sehingga memudahkan dalam pengambilan sampelUkuran tubuh relatif besar sehingga mudah diidentifikasi

Hidup di dasar perairan serta relatif dalam sehingga secara terus-menerus berdebah oleh kondisi air disekitarnya

Pendederan yang terus-menerus mengakibatkan benthos sangat terpengaruh oleh berbagai perubahan lingkungan yang mempengaruhi kondisi air tersebut.Menurut Wijayanti (2007), hewan makrobenthos mempunyai pergerakan yang sangat terbatas, sehingga hewan ini secara langsung akan terkena dampak dari perubahan lingkungan. Ada jenis-jenis yang mapu beradaptasi, dengan perubahan lingkungan sekitar, tetapi ada yang tidak mampu beradaptasi terhadap perubahan lingkungan.2.9.3 Peranan Benthos Di PerairanDisamping penting sebagai sumber makanan alami ikan, benthos juga memegang beberapa peran penting dalam perairan. Seperti dalam proses dekomposisi dan mineralisasi material organik yang masuk ke perairan (Lind, 1985), serta menduduki beberapa tingkat trofik dalam rantai makanan (Odum, 1993).Peranan hewan makrobenthos di perairan sangat penting dalam rantai makanan (food chain), karena merupakan sumber makanan beberapa ikan dan sebagai salah satu penguraian bahan organik (Odum, 1997). Hewan makrobenthos memanfaatkan sumber makanan primer yang terdiri dari makanan yang bersifat pelagik sebagai makanan tersuspensi dan makan yang bersifat bentik sebagai makanan terdeposit (Wijayanti, 2007).2.9.4 Jenis-Jenis Benthos Di PerairanMenurut Barnes (1978) dalam Wijayanti (2007), pembagian benthos berdasarkan pola-pola makannya dapat digolongkan menjadi tiga macam yaitu pertama sebagai suspension feeder yang memperoleh makanannya dengan menyaring partikel-partikel melayang di perairan, kedua sebagai deposit feeder yang mencari makanan pada sedimen dan mengasimilasikan material organik yang dapat dicerna dari sedimen. Material organik dalam sedimen biasanya disebut detritus. Ketiga sebagai detritus feeder tersebut khusus hanya makan detritus saja.Menurut Barus (2002), jenis-jenis benthos dapat digolongkan berdasarkan ukuran tubuhnya dapat dibagi menjadi tiga yaitu :

Makrobenthos (> 2 mm)Merobenthos (0,2 – 2 mm)Mikrobenthos (< 0,2 mm)

2.10 Perifiton2.10.1 Definisi PerifitonPerifiton adalah komunitas organisme yang hidup (nabati dan hewani) di atas sekitar substrat yang tenggelam dan batu-batuan, kayu, tumbuhan air yang tenggelam dan kadangkala pada hewan air (Odum, 1971 dalam Wijaya, 2009).Menurut Odum (1993), menyatakan bahwa perifiton atau aufwuchs adalah organisme baik tanaman maupun binatang dan daun dari tanaman yang berakar atau permukaan lain yang menonjol di dasar.2.10.2 Ciri-Ciri PerifitonMenurut Odum (1993), organisme perifiton memiliki ciri yaitu dapat melekat atau berpegang dengan kuat pada dasar yang padat dan oleh ikan yang kuat berenang.Menurut Junda dan Hala (2012), menyatakan bahwa ciri perifiton merupakan komunitas mikrobial yang menempel di permukaan material padat dan terletak di bawah air dan keberadaannya dikendalikan oleh energi cahaya untuk proses fotosintesis. Kehidupan perifiton tergantung pada substrat yang padat di bawah permukaan air.2.10.3 Peranan Perifiton Di Perairan

Menurut Graham dan Wilcox (2000) dalam Telaumbamia, et al., (2013), menyatakan peranan perifiton di perairan tergenang lebih rendah dari fitoplankton sedangkan di perairan mengalir peranan perifiton lebih besar kecuali di perairan yang keruh.Peranan perifiton sebagai produsen primer dengan menghasilkan dan menjadi salah satu penghasil bahan organik di sungai. Produktivitas primer adalah bahan organik yang dihasilkan oleh organisme autotrof dengan bantuan cahaya matahari (Wetzel, 1983 dalam Teaumbamia, et al., 2013).2.10.4 Jenis Perifiton Di PerairanMenurut Wetzel (1979) dalam Wijaya (2009), perifiton terdiri dari mikrofita yang tumbuh pada semua substrat tenggelam. Pada umumnya perifiton di perairan mengalir terdiri dari diatom (Bacillarophyceae), alga biru berfilamen (Myxophyceae), alga hijau berfilamen (Chlorophyceae), bakteri atau jamur berfilamen, protozoa dan rotifera (tidak banyak pada perairan tidak tercemar).Menurut Odum (1993), organisme komunitas air deras ataut perifiton dapat digolongkan berdasarkan ciri-cirinya yaitu melekat permanen pada substrat yang kokoh seperti batu, batang kayu atau massa daun.Sengkan menurut Wetzel (1979) dalam Wijaya (2009) dibedakan sebagai berikut :

Epilithic, perifiton menempel pada batuEpipelic, menempel pada permukaan sedimenEpiphytic, menempel pada permukaan batang tumbuhan atau daunEpizoic, perifiton yang menempel pada permukaan pasirEpidendritic, perifiton yang menempel pada kayuEpipsamic, perifiton yang menempel pada permukaan pasir.

2.11 Plankton2.11.1 Definisi PlanktonPlankton adalah organisme mengapung yang pergerakannya kira-kira tergantung pada arus. Walaupun beberapa zooplankton menunjukkan gerakan berenang yang aktif yang membantu mempertahankan posisi vertikal. Plankton secara keseluruhan tidak dapat bergerak melawan arus (Odum, 1993).Menurut Nyabakken (1988), menyatakan istilah plankton adalah istilah umum, kemusdian berenang-renang. Organisme-organisme planktonik demikian lemah sehingga mareka sama sekali dikuasai oleh gerakan-gerakan air. Plankton dapat dibagi menjadi dua golongan yaitu fitoplankton yang terdiri dari tumbuhan laut yang bebas melayang-layang dan hanyut dalam laut serta mampu berfotosintesi dan zooplankton ialah hewan-hewan laut yang planktonik.2.11.2 Ciri-Ciri PlanktonMenurut erlian (1986) dalam Yuniarta (2014), ciri plankton sebagai berikut :

Mudah dicerna dan mempunyai ukuran yang sesuai dengan larvaBerakarnya tidak terlalu cepatMudah dikulturPertumbuhannya cepatSelama daur hidupnya tidak menghasilkan racun atau gas-gas yang berbahayaKandungan gizinya tinggi

Menurut Wibisono (2005), mengemukakan bahwa golongan jasad hidup akuatik berukuran mikroskopik, biasanya berenang atau tersuspensi dalam air, tidak bergerak atau hanya bergerak sedikit untuk melawan atau mengikuti arus disebut plankton. Menurut Purwanti, et al., (2011) menyatakan bahwa pergerakan dari plankton relatif pasif , sehingga selalu terbawa oleh arus air.

Sehingga plankton tidak bisa bergerak bebas seperti organisme air lainnya seperti halnya ikan. 2.11.3 Peranan Plankton Di PerairanMenurut Soewigno, et al., (1986) dalam Wijaya (2009), palnkton dapat memberikan informasi sebagai berikut :

Analisis biologis dapat memberikan informasi ynag relevan mengenai kondisi kualitas air secara sederhana dan cepat

Pada keadaan lingkungan yang kurang baik atau tidak menguntungkan beberapa biota perairan masih dapat bertahan dalam bentuk struktur komunitas

Analisis biologi dapat memberikan informasi yang tidak dapat diberikan oleh metode lainFitoplankton merupakan kelompok yang memegang peranan penting dalam ekosistem air, karena kelompok ini dengan adanya kandungan klorofil mampu melakukan fotosintesi. Merupakan sumber energi utama bagi kelompok organisme air lainnya. Fitoplankton merupakan produktivitas primer di dalam perairan yang menghasilkan makanan bagi organisme lain.2.11.4 Jenis Plankton Di PerairanMenurut Sachlan (1982) dalam Handayani (2009), plankton dibagi menjadi dua kelompok besar, yaitu fitoplankton yang berperan sebagai produsen primer yang berkemampuan mengkonversi sinar matahari dan senyawa organik menjadi bahan organik. Dan zooplankton yang memanfaatkan fitoplankton untuk menjadi makanannya.Menurut Barus (2002), menyatakan plankton berdasarkan hidupnya dibedakan antara haliplankton dan limnoplankton. Selanjutnya plankton berdasarkan ukurannya yaitu :

Makroplankton >200nmHaliplankton >2nmMikroplankton 20-2 nmNanoplankton 2-20 mmUltraplankton < 2 mmMegaplankton

3. METODOLOGI

Fungsi AlatParameter FisikaSuhu

Alat yang digunakan dalam praktikum suhu, yaitu:Thermometer Hg : untuk mengukur suhu perairanStopwatch : untuk menghitung lama thermometer di

perairanTali rafia : untuk pegangan thermometerKecerahan

Alat yang digunakan dalam praktikum kecerahan, yaitu:Secchi disk : untuk mengukur kecerahan airTali : untuk mengikat dan pegangan secchi diskKaret gelang : sebagai penanda d1 dan d2Penggaris : untuk mengukur kedalaman (d1 dan d2)Kecepatan Arus

Alat yang digunakan dalam praktikum kecepatan arus, yaitu:Botol mineral 600 ml : sebagai pelampung dan pemberatStopwatch : untuk menghitung waktu kecepatan arusTali rafia : sebagai penghubung antar botol (1 dan 2)

Parameter KimiapH

Alat yang digunakan dalam praktikum pH, yaitu:Kotak pH standard : untuk mengetahui pH air kolam dan

sebagai indikator pembandingStopwatch : untuk menghitung waktu yang digunakan

dalam praktikumDO

Alat yang digunakan dalam praktikum DO, yaitu:Botol DO 250 ml : sebagai wadah air sampelPipet tetes : untuk mengambil larutan dalam skala kecilStatif : sebagai penyangga buretCorong : untuk mempermudah isi ulang larutan

dalam buretBuret : sebagai wadah larutan titrasiNampan : untuk tempat alatWashing bottle : wadah aquadesCO2

Alat yang digunakan dalam praktikum CO2¬, yaitu:Botol air mineral : sebagai wadah air sampelGelas ukur : untuk mengukur volume air sampelPipet tetes : untuk mengambil larutan dalam skala kecil

Erlenmeyer : sebagai wadah air sampelBuret : sebagai wadah larutan titrasiStatif : sebagai penyangga buretCorong : untuk membantu isi ulang Na2CO3 dalam

buretWashing bottle : wadah aquadesTOM

Alat yang digunakan dalam praktikum TOM, yaitu:Erlenmeyer : sebagai tempat mereaksikan larutanGelas ukur : untuk mengukur jumlah air sampelPipet tetes : untuk mengambil Na-Oxalate dalam skala

kecilBuret : sebagai wadah larutan titrasiHot plate : sebagai tempat memanaskan airStatif : sebagai penyangga buretBola hisap : untuk membantu pipet volume mengambil

larutanPipet volume : untuk memindahkan H2SO4 dalam jumlah

tertentuThermometer Hg : untuk mengukur suhuCorong : untuk membantu isi ulang larutan dalam

buretWashing bottle : wadah aquades

AmoniaAlat yang digunakan dalam praktikum amonia, yaitu:

Erlenmeyer : sebagai tempat mereaksikan larutanPipet tetes : untuk mengambil larutan dalam skala kecilCuvet : sebagai tempat larutan yang akan diukur

kadar amonianya dengan spektrofotometerRak cuvet : sebagai tempat meletakkan cuvetCorong : untuk membantu memasukkan larutanSpektrofotometer : alat untuk mengukur kada amonia dengan

panjang gelombang 425 µmNitrat

Alat yang digunakan dalam praktikum nitrat, yaitu:Pipet volume : untuk memindahakan larutan dalam skala

besarBeaker glass : sebagai wadah air sampel yang sudah

disaringCawan porselen : sebagai wadah sampel yang akan

dipanaskanSpatula : untuk menghomogenkan kerak nitrat dan

asam fenol disulfonikPipet tetes : untuk mengambil larutan dalam skla kecilCuvet : sebagai wadah larutan

Gelas ukur : untuk mengukur air sampel yang akan digunakan

Rak cuvet : sebagai tempat meletakkan cuvetPipet volume : untuk mengambil larutan dalam skala

tertentuBola hisap : untuk membantu pipet volume dalam

mengambil larutanWashing bottle : sebagai wadah aquadesHot plate : untuk memanaskan air sampel hingga

membentuk kerakSpektrofotometer : alat untuk mengukur kadar nitrat dengan

panjang gelombang 410 µm

OrthofosfatAlat yang digunakan dalam praktikum phospat, yaitu:

Gelas ukur : untuk mengukur jumlah air sampelErlenmeyer : sebagai tempat mereaksikan larutanPipet tetes : untuk mengambil larutan dalam skala kecilCuvet : sebagai tempat larutan yang akan diukurRak cuvet : sebagai tempat meletakkan cuvetSpektrofotometer : alat untuk mengukur kadar nitrat dengan

panjang gelombang 410 µmWashing bottle : sebagai wadah aquadesParameter BiologiBenthos

Alat yang digunakan dalam praktikum pengamatan benthos, yaitu:Botol film : sebagai wadah sampel benthosBaju kicking : alat untuk mengambil sampel benthosSepatu kicking : alat untuk mengambil sampel benthosJaring kicking : sebagai alat penangkap benthosNampan : sebagai wadah alatPinset : untuk mengambil benthosLoop : untuk mengamati benthosBuku Presscot : untuk mengidentifikasi jenis benthosPerifiton

Alat yang digunakan dalam pengamatan perfiton, yaitu:Botol film : sebagai wadah sampel perifitonSikat gigi : untuk mengambil sampel perifitonWashing bottle : sebagai wadah aquadesMikroskop : untuk mengamati organisme perifitonBuku Presscot : buku identifikasi jenis perifitonPlankton

Alat yang digunakan dalam pengmatan plankton, yaitu:Botol film : sebagai wadah hasil menyaring sampelPlanktonet no.25 : untuk menyaring planktonTali : untuk mengikat botol film pada planktonet

Pipet tetes : untuk mengambil larutan dalam skala kecilEmber 5 liter : untuk mengambil air sampel 25 liter

masing-masing 5 literCool box : sebagai tempat menyimpan sampel

plankton pada suhu 4⁰ CMikroskop : untuk mengamati planktonWashing bottle : sebagai wadah aquadesBuku Presscot : buku identifikasi jenis planktonFungsi BahanParameter FisikaSuhu

Bahan yang digunakan dalam praktikum suhu, yaitu:Sampel air kolam : sebagai objek yang ditelitiKecerahan

Bahan yang digunakan dalam praktikum kecerahan, yaitu:Air sampel : sebagai objek yang ditelitiKaret gelang : sebagai penanda d1 dan d2Kecepatan Arus

Bahan yang digunakan dalam praktikum kecepatan arus, yaitu:Sampel air kolam : sebagai objek yang ditelitiParameter KimiapH

Bahan yang digunakan dalam praktikum pH, yaitu:Sampel air : sebagai objek yang ditelitipH paper : untuk mengukur pH airDO

Bahan yang digunakan dalam praktikum DO, yaitu:Sampel air : sebagai bahan yang akan diukur DonyaMnSO4 : untuk mengikat oksigen dalam airNaOH+KI : untuk membentuk endapan berwarna

coklat (melepas I2)Na2SO3 0,025 N : sebagai lautan titrasiH2SO4 : untuk mengkondisikan asam dan

melarutkan endapanAmylum : sebagai pengkondisian suasana basaAquades : sebagai pensteril alat yang digunakanKertas label : sebagai penanda botol DOCO2

Bahan yang digunakan dalam praktikum CO2, yaitu:Larutan PP : sebagai indikator suasana basa dan warna merah muda atau pinkSampel air : sebagai objek yang diukur kadar CO2Na2CO3 0,454 N : sebagai larutan titran dalam titrasiAquades : untuk mensterilkan ErlenmeyerKertas label : sebagai penanda botol air mineralTOM

Bahan yang digunakan dalam praktikum TOM, yaitu:Air sampel : sebagai media yang diukur dan diamatiKMnO4 : sebagai oksidator dan pengikat bahan

organikNa-oxalate 0,01 N : sebagai reduktorH2SO4 : untuk memepercepat reaksi dan

pengkondisian asamAquades : sebagai faktor nilai y menghitung pelarut

larutanAmonia

Bahan yang digunakan dalam praktikum amonia, yaitu:Air sampel : sebagai sampel yang diukur kadar amoniaLarutan nesseler : untuk mengikat amonia dan indikator

warna kuningKertas label : untuk menandaiAquades : untuk mengkalibrasi alat yang digunakanTissue : untuk membersihkan dan mengeringkan

alat yang sudah dicuci atau sudah bersihNitrat

Bahan yang digunakan dalam praktikum nitrat, yaitu:Asam fenol : sebagai pelarut kerak nitrat

disulfonikAquades : untuk mengencerkan kerak nitratNH4OH : sebagai indikator warna kuningKertas saring : untuk menyaring air sampelAir sampel : sebagai media yang diukurKertas label : untuk menandai sampelOrthofosfat

Bahan yang digunakan dalam praktikum orthophospat, yaitu:Amonium molybdate : untuk mengikat fosfat dan mengubah

ammonium menjadi fosfor molybdateSnCl2 : sebagai indikator warna biruAir sampel : sebagai media yang diamatiAquades : sebagai kalibrasi alatTissue : untuk membersihkan alatParameter BiologiBenthos

Bahan yang digunakan dalam pengamatan benthos, yaitu:Air sungai : sebagai media hidup benthosBenthos : objek yang diamatiAlkohol 96% : sebagai bahan preservasiTissue : untuk membersihkan alatPerifiton

Alat yang digunakan dalam pengamatan perifiton, yaitu:Air sungai : sebagai media hidup perifitonPerfiton : objek yang diamati

Larutan lugol : sebagai bahan preservasiAquades : untuk kalibrasi alatTissue : untuk membersihkan alatKertas label : untuk memberi tandaPlankton

Alat yang digunakan dalam pengamatan plankton, yaitu:Air kolam : sebagai media hidup planktonPlankton : objek yang diamatiLarutan lugol : sebagai bahan preservasiAquades : untuk kalibrasi alatTissue : untuk membersihkan alatSkema KerjaParameter FisikaSuhu

dimasukkan dalam perairan dengan posisi membelakangi matahariditunggu 2-3 menitpembacaan dilakukan saat thermometer masih dalam air daan dicatat dalam skala 0C

Kecerahan

dimasukkan ke dalam perairan hingga tidak tampak pertama kali dan ditandai sebagai D1ditenggelamkan hingga tidak tampak sama sekalidiangkat perlahan hingga nampak pertama kali dan ditandai sebagai D2dihitung hasil dengan rumus:

Keterangan :D = KecerahanD1 = panjang tali saat tidak tampak pertama kaliD2 = panjang tali saat tampak pertama kali

Kecepatan Arus

diikat dengan tali rafia 5 rafia

dilepas di perairan dengan tetap memegang talidihitung waktu tempuh botol dengan stopwatchdihitung hasil kecepatan arus dengan rumus :

Keterangan:V = kecepatan arus (S/t)S = jarak atau panjang tali t = waktu tempuh

Parameter KimiapH

dicelupkan ke dalam air sampelditunggu hingga ± 2 menitdiangkat dan di kibas-kibaskan hingga setengah keringdicocokkan perubahan warna pH paper dengan kotak standar pHdicatat nilai pH

DO

dicatat volume Botol DOdimasukkan dalam air dengan kemiringan 45⁰ditutup botol DO-nya lalu diangkatditambah 2 ml MnSO4 dan 2 ml NaOH+KIdihomogenkandidiamkan ± 30 menit hingga terdapat endapan coklatdibuang cairan beningditambahkan 2 ml H2SO4, lalu dihomogenkanditambahn 3 tetes amylum, lalu dihomogenkandititrasi dengan Na2S2O3 0,025 N dengan buretdihitung dengan rumus :

Keterangan:V titran = volume titran yang terpakaiN titran = normalitas titran8 = Ar dari oksigen (O2)1000 = jumlah liter airVolumen botol DO = volume sampel yang digunakan4 = asumsi air yang tumpah

CO2

diukur 25 ml dengan gelas ukurdimasukkan dalam erlenmeyer 100 mlditambah 3 tetes indikator PPdititrasi dengan Na2CO3 0,0454 N hingga berwarna pinkdicatat nilai V titrannyadihitung dengan rumus :

Keterangan :ml titran= volume Na2CO3 yang terpakai saat titrasiN titran= konsentrasi Na2CO3ml air sampel= volume air sampel yang digunakan untuk menguji CO2

TOM

diambil 25 ml, lalu dimasukkan ke dalam erlenmeyerditambahkan 4,8 ml KMnO4 dari buretditambahkan 5 ml H2SO4 dengan perbandingan (1:4)dipanaskan diatas hotplate sampai suhu 70-80⁰C, lalu diangkatsuhu diturunkan menjadi 60-70⁰C, lalu ditambah Na-Oxalate 0,01 N perlahan sampai

jernihdititrasi dengan KMnO4 0,01 N sampai terbentuk warna merah jambu/pink dan dicatat

sebagai ml titran (X ml)diambil 25 ml aquadest, dilakukan prosedur (1-6) dan dicatat titran yang terpakai sebagai

(Y ml)dimasukkan salinometer ke dalam gelas ukurditunggu sampai salinometer tidak bergerak dan dibaca skala yang menunjukkan salinitasdihitung nilai TOM dengan rumus :

Keterangan :X ml = volume titran yang digunakan untuk air sampelY ml = volume titran yang digunakan untuk aquadest31,6 = ½ MR0,01 = konsentrasi Na-Oxalate1000 = jumlah 1 liter airml air sampel = jumlah air sampel yang digunakan

Amonia

dimasukkan 25 ml air sampel ke dalam erlenmeyerditambahkan 0,5 ml larutan nesseler ke dalam erlenmeyerdidiamkan ± 10 menit

dimasukkan ke dalam cuvetdihitung kadar amonia menggunakan spektrofotometer dengan panjang gelombang 425

µm

Cara Penggunaan Spektrofotometer

dihubungkan stop kontak dengan arus AC 220Vditekan tombol power “ON/OFF” hingga pada layar muncul angka 15-1 dan ditunggu

hingga menunjukkan angka 0setelah itu muncul “METHOD” ditekan nomor program amoniaditekan “READ ENTER” maka pada layar akan muncul nomor program yang akan

diukurdisesuaikan panjang gelombang (425 µm) dengan cara memutar pengatur penjang

gelombangditekan “READ ENTER” maka akan muncul Amoniaditekan “SHIFT TIMER”dimasukkan botol larutan blanco pada “SEL HOLDER”, jika periodik timer sudah

selesai, ditekan “CLEAR ZERO” hingga muncul angka 0,00 mg/l (menunjukkan posisi alat sudah dikalibrasi atau sudah netral)

dikeluarkan botol larutan blanco dari “SEL HOLDER” dan diganti dengan botol sampel yang berisi air sampel amonia

ditekan “READ ENTER”, ditunggu beberapa saat maka pada layar akan muncul angka hasil analisa parameter

dicatat hasilnya

Nitrat

dimasukkan 25 ml ke dalam cawan porselendipanaskan hingga terbentuk kerak nitratdidinginkanditambahkan 0,5 ml asam fenol disulfonik dan diaduk dengan spatuladitambahkan 2,5 ml aquadestditambah NH4OH hingga warna kekuninganditambah aquadest hingga volume 25 mldipanaskan dalam cuvet ± 10 mldiukur kadar nitrat dengan spektrofotometer dengan panjang gelombang 410 µmdicatat hasilnya



hingga menunjukkan angka 0setelah itu muncul “METHOD” ditekan nomor program sesuai dengan parameter yaitu

nitratditekan “READ ENTER” maka pada layar akan muncul nomor program yang akan


gelombangditekan “READ ENTER” maka akan muncul Nitratditekan “SHIFT TIMER”dimasukkan botol larutan blanco pada “SEL HOLDER”, jika periodik timer sudah

selesai, ditekan “CLEAR ZERO” hingga muncul angka 0,00 mg/l (menunjukkan posisi alat sudah dikalibrasi atau sudah netral)

dikeluarkan botol larutan blanco dari “SEL HOLDER” dan diganti dengan botol sampel yang berisi air sampel nitrat

ditekan “READ ENTER”, ditunggu beberapa saat maka pada layar akan muncul angka hasil analisa parameter

dicatat hasilnya

Orthofosfat

diambil 25 ml dan dituang dalam erlenmeyerditambahkan ammonium molybdate ½ mldihomogenkanditambah 1 tetes SnCl2, lalu dihomogenkandimasukkan dalam cuvet dan ditandai dengan kertas labeldiukur kadar orthofosfat dengan spektrofotometer dengan panjang gelombang 690µ



hingga menunjukkan angka 0saat muncul “METHOD” ditekan nomor program orthofosfatditekan “READ ENTER” maka pada layar akan muncul nomor program yang akan


gelombangditekan “READ ENTER” maka akan muncul Nitratditekan “SHIFT TIMER”dimasukkan larutan blanco pada “SEL HOLDER”, jika periodik timer sudah selesai,

ditekan “CLEAR ZERO” hingga muncul angka 0,00 mg/l (menunjukkan posisi alat sudah netral)dikeluarkan botol larutan blanco dari “SEL HOLDER” dan diganti dengan botol sampel

yang berisi air sampel nitratditekan “READ ENTER”, ditunggu beberapa saat maka pada layar akan muncul angka

hasil analisa parameterdicatat hasilnya

Parameter BiologiBenthos

Pengambilan Sampel Benthos

dipegang tiang jala dengan arah melawan arusdengan memakai baju dan sepatu kicking diaduk dasar perairan dengan dua kaki secara

bersama-sama sambil mendorong jaladiperiksa jala, jika terdapat batu dan ranting maka dicuci batu dan ranting di dalam jaladicuci organisme dengan air dan mengumpulkannya pada salah satu sudut jala dengan

terus menyiram air untuk memudahkan pengambilan sampel benthos di dalam jaladibalik jala ke arah luar untuk memindahkan sampel ke dalam wadah sampel atau botol

film

Pengamatan benthos di Laboratorium

diambil benthos yang ada di botol filmdiletakkan pada objek glassdiamati pada mikroskopdidokumentasi atau difotodicocokkan dengan buku identiikasi benthosdicatat dan digambar hasilnya

PerifitonPengambilan Sampel Perifiton

ditentukan substrat yang akan dijadikan sampeldimasukkan air sungai ke dalam botol film setengahnya sajadiambil perifiton di substrat yang masih trkena air (misal:lumut) dengan sikat gigi secara

perlahan dan dimasukkan hasil sikat ke dalam botol filmditambahkan lugol 3-4 tetesdiamati dibawah mikroskop

Pengamatan Perifiton Di Laboratorium

diambil perifiton yang ada di botol film dengan pipet tetesdiletakkan pipet tetesdiletakkan sampel pada objek glassdiamati di bawah mikroskop dengan perbesaran 400-100 kali perbesarandidokumentasi atau difotodicocokkan dengan buku identifikasi Presscotdicatat dan digambar hasilnya

PlanktonPengambilan Sampel Plankton

dikalibrasi atau dicelupkan ke dalam air lokal sampai seluruh permukaan terkena air kolam

botol film dipasangkan dengan diikat pada ujung planktonetdiambil air sampel menggunakan timba dan disaring menggunakan planktonetditambahkan lugol 3 tetes, dan diberi tanda dengan kertas labeldimasukkan ke dalam coo boxdiamati dibawah mikroskop

Pengamatan Di Laboratorium

disiapkan Haecyrometer dan cover glassdibersihkan dengan tissue secara searahditutup haemocyrometer dengan cover glass pada bagian tengahdituangkan pada Haemocycrometer

disiapkan dan dinyalakan lampu dengan perbesaran 400-100 kalidiletakkan preparat pada meja objekdiamati setelah ditemukan fokusdibagi menjadi 5 bidang pandangdihitung jumlah plankton pada tiap bidang pandangdicatat dan digambar hasilnya

4. HASIL DAN PEMBAHASAN

4.1 Data Hasil PengamatanA. Benthos

Gambar Lokasi Pengambilan Sampel

Stasiun 3Deskripsi Lingkungan

Cuaca saat praktikum ekologi perairan untuk pengamatan Benthos keadaan lingkungan pengambilan sampel kondisinya cerah dan berawan, sinar matahari tidak begitu panas dan udaranya sejuk.

Waktu pengambilan sampel untuk benthos pada pukul 09.25 WIBDeskripsi Lingkungan Sekitar Lokasi

Pengambilan sampel benthos berada disekitar persawahan, terdapat pepohonan dan rerumputan. Jalan menuju lokasi pengambilan sampel tanahnya cukup licin dan terdapat bambu dan pipa untuk saluran air

Deskripsi Lingkungan StasiunLingkungan stasiun lokasi pengamatan untuk pengambilan untuk pengambilan sampel benthos, sungainya tidak terlalu luas ukurannya didalam stasiun, pengambilan sampel terdapat batu-batuan kecil dan ada beberapa yang berukuran besar. Terdapat azola dipermukaan perairan serta didalam perairan terdapat lumpur dan pasir-pasir.

Data Parameter Fisika dan Kimia AirNo Parameter Hasil Pengukuran dan Pengamatan1. Suhu 22oC2. Kecepatan Arus 0,4543. Ph 84. DO 12,6 mg/L5. CO2 35,92 mg/L6. TOM 55,97. Amonia 0,148. Nitrat 0,239. Orthofosfat 0,0210. Kecerahan 100%

Data Pengamatan Organisme (Benthos yang diperoleh)No Organisme (Perifiton) JumlahKlasifikasi1

2

1

1

Kingdom: AnimaliaFilum : AnnelidaKelas : HirudineaFamili : Pascicolididae

Kingdom : AnimaliaFilum : AnnelidaKelas : HirudineaFamili : Piscicolidae

B. PerifitonGambar Lokasi Pengambilan Sampel

Stasiun 3Deskripsi LingkunganCuaca saat praktikum ekologi peraira untuk pengamatan perifiton keadaan lingkungan

pengambilan sampel kondisinya cerah dan berawan, sinar matahari tidak begitu panas dan udaranya sejuk Karen terdapat pepohonan yang rindang

Waktu pengambilan sampel perifiton pada pukul 09.15 WIB

Deskripsi Lingkungan SekitarPengambilan sampel benthos berada disekitar persawahan, terdapat pepohonan dan rerumputan. Jalan menuju lokasi pengambilan sampel tanahnya cukup licin

Deskripsi Lingkungan StasiunLingkungan stasiun lokasi pengamatan untuk pengambilan sampel perifiton, sungainya tidak terlalu lebar ukurannya. Arusnya tidak begitu deras, kedalamannya tergolong dangkal dan perairannya jernih. Didalam sungai terdapat bebatuan kecil,batu besar, berlumpur dan berpasir.

Data Parameter Fisika dan Kimia AirNo Parameter Hasil Pengukuran dan Pengamatan1. Suhu 22OC2. Kecepatan Arus 0,313. Ph 74. DO 9,43 mg/L5. CO2 23,97 mg/L6. TOM 10,497. Amonia 0,028. Nitrat 0,229. Orthofosfat 0,0910. Kecerahan 100%

Data Pengamatan Organisme (Perifiton yang diperoleh)No Organisme (Perifiton) JumlahKlasifikasi1

2

1

1 Kingdom : PlantaeFilum :ChlorophytaSubfilum : ChlorophyceaeOrdo : ZygrematalesFamily : MesotaeniaceaeGenus : SpirotaeniaSpesies : Spirotaenia condensata

Kingdom : PlantaeFilum : ChlorophytaSubfilum : ChlorophyceaeOrdo : ZygrematalesFamily : MesotaeniaceaeGenus : RoyaSpesies : Roya obtusa

C. PlanktonGambar Lokasi Pengambilan Sampel

Stasiun 3Deskripsi LingkunganCuaca saat praktikum ekologi perairan untuk pengamatan plankton adalah cerah berawan,

sinar matahari tidak begitu panas dan udaranya sejuk, semilir angin disekitar lingkungan tempat praktikum.

Waktu pengambilan sampel plankton pada pukul 09.30 WIBDeskripsi Lingkungan Sekitar

Disekitar lokasi pengambilan sampel terdapat persawahan, sepetak kebun, sungai yang mengalir dan ada hutan pinus disekitar lokasi kolam.

Deskripsi Lingkungan stasiunLingkungan stasiun lokasi pengambilan sampel plankton berada pada kolam buatan yang terbuat dari semen, yang tedapat inlet outletnya. Airnya jernih, perairannya dangkal dan terdapat azola di bebatuan pinggir sungai.

Data Parameter Fisika dan Kimia AirNo Parameter Hasil Pengukuran dan Pengamatan1. Suhu 22OC2. Kecepatan Arus 03. Ph 84. DO 9,59 mg/L5. CO2 19,99 mg/L6. TOM 7,967. Amonia 0.018. Nitrat 0,189. Orthofosfat 0,2610. Kecerahan 100%

Data Pengamatan Organisme (Plankton yang diperoleh)No Organisme (Perifiton) JumlahKlasifikasi1

2

3

1

1

1Kingdom : Animalia

Filum : AthropodaKelas : MaxilopodaOrdo : CyclopodaFamili : CyclopidaeGenus : AchanthrocyclopsSpesies : Achanthrocyclops robuchus

Kingdom : AnimaliaFilum : AthropodaKelas : MaxilopodaOrdo : CyclopodaFamili : CyclopidaeGenus : CyclopsSpesies : Cyclopsi thomesi

Kingdom : AnimaliaFilum : AthropodaKelas : BranchiopodaOrdo : DipclostracaFamili : ChyboridaeGenus : PleuroxusSpesies : Pleuroxus striatus

Analisa ProsedurParameter FisikaSuhu

Pada pengukuran suhu yang dilakukan pertama kali di lakukan adalah di siapkan alat dan bahan yang akan di gunakan di antaranya adalah thermometer Hg untuk mengukur suhu, stopwatch untuk mengukur waktu dan air sampel sebagai bahan yang di ukur. Sedangkan pengukurannya yaitu memasukkan thermometer Hg dalam perairan dengan memegang ujung bagian tali nya selama ± 2 menit dengan membelakangi matahari. Agar tidak mempengaruhi suhu air raksa dalam thermometer. Setelah air raksa berhenti pada skala tertentu angkat thermometer kemudian catat hasilnya. Terakhir di bersihkan kembali thermometer dengan tissue dan masukkan dalam tempatnya kembali.

KecerahanPada pengukuran kecerahan pertama kali di lakukan adalah menyiapkan alat dan bahan yang akan di gunakan diantaranya adalah secchi disk untuk mengukur kecerahan perairan, penggaris untuk mengukur panjang tali (d1 dan d2), karet gelang untuk menandai, dan tali untuk mengikat secchi disk. Perairan sebagai bahan yang akan di ukur kecerahannya. Selanjutnya perlahan memasukkan secchi disk dalam perairan hingga batas tampak pertama kali, tandai sebagai d1 dengan karet gelang. Kemudian masukkan lebih dalam lagi hingga tak tampak, lalu perlahan tarik ke atas hingga batas tampak pertama kali tandai sebagai d2. Kemudian catat hasilnya dengan mengukur menggunakan penggaris. Kemudian hitung hasilnya menggunakan rumus sebagai berikut :Keterangan: D1 = batas tampak pertama kali D2 = batas tampak kedua

Kecepatan ArusPada pengukuran kecepatan arus pertama kali di lakukan adalah menyiapkan alat dan bahan yang di perlukan di antaranya adalah 2 botol mineral bekas 600 ml untuk mengukur arus sebagai pemberat dan pelampung, stopwatch untuk menghitung waktu, tali rafia untuk mengikat botol, sedangkan untuk bahannya perairan sebagai air sampel. Untuk pengukurannya pertama ikat kedua botol dengan tali rafia dengan jarak 5 meter kemudian isi salah satu botol dengan air untuk pemberat. Skema nya pertama lemparkan botol pada perairan mngikuti arah arus. Kemudian catat waktu tempuh tali untuk merenggang. Kemudian hitung menggunakan rumus sebagai berikut: keterangan: V = Kecepatan arus (m/s)

S = Panjang tali (m)t = Waktu tempuh (s)

4.2.2 Parameter kimiapH

Dalam pratikum Ekologi Perairan untuk pengukuran pH, hal pertama yang dilakukan adalah disiapkan alat dan bahan. Alat yang digunakan antara lain adalah kotak standart pH sebagai alat untuk mencocokkan perubahan warna pada pH paper, stopwatch untuk mencatat waktu pada saat pH paper dicelupkan ke dalam air sampel. Sedangkan bahan yang digunakan yaitu pH paper sebagai indicator asam basa.Setelah semua bahan siap, pH paper dicelupkan ke dalam air sampel selama ± 2 menit. Selanjutnya pH paper dikibas-kibaskan sampai setengah kering dan ditunggu hingga terjadi perubahan warna. Dicocokkan perubahan warna dengan kotak standart dan dilihat berapa nilai

pHnya kemudian dicatat hasilnya.

DODalam pratikum Ekologi Perairan untuk pengukuran DO, hal pertama yang dilakukan adalah disiapkan alat dan bahan. Alat yang digunakan antara lain botol DO 250 ml untuk mengambil air sampel yang kan diukur DOnya, pipet tetes untuk mengambil larutan MnSO4, NAOH+KI, H2SO4 dan amylum dalam skala kecil, buret sebagai tempat larutan Na2S2O3 untuk titrasi, statif sebagai penyangga buret,corong untuk memasukkan larutan Na2S2O3 ke dalam buret. Sedangkan bahan yang digunakan antara lain yaitu air sungai dan air kolam sebagai sampel yang akan diukur kadar DOnya, MnSO4 2 ml untuk mengikat oksigen , NaOH + KI 2 ml untuk membentuk endapan coklat dan mengikat I2, H2SO4 untuk pengkondisian asam dan melarutkan endapan coklat, amylum untuk pengkondisian basa dan sebagai indicator warna ungu, Na2S2O3 0,025 N sebagai larutan titrasidan tissue untuk membersihkan alat-alat yang telah digunakan.Mula-mula dicatat volume botol DO yang digunakan. Dibuka tutup botol DO dan dimasukkan botol ke dalam perairan secara perlahan-lahan dengan , selanjutnya botol DO diisi air sampel dan ditutup saatposisi 45 botol masih dalam perairan dan jangan sampai timbul gelembung udara lalu diangka. Ditambahkan 2 ml MnSO4 dan 2 ml NAOH + KI, dibolak-balik sampai terjadi endapan coklat. Ditunggu beberapa menit sampai endapan coklat terbentuk lalu buang air yang bening hingga hanya tersisa endapan coklat . Tambahkan 2 ml H2SO4 pekat untuk melarutkan endapan coklat dan dihomogenkan. Tambahkan 3 tetes amylum sebagai indicator warna ungu. Lalutitrasi dengan Na2S2O3 0,025 N sampai jernih pertama kali. Dicatat banyaknya ml Na2S2O3 yang terpakai (titran). Dihitung dengan rumus :

Keterangan : V (titran) = Volume Na2S2O3 yang terpakai

N (titran) = Konsentrasi Na2S2O38 = Ar O21000 = jumlah liter air

V botol DO = volume botol DO yang digunakan4 = asumsi air yang tumpah

C. CO2Dalam pratikum Ekologi Perairan untuk pengukuran pH, hal pertama yang dilakukan adalah disiapkan alat dan bahan. Alat yang digunakan antara lainErlenmeyer 50 ml untuk mereaksikan larutan , pipet tetes untuk mengambil larutan PP, buret sebagai wadah larutan Na2CO3 0,0454 N, statif sebagai penyangga buret, gelas ukur 50ml untuk mengukur volume air sampel, 2 ml larutan Na2CO3 0,0454 N sebagai larutan titran dan mengikat CO2 di perairan, indicator PP sebagai indicator suasana basa, air sungai dan air kolam sebagai sampel yang akan diukur kadar CO2 nya.Langkah berikutnya dimasukkan 25 ml air sampel ke dalam Erlenmeyer. Lalu ditambahkan 5 tetes indicator PP sebagai indicator suasana basa dan dilihat perubahan warna yag terjadi. Jika air tidak berwarna maka dititrasi dengan Na2CO3 0,0454 N untuk mengikat CO2 bebas yang ada di sampel sampai warna pink pertama kali, dicatat ml titran Na2CO3 yang terpakai dan hitung dengan rumus CO2 bebas dengan rumus :

Keterangan : ml (titran) =Volume Na2CO3 yang terpakaiN (titran) =Konsentrasi Na2CO322 = Ar CO21000 = jumlah liter airD. TOMDalam pratikum Ekologi Perairan untuk pengukuran pH, hal pertama yang dilakukan adalah disiapkan alat dan bahan. Alat yang digunakan antara lain Erlenmeyer 100 ml untuk mereaksikan larutan, Buret sebagai wadah larutan titrasi, statif sebagai penyangga buret, gelas ukur untuk mengukur jumlah air sampel yang digunakan, pipet tetes untuk mengambil larutan Na-oxalate dengan skala kecil, water bath sebagai tempat memanaskan air sampel, bola hisap untuk membantu proses pengambilan larutan dengan pipet volume, thermometer Hg digunakan untuk mengukur suhu air sampel yang telah dipanaskan.Sedangkan bahan yang yang digunakan adalah air kolam dan air sungai sebagai sampel yang akan diukur kadar TOMnya. KMnO4 sebagai indicator dan mengikat bahan organic Na-oxalate berfungsi sebgai reduktor, H2SO4 untuk mempercepat reaksi dan pengkondisian asam, aquadest sebagai factor nilai y dalam menghitung pelarut larutanLagkah berikutnya mengambil air sampel 25 ml lalu dimasukkan ke dalam Erlenmeyer dan menambhakan 4,8 ml KMnO4 0,01 N dan buret, menambahkan 5 Cml H2SO4 , lalu dipanaskan dalam water bath samapi suhu mencapai 75 C langsungkemudian diangkat, bila suhu telah turun menjadi 65 menambahkan Na-oxalate 0, 01 N perlahan sampai tidak berwarna lalu dititrasi dengan KMnO4 KMnO40,01 N samapi terbentuk warna Pink dan dicatat ml titran yang terpakai (x) ml. kemudian mengambial 50 ml aquadest dengan melakukan prosedur sepert di atas dengan bahan aquadest dan dicatat titran yang terpakai sebagai (y) ml. dihitung kadar TOM dengan rumus :

Keterangan:X = volume titran dari larutan sampelY = volume titran dari aquadest31,6 = 1⁄(2 ) Mr0,01 = konstanta1000 = jumlah liter airml air sampel = jumlah air sampel yang digunakan

E. AmoniaDalam pengukuran Amonia di lapangan langkah pertama yaitu disiapkan alat-alat dan bahan yang digunakan diantaranya backer glass sebagai tempat mencampur larutan, gelas ukur untuk mengukur air sampel, cuvet sebagai tempat larutan sampel indikator, pipet tetes digunakan untuk mengambil pereaksi nessler dalam skla kecil, rak cuvet untuk meletakkan cuvet dan spektrofotometer untuk mengukur parameter dengan menggunakan panjang gelombang 425 µm . Sedangkan bahan yang digunakan yaitu air kolam dan air sungai sebagai sampel yang diukur amonianya, pereaksi nessler untuk mengikat amonia dan indikator warna kuning, tissue

digunakan untuk meletakkan pipet tetes, larutan blanko untuk mengkalibrasi (aquades, alkohol), kertas saring untuk menyaring air sampel, dan kertas label sebagai penanda. Langkah berikutnya mengambil 50ml air sampel lalu dimasukkan kedalam erlenmeyer berukuran 250ml, menambahkan 1ml larutan nessler kedalam erlenmeyer yang telah berisi air sampel, didiamkan ±10 menit, lalu dimasukkan kedalam cuvet dan dihitung kadar amonia menggunakan spektrofotometer dengan panjang gelombang 425 µm serta di catat hasilnya.F. NitratLangkah awal dalam pengukuran kadar nitrat yaitu disiapkan alat-alat dan bahan yang akan digunakan diantaranya cawan porselen sebagai tempat kerak nitrat, spatula sebagai pengaduk larutan supaya homogen, gelak ukur 50 ml untuk mengukur volume air sampel, pipet tetes untuk mengambil larutan asama fenol disulvonik dan NH4OH, Washing bottle sebagai wadah aquades,cuvet sebagai wadah larutan yang telah direaksikan,rak cuvet sebagai tempat cuvet, hotplate untuk memanaskan larutan, spektrofotometer untuk mengukur kadar nitrat, air sungai dan air kolam sebagai bahan yang diukur kadar nitratnya , larutan asam fenol disulvonik untuk melarutkan kerak nitrat, aquades untuk mengencerkan dan mengkalibrasi alat-alat, kertas saring untuk menyaring air sampel, kertas label untuk menandai sampel pada cuvet , selanjutnya disaring dengan 25 ml air sampel dengan kertas saring, dan dituangkan kedalam cawan porselen, diuapkan diatas pemanas (hotplate) sampai terbentuk kerak dan didinginkan. Lalu ditambahkan 1 ml asam fenol disulvonik untuk melarutkan kerak nitrat diaduk dengan spatula dan diencerkan dengan aquades sebanyak 25 ml. Setelah itu ditetesi NH4OH sampai berwarna kuning dan encerkan dengan aquades sampai 25 ml, masukkan kedalam cuvet dan ditandai dengan kertas label, menghitung kadar nitrat dengan menggunakan spektrofotometer dengan panjang gelombang 410 µm dan catat hasil yang diperoleh.G. OrthofosfatDalam praktikum ekologi perairan pada pengukuran Orthofosfat langkah pertama yaitu disiapkan alat dan bahan, diantaranya adalah erlenmeyer 50 ml untuk mereaksikan larutan, cuvet sebagai tempat sampel yang akan diuji kadar fosfat, rak cuvet untuk meletakkan cuvet, pipet tetes untuk mengambil larutan amonia molybdat dan SnCl2, spektrofotometer untuk mengukur fosfat, larutan ammonium molybdat untuk mengikat fosfor di perairan, larutan snCl2 sebagai indikator warna biru, air kolam dan air sungai sebagai air sampel yang akan diuji, kertas label untuk menandai cuvet. Langkah selanjutnya dimasukkan 25ml air sampel kedalam gelas ukur lalu dituangkan ke erlenmeyer. Ditambahkan 1 ml larutan ammonium molybdat untuk mengikat fosfat diperairan dan dihomogenkan. Kemudian dituangkan kedalam cuvet, ditandai dengan kertas label, lalu ditentukan kadar fosfat dengan spektrofotometer serta dicatat hasilnya.4.2.3 Parameter Biologi

BenthosDalam pratikum Ekologi Perairan untuk pengamatan benthos hal pertama yang dilakukan yaitu menyiapkan alat dan bahan diantaranya botol film sebagai wadah sempel benthos, tiang jala sebagai alat untuk menyaring organisme, pepet tetes untuk mengambil larutan alkohol 96%, benthos sebagai sampel , larutan alkohol 96% untuk mengawetkan sampel benthos, baju kicking sebagai alat untuk mengambil sampel benthos, sepatu kicking sebagai alat untuk mengambil sampel benthos. Lalu selanjutnya dipegang tiang jala dengan arah berlawanan arus, diaduk dasar perairan dua kali dengan memakai baju kicking sambil mendorong jala, diperiksa dalam jala jika terdapat batu atau ranting dicuci bersih di dalam jala, jala dibalik kearah luar sambil dibersihkan di dalam air, difilter kearah benthos di wadah atau nampan ke dalam botol film dengan menggunakan pinset lalu tambahkan alkohol 96% sebagai bahan pengawet, pengamatan benthos

di laboratorium untuk benthos berukuran kecil diamati secara langsung dengan menggunakan mikroskop okuler atau loop, diamati bentuk serta jenis benthos lalu dicocokkan dengan buku indentifikasi benthos, dicari filum dan klasifikasinya.

PerifitonPada pengamatan perifiton pertama kali di lakukan adalah menyiapkan alat dan bahannya. Di antaranya yaitu botol film untuk tempat menyimpan sampel, mikroskop untuk pengamatan objek , objek glass untuk preparat pengamatan, cover glass untuk penutup objek glass, sikat gigi bekas untuk penggaruk yang memisahkan perifiton yang menempel pada objek, washing bottle untuk tempat aquades, buku presscot untuk identifikasi perifiton. Sedangkan untuk bahannya adalah perairan untuk sampel, lugol untuk preservasi, aquades untuk kalibrasi dan tissue untuk bahan pembersih alat-alat.Sedangkan pengamatannya mula-mula perifiton di dapatkan dengan cara mengambil salah satu substrat di dalam lingkungan transek kemudian substrat tersebut di kerik bagian permukaan nya dengan menggunakan sikat gigi bekas seluas 2×2 cm2. Kemudian masukkan dalam botol film dan beri bahan preservasi lugol untuk mengawetkan sampel.Pada pengamatan di laboratorium pertama membuat preparat terlebih dulu dengan cara membersihan objek glass dan cover glass dengan aquades kemudian mengambil sampel yang telah di awetkan tadi menggunakan pipet tetes, kemudian di letakkan pada objek glass dan tutup dengan cover glass. Kemudian letakkan preparat di bawah mikroskop untuk pengamatan. Atur perbesaran lensa 100-400 kali pembesaran. Kemudian amati perifitonnya dan cocokkan bentuk nya dengan buku presscot untuk mengetahui jenis dan fillum nya. kemudian catat dan gambar pada lembar yang telah di sediakan.

PlanktonPada pengamatan plankton, alat-alat yang diperlukan adalah botol film, plankonet, timba, mikroskop, tali, objek glass, cover glass, washing bottle, dan buku identifikasi presscot. Adapun bahan yang dipakai adalah air kolam, lugol, kertas label, tissue dan aquadest. Adapun langkah-langkah yang diperlukan adalah planktonet dicelupkan kedalam perairan sampai terkena air seluruhnya, lalu dipasnagkan botol film diujunganya dan diikat. Air dan diambil dan disaring dengan planktonet. Lalu diberi bahan preservasi kurang lebih 3 tetes untuk konsentrasi plankton yang tertampung dalam botol film. Kemudian diberi label dan dimasukan kedalam cool box. Pada pengamatan plankton di laboratorium sampel awetan diambil dengan memakai pipet tetes lalu diamati dibawah mikroskop dengan perbesaran 100-400 kali perbesaran. Diamati dan digambar ciri-ciri species yang didapat, dococokan dengan buku identifikasi atau buku Presscot.4.3 Analisa Hasil4.3.1 Rantai Makanan Yang TerjadiRantai makanan yang terjadi didalam Ekosistem perairan baik di sungai dan di kolam saat praktikum Ekologi Perairan di mata air Sumber Awan Singosari. Di kolam terdapat fitoplankton yang berperan sebagai produsen utama atau produktifitas primer dan zooplankton sebagai konsumen tingkat saru dan selanjutnya dimakan oleh ikan-ikan kecil. Sampai ikan –ikan besar yang ada dikolam tersebut. Sedangkan di dalam sungai terdapat perifiton dan benthos yang saling membentuk rantai makanan dan juga dengan ikan- ikan kecil dan besar di sungai.Menurut Musa dan Uun (2006), rangkaian rantai makanan terbentuk saat ikan kecil dimakan oleh yang besar,ikan dimakan burung atau mamalia yang merupakan cross link diantara rantai makanan atau jarringan makanan. Masing- masing tingkat rantai makananorganisme akan dimakan oleh predator bergantung masing – masing ukuran organisme, pada tingkat yang lebih rendah ikan dibutuhkan oleh ratusan macro- invertebrate.

4.3.2 Hubungan Tiap Parameter Kualitas Air (Fisika dan Kimia)Hubungan suhu dengan kecerahan dan arus

Suhu perairan dipengaruhi oleh intensitas cahaya yang masuk ke dalam air. Suhu selain berpengaruh terhadap berat jenis, viskositas, dan densitas air, juga berpengaruh terhadap kelarutan gas dan unsur-unsur dalam air. Sedangkan perubahan suhu dalam kolom air akan menimbulkan arus secara vertikal. Secara langsung suhu berperan dalam ekologidan distribusi plankton, baik fitoplankton maupun zooplankton (Subarijanti, 1994 dalam Apridayanti, 2008).Pada praktikum Ekologi Perairan di mata air Sumber Awan Singosari diperoleh pengamatan bahwa arus di perairan tersebut tidak begitu deras dengan kecerahan yang 100%. Akan tetapi suhu pada perairan tersebut C, hal ini dikarenakan banyaknya vegetasi yangberkisar sekitar 21-23 ada di sekitar perairan.

Hubungan DO dengan suhu dan bahan organikMenurut Michael (1984) dalam Siregar (2010), oksigen hilang dari air secara alami oleh adanya pernafasan biota dan penguraian bahan organik, aliran masuk air bawah tanah yang miskin oksigen dan kenaikan suhu. C, yaituKelarutan maksimum oksigen di dalam air terdapat pada suhu 0 sebesar 14,16 mg/l air. Sedangkan oksigen terlarut di perairan tidak lebih dari 8 mg/l.Dari hasil pengamatan kualitas air di perairan Sumber Awan Singosari diperoleh kandungan DO berkisar 9 mg/l dengan suhu perairan rata-rata C. Dari data tersebut menunjukkan bahwa kandungan DO di perairan21-23 tersebut tidak terlalu maksimum.

Hubungan pH dengan amoniaMenurut Barus (2004) dalam Siregar (2010), pH yang tinggi akan menyebabkan keseimbangan antara amonium dan amoniak dalam air akan terganggu, dimana kenaikan pH di atas normal akan meningkatkan konsentrasi amoniak yang juga bersifat sangat toksik bagi organisme.Dari hasil pengamatan kandungan amonia dan pH pada perairan di Sumber Awan singosari didapatkan nilai pH yaitu 8 dan kandungan amonianya tergolong rendah yaitu 0,02. Hal ini dipengaruhi oleh nilai pH yang tidak tinggi bahkan mendekati netral.

Hubungan pH dengan CO2Menurut Kristanto (2002) dalam Siregar (2010), nilai pH air yang normal adalah sekitar netral yaitu 6-8. Air yang masih segar dari pegunungan biasanya memiliki pH yang lebih tinggi. Semakin lama pH air akan menurun menuju kondisi asam. Hal ini disebabkan oleh bertambahnya bahan-bahan organik yang membebaskan CO2 jika mengalami proses penguraian.Dari pengamatan yang dilakukan di perairan Sumber Awan Singosari diperoleh nilai pH sekitar 8 dan kandungan CO2 berkisar 20-35 mg/l. Hal ini menunjukkan telah terjadi pelepasan CO2 dalam perairan tersebut.

Hubungan nitrat dengan arusMenurut Ulqodry, et al. (2009), adanya kandungan nitrat yang rendah dan tinggi pada kedalaman-kedalaman tertentu dapat disebabkan oleh berbagai faktor, antara lain adanya arus pada kedalaman air tersebut.Pada pengamatan kandungan nitrat di perairan Sumber Awan Singosari diperoleh kadar nitrat sebesar 0,2 di sungai dan 0,1 di kolam. Nilai ini tergolong rendah karena pada perairan sungai terdapat arus sebesar 0,3-0,4 m/s dan kedalaman perairan yang tergolong dangkal.4.3.3 Hubungan Parameter Kualitas Air (Fisika dan Kimia) dengan Benthos

Hubungan DO dengan benthosRendahnya kadar oksigen terlarut pada perairan dikarenakan substrat perairan sebagian besar berupa pasir dan lumpur. Ukuran partikel yang sangat halus disertai dengan sudut dasar sedimen yang datar menyebabkan air di dalam sedimen tidak mengalir keluar dan bertahan di dalam

substrat. Hal ini akan menghasilkan penurunan kadar oksigen semakin tinggi sedimen maka semakin berkurang kandungan oksigen terlarut (Rakhmanda, 2011).Dari hasil pengamatan substrat dan benthos yang didapat tidak terlalu banyak sehingga menyebabkan kandungan oksigen tinggi yaitu sebesar 12,5 mg/l karena DO tidak banyak berkurang. Hal ini menyebabkan organisme air termasuk benthos dapat berkembang dengan baik pada perairan tersebut.Menurut Sastrawijaya (1991) dalam Yazwar (2008), kehidupan organisme akuatik berjalan dengan baik apabila kandungan oksigen minimal 5 mg/l.

Hubungan suhu dengan makrozoobenthosSuhu dapat menjadi faktor penentu atau pengendali kehidupan flora dan fauna akuatis, terutama suhu di dalam air yang telah melampaui ambang batas (terlalu hangat atau dingin). Jenis fauna dan jumlahnya sangat dipengaruhi oleh kenaikan suhu dan penurunan suhu air, terutama dengan kenaikan suhu dalam air. Dari hasil pengukuran suhu pada perairan di C. Kisaran suhuperairan Sumber Awan Singosari berkisar antara 21-23 tersebut kurang sesuai dengan kehidupan makrozoobenthos di perairan sungai.Karena dalam suatu literatur Hutabarat dan Evans (1985) dalam Rakhmanda (2011), menyatakan bahwa suhu untuk siklus hidup organisme akuatik C.berkisar 26-31

Hubungan pH dengan benthosMenurut Widiastuti (1983) dalam Rakhmanda (2011), kisaran pH substrat yang layak bagi kehidupan organisme akuatik berkisar antara 6,6-8,5.Sedangkan pada pengamatan pH yang diperoleh di stasiun Benthos 3 di perairan Sumber Awan Singosari diperoleh nilai sebesar 8. Jadi nilai pH tersebut termasuk layak untuk pertumbuhan dan perkembangan organisme perairan tersebut.Hubungan parameter fisika dan kimia dengan benthos tampak bahwa faktor lingkungan yang paling berpengaruh adalah jenis substrat dasar, kandungan oksigen terlarut, kandungan karbondioksida, serta kedalaman dan kecerahan air. Sedangkan faktor yang kurang berpengaruh adalah pH pada substrat, suhu air, dan suhu udara (Rakhmanda, 2011).4.3.4 Hubungan Parameter Kualitas Air (Fisika dan Kimia) dengan Perifitona. Hubungan Suhu dengan PerifitonMenurut Talaumbawa, et al., (2013), menyatakan suhu perairan yang berkisar antara 20-30 oC. Merupakan nilai suhu yang masih tergolong dalam perairan yang menunjang kehidupan perifiton. Dan menurut Effendi (2003), dalam Talaumbawa, et al., (2003), alga dari filum Chlorophyta dan Bacillariophyta akan tumbuh baik pada kisaran suhu 30-35 oC dan 20-30 oC. Sedangkan jenis Cyianophyta lebih dapat bertoleransi terhadap kisaran suhu lebih tinggi.Dari hasil pengamatan di lapangan dan pada laboratorium suhu pada sungai tempat stasiun berkisar 21 oC. Jadi suhu tersebut dapat menunjang kehidupan perifiton untuk bertahan hidup.b. Hubungan Kecepatan Arus dengan PerifitonMenurut Weleh (1980), dalam Weddyastuti (2011), dalam Teleumbawa, et al., (2013), menyatakan bahwa katagori untuk perairan yang berarus sedang berkisar antar 0,25-0,5 m/s. Hal ini disebabkan karena perbedaan topografi aiantar stasiun pengamatan perifiton yang hidup di dalamnya.Dari hasil pengukuran kecepatan arus di stasiun 3 pada sungai di Sumber Awan, Singosari, Malangdiperoleh kecepatan arus 0,454 m/s. Jadi kecepatan tersebut dapat sesuai dengan kehidupan organism perifiton dalam perairan tersebut.c. Hubungan Oksigen Terlarut dengan Suhu dan PerifitonMenurut Wibowo (2004), dalam Teleumbawa, et al., (2013), organisme-organisme akuatik

biasanya membutuhkan oksigen terlarut dengan kisaran 5-8 mg/l untuk dapat hidup secara normal. Nilai kelarutan oksigen dipengaruhi salah satunya suhu air.Dari hasil pengamatan perifiton di stasiun 3, Sungai Sumber Awan, Singosari, Malang diperoleh kadar DO yaitu sekitar 9-12 mg/l. Hal ini menunjukkan bahwa kandungan DO tersebut tergolong tinggi dan melebihi kebutuhan normal oksigen terlarut pada organisme. Sehingga menyebabkan cuaca dan keadaan disekitar stasiun pengamatan sejuk.d. Hubungan Nitrat dengan PerifitonMenurut Effendi (2003), dalam Teleumbawa, et al., (2013), perairan yang alami memiliki kandungan nitrat < 0,1 mg/l dan kondisi pencemaran yang antopogenik > 5 mg/l, kisaran nitrat yang baik untuk pertumbuhan perifiton antara 0,01-5 mg/l.Dari hasil pengamatan yang dilakukan pada stasiun 3 di daerah Sungai Sumber Awan, Singosari, Malang diperoleh kandungan nitrat pada air sampel perifiton yaitu sebesar 0,23 mg/l. Jadi kadar tersebut menandakan bahwa perairannya alami dan baik untuk pertumbuhan perifiton berdasarkan literature diatas.

4.3.5 Hubunagna Parameter Kualitas Air (Fisika dan Kimia), dengan PlanktonHubungan Suhu dengan Plankton

Suhu berpengaruh langsung terhadap proses metabolisme sel organism air. Menurut Effendi (2003), dalam Apridayanti (2008), peningkatan suhu menyebabkan peningkatan kecepatan proses metabolisme air dan respirasi organism organism air. Selanjutnya mengakibatkan peningkatan dekomposisi bahan organic mikroba. Kisaran suhu yang optimum bagi pertumbuhan fitoplankton adalah antara 20-31 oC.Suhu di kolam berdasarkan hasilpengamatan pad akolam untuk pengamatan plankton dilakukan pada pukul 09.30 WIB. Alat yang digunakan yaitu Thermometer Hg, dan diperoleh suhu berkisar antara 22 oC. Pada dasarnya suhu berpengaruh langsung terhadap aktivitas dan pertumbuhan organism air. Organisme air memiliki kisaran tertentu untuk dapat tumbuh dengan baik sehingga berdasarkan keterangan di atas maka dapat dikatakan bahwa suhu di kolam Sumber Awan , Singosari , Malang masih optimum untuk pertumbuhan fitoplankton.

Hubungan pH dengan PlanktonpH kolam berdasarkan hasil pengamatan pada praktikum Ekologi Perairan menggunakan pH paper pada pukul 09.30 WIB didapatkan nilai pH 8. Hal ini menunjukan bahwa kolam berada dalam kondisi basa. Tingkat basa suatu perairan disebabkan oleh karbonat hidroksida dan bikarbonat. Jika pH perairan asam maka organisme akuatik tidak akan mampu mempertahankan hidup dan akan menunjukkan pertumbuhan kearah negative.Hal ini sesuai dengan Witzel (1979), dalam Wijaya (2009), nilai pH sebagai penentu dominasi fitoplankton. Pada umumnya algae biru lebih menyukai pH netral sampai basa dan respon pertumbuhan negative terhadap pH asam (<6). Pada umumnya Crysophyta ada pada kisaran Ph 4,5- 8,5, dan diatom pada pH netral akan mendukung keragamannya.

Hubungan Kecerahan dengan PlanktonNilai kecerahan pada praktikum Ekologi Perairan yang dilaksanakan pukul 09.30 WIB, denagn menggunakan alat secchi dish di dapatkan hasil kecerahan 100%. Nilai kecerahan dipengaruhi oleh ada tidaknya tumbuhan yang menutupi perairan. Nilai kecerahan ini sangat baik untuk pertumbuhan plankton terutama fitopalnkton karena fitoplankton membutuhkan sinar matahari untuk fotosintesis.

Menurut Kordi dan Tanjung (2005), dalam Handayani (2009), semua plankton menjadi bahaya apabila kekeruhan kurang dari 25 cm. Kekeruahan yang menghambat penetrasi cahaya matahari dalam proses fotosintesis fitoplankton.

Hubungan DO denagn PlanktonDalam praktikum Ekologi Perairan untuk pengukuran DO di peroleh kandunagn sebesar 19,59 mg/l. Nilai ini termasuk tinggi dan bagus untuk perkembangan organisme fitoplankton dalam perairan tersebut serta untuk organismse akuatik. Hal ini menunjukkan bahwa banyak organime Fitoplankton dalam perairan tersebut yang berfotosintesis dan adanya banyak tumbuhan hijau disekitar kolam.Menurut Sanusi (2004), dalam Yazwar (2009), nilai DO yang cukup baik bagi kehidupan organisme akuatik berkisar antara 5,45 7,00 mg/l. Selain itu keberadaan oksigen di perairan ditemukan oleh kelimpahan fotoplankton. Hal ini erat kaitannya dengan kandunagn klorofil pada fitoplankton yang menghasilkan oksigen pada proses fotosintesis (Subarijanti, 1990 dalam Apridayanti, 2008).

5. PENUTUP

KesimpulanDari praktikum Ekologi Perairan dapat disimpulkan bahwa :

Ekologi Perairan adalah ilmu yang mempelajari hubungan organisme dengan lingkunganya yaitu organisme perairan dan lingkungan akuatik

Kolam adalah daerah perairan kecil dimana zona litoralnya relatif besar dan daerah limnetiknya secara profundal kecil bahkan tidak ada.

Sungai dicirikan dengan adanya arus yang searah dan relatif kencang dengan kecepatan pada saat praktikum diperoleh berkisar 0,3-0,45 mg/s, serta sangat dipengaruhi oleh waktu, iklim dan cuaca serta pola drainase

Siklus hidrologi air tergantung pada proses evaporasi dan presipitasiBenthos merupakan makhluk hidup yang melekat atau sedang beristirahat pada dasar

perairan atau yang hidup didasar sedimen perairanPerifiton adalah organisme yang hidup menempel pada subtrat yang tenggelam seperti

batu, kayu dan subtrat lainnyaPlankton adalah orgaisme yang hidup melayang dalam perairan, pergerakannya sedikit

atau tidak sama sekali dan sangat dipengaruhi oleh arus, organisme halus dan dapat pula disebut jasad-jasad renik

Dalam praktikum ini, benthos yang banyak ditemukan adalah dari famili piscicolides dengan species Spirotaenia condensata dan Roya obtusa. Sedangkan untuk plankton yang ditemukan adalah Acanthrocylops robustus, Diocyclops thomasi dan Plevroxus striatus

Faktor fisika yang mempengaruhi kualitas air pada sungai dan kolam yaitu suhu, urus dan kecerahan

Faktor kimia yang mempengaruhi kualitas air pada sungai dan kolam yaitu PH, DO, CO2, Nitrat, Amonia, Orthofosfat dan TOM

5.2 SaranPada praktikum Ekologi Perairan disarankan kepada praktikan agar :Lebih teiliti dan berhati-hati saat mengambil sampel agar data yang didapat lebih tepatLebih teiliti didalam melakukan pengmatan di Laboratorium agar hasil yang didapatkan

lebih validLebih teliti didalam melakukan perhitungan agar hasil yang di dapat lebih tepat dan benarBerhati-hati didalam menggunakan perlatan praktikum baik di lapang maupun di

Laboratorium.

DAFTAR PUSTAKA

Apridayanti, Eka. 2008. Evaluasi Pengelolaan Lingkungan Perairan Waduk Lahur Kabupaten Malang, Jawa Timur. Tesis. Program Pasca Sarjana Universitas Diponegoro : SemarangBarus, T.A. 2002. Pengantar Limnologi. USU Press : MedanBatu, Jamar T.F. 1983. Catatan Kuliah Ekologi Umum IPB : BogorEfendi, H. 2003. Telaah Kualitas Air. Konisius : YogjakartaGoldmen Dan Hoine. 1983. The Basic Aquaculture. Vol 1 UTJ: JapanGoogle Images. 2014. Gambar Siklus Air. http://www.googleimage.com. Diakses Pada Tanggal 07 Mei 2014 Pada Pukul 17.05 WIBGoogle Images. 2014. Rantai Makanan. http://www.googleimage.com. Diakses Pada Tanggal 07 Mei 2014 Pada Pukul 17.06 WIBGoogle Images. 2014. Gambar Benthos. http://www.googleimage.com. Diakses Pada Tanggal 07 Mei 2014 Pada Pukul 17.11 WIBGoogle Images. 2014. Gambar Perifiton. http://www.googleimage.com. Diakses Pada Tanggal

07 Mei 2014 Pada Pukul 17.12 WIBGoogle Images. 2014. Gambar Plankton. http://www.googleimage.com. Diakses Pada Tanggal 07 Mei 2014 Pada Pukul 17.13 WIBHandayani, Dian. 2009. Kelimpahan dan Keanekaragaman Plankton di Perairan Pasang Surut Tambak Blanakan Subang. Fakultas Sains dan Ilmu Teknologi . UIN Syarif Hidayatullah : JakartaHeddy, Suwarsono dan Metty Kurniati. 1994. Prinsip-Prinsip Dasar Ekologi. PT Raja Grafindo Persada : JakartaIrwan, Zoeraini Djamal. 1997. Ekosistem Komunitas Lingkungan. Bumi Aksara: Jakarta.Mahmudi, Muhammad. 2005. Produktivitas Perairan. Fakultas Perikanan Dan Ilmu Kelautan. Universitas Brawijaya : Malang.Musa, M dan Uun Yanuhar. 2006. Diktat Limnologi. Fakultas Perikanan Dan Ilmu Kelautan. Universitas Brawijaya : Malang.Nyabakken, James W. 1988. Biologi Laut, Suatu Pendekatan Ekologi ”Alih Bahasa”. PT Gramedia : Jakarta.Odum, Eugene P. 1993. Dasar-dasar Ekologi. ”Alih Bahasa”. Gadjah Mada University Press : Yogyakarta.Purwanti, Sri. Richi Hariyanti dan Eny Wiryani. 2011. Komunitas Plakton Pada Saat Pasang dan Surut diperairan Muara Sungai Demaan Kabupaten Jepara. Jurusan Biologi, Fakultas Sains dan Matematika. Universitas Diponegoro : Semarang.Resosoedarmo, Soedrijan. Kuswata Kartawinata dan Aprilani Soegiarto. 1990. Pengantar Ekologi. PT Remaja Roesdakarya : Bandung.Rakhmanda, Andhika. 2011. Estimasi Populasi Gastropoda di Sungai Tambak Bayan Yogjakarta. Jurusan Perikan Fakultas Pertanian. Universitas Gadjah Mada : Yogjakarta.Rifqi, Arif. 2009. Hubungan Ekologi Dengan Ilmu Lain, Populasi Dan Komunitas. Fakultas Biologi. Universitas Nasional : Jakarta Selatan.Sari, T. Ersti Yulika dan Usma. 2012. Studi Parameter Fisika dan Kimia Daerah Penangkapan Ikan Perairan Serat Asam Kabupaten Kepulauan Meranti Propinsi Riau. Fakultas Perikanan dan Ilmu Perikanan. Universitas Riau : Riau.Siregar, Miran Hasudungan. 2009. Studi Keanekaragaman Plankton di Hulu Sungai Asahan Porsea. Skripsi. Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetauan Alam Universitas Sumatera Utara : Medan.Smith, Robert Lio. 1992. Element Of Ecology. West Virginia University.Telaumbamia, Betzy Victor. Terna Alexander dan Ani Suryani. 2013. Produktivitas Primer Perifiton Di Sungai Nobursahan Sumatera Utara. Fakultas Pertanian. Universitas Sumatera Utara : Medan.Ulqodry, T Zia, Yulisman dan Muhammad Syahdan. 2009. Karakteristik dan Sebaran Nitrat, Fosfat Dan DO di Perairan Karimun Jawa Tengah. FMIPA Universitas Sriwijaya dan FPIK IPB : Bogor.Ward, Jivi. 1992. Aquatic Insect Ecology, Biology dan Habitat John Willy Sons, Inc : New York.Wibisono, M.S. 2005. Pengantar Ilmu Kelautan. Gramedia Widiasana Indonesia : Jakarta.Wijaya, Habib Krisna. 2009. Komunitas Perifiton dan Fitoplankton Serta Parameter Fisika dan Kimia Perairan Sebagai Penentu Kualitas Air di Bagian Hulu Sungai Cisadaene, Jawa Barat. Skripsi. Fakultas Perikanan Dan Ilmu Kelautan. IPB : Bogor.Wijayanti, M.Hemy. 2007. Kajian Kualitas Perairan Di Pantai Kota Bandar Lampung

Berdasarkan Komoditas Hewan Makrobenthos. Tesis. Universitas Diponegoro : Semarang.Wolf, Larry L Dan SJ Naughton. 1998. Ekologi Umum. Universitas Diponegoro : Semarang.Yazwar. 2008. Keanekaragaman Planktond Dan Keterkaitannya Dengan Kualitas Air dari Parapa Danau Toba. Tesis. Sekolah Pasca Sarjana. Universitas Sumatera Utara : Medan.Yuniarti, Koniya. 2014. Biologi dan Metode Kultur Plankton Sebagai Pakan Alami Larva Hewan Air. Fakultas Ilmu Perikanan UNG.

laporan praktikum ekologi perairan

Education