126178038 laporan praktikum farmakognosi docx
DESCRIPTION
laporan praktikum farmakognosiTRANSCRIPT
LAPORAN PRAKTIKUM FARMAKOGNOSI
DENGAN SAMPEL SIMPLISIA
Curcuma aeruginosa
Disusun Oleh:
KELOMPOK I
1. Ajeng Dwi A (M3511002)
2. Alfiah Khumaida (M3511003)
3. Anisa Azzahra (M3511004)
4. Aprilia Kusuma R (M3511005)
5. Atifah Nurlailati (M3511006)
6. Auliya Rahmawati (M3511007)
7. Awibi Nur Aisyah (M3511008)
LABORATORIUM BIOLOGI
FAKULTAS MATEMATIKA DAN ILMU PENGETAHUAN ALAM
UNIVERSITAS SEBELAS MARET
SURAKARTA
2011
ACARA I
IDENTIFIKASI KANDUNGAN KIMIA
IDENTIFIKASI KANDUNGAN KIMIA
I. TUJUAN:
1. Dapat melakukan uji pendahuluan
2. Dapat melakukan uji antrakinon
3. Dapatmelakukan uji polifenol
4. Dapat melakukan uji tanin
5. Dapat melakukan uji saponin
II. DASAR TEORI:
Terdapat 2 pendekatan dalam melakukan pencarian kandungan senywa dari
bahan alami yang memiliki aktivitas biologi tertentu yaitu pendekatan
fitofarmakologi dan pendekatan skrining fitokimia. Pendekatan fitofarmakologi
meliputi uji berbagai efek farmakologi terhadap hewan percobaan baik in vivo atau in
vitro dengan ekstrak tumbuhan dan bagian tumbuhan. Berbagai pengujian antara lain
antiviral, antikanker, antimikroba, antimalaria, insektisida, hipoglikemik dan
sebagainya. Pendekatan skrining fitokimia meiputi analisa kualitatif.
Kandungan kimia dalam tumbuhan atau bagian tumbuhan (akar, batang, daun, dunga,
buah dan biji) terutama kandungan metabolit sekundernya, yaitu alkaloid, senyaea
fenol dan terpenoid. Tujuan dilkaukan skrining fitokimia yaitu mensurvai tumbuhan
dalam mendapat kandungan senyawa bioaktif atau kandungan yang berguna untuk
pengobatan.
Metode skrining fitokimia dipilih beberapa persyaratan antara lain sederhana,
cepat, dapat dilakukan dengan dengan peralatan minimal dan selektif terhadap
golongan senyawa yand dipelajari serta dapat memberikan keterangan ada tidaknya
senyawa tertentu dari golongan senyawa yang ada.
Analisa kuantitatif digunakan untuk mengetahui berapa jumlah atau kadar senyawa
yang terkandung dalam suatu bahan sedangkan analisa kualitatif digunakan untuk
mengetahui ada tidaknya suatu senyawa dalam suatu bahan contonya dengan
menggunakan KLT. Kedua metode ini dapat digabungkan dan dapat dilakukan untuk
melakukan survai tumbuhan di lapangan.
1. Uji PendahuluanSerbuk tumbuhan (2 gram) dipanaskandengan 10 ml air selama 30 menit di
atas tangas air mendidih, larutan yang terjadi disaring melalui kapas. Suatu larutan
berwarna kuning sampai merah, menunjukkan adanya senyawa yang mengandung
kromofor (flavanoid, antrakinin dsb) dengan gugus hidrofilik (gugus gula, asam,
fenolat dsb). Pada tumbuhan penambahan larutan kalium hidoksida (3 tetes) waran
larutan akan lebih intensif. (Tim penyusun, 2012).
Alasan lain melakukan analisis fitokimia adalah menentukan senyawa aktif
penyebab efek racun atau efek yang bermanfaat, yang ditunjukkan oleg ekstrak
tumbuhan kasar bila diuji dengan sistem biologi.
2. Uji Antrakinon
Untuk identifikasi digunakan reaksi Borntraeger (Iihat MMI). Antrakuinon
yang mengandung gugus karboksilat (rein) dapat diekstraksi dengan penambahan
basa, misalnya dengan natrium bikarbonat. Hasil reduksi antrakuinon adalah antron
dan antranol, terdapat bebas di alam atau sebagai glikosida. Antron bewarna kuning
pucat, tidak menunjukkan fluoresensi dan tidak larut dalam alkali, sedangkan
isomemya, yaitu antranol bewarna kuning kecoklatan dan dengan alkali membentuk
larutan berpendar (berfluoresensi) kuat. Oksantron merupakan zat antara
(intermediate) antara antrakinon dan antranol. Reaksi Borntraeger modifikasi
Fairbairn, yaitu dengan menambahkan hidrogen peroksida akan menujukkan reaksi
positif. Senyawa ini terdapat dalam Frangulae cortex. Diantron adalah senyawa
dimer tunggal atau campuran dari molekul antron, hasil oksidasi antron (misalnya
larutan dalam aseton yang diaerasi dengan udara). Diantron merupakan aglikon
penting dalam Cassia, Rheum, dan Rhamnus; dalam golongan ini misalnya senidin,
aglikon senosida. Reidin A, B, dan C yang terdapat dalam sena dan kelembak
merupakan heterodiantron.
Kuinon adalah senyawa berwarna dan memiliki kromofor dasar seperti
kromofor pada benzokuinon, yang terdiri atas gugus karbonil yang berkonjugasi
dengan 2 ikatan rangkap karbon-karbon. Untuk tujuan identifikasi kuino dibagi
menjadi 4 kelompok : benzokuinon, naftokuinon, dan kuinon isoprenoid.
Dalam setiap mengidentifikasi pigmen dari sumber tanaman baru tidak banyak
antrakuinon yang terdapat secara teratur dalam tumbuhan. Yang sering dijumpai ialah
emodin. Kurannya terdapat dalam 6 suku tumbuhan tinggi dan dalam sejumlah gugus.
3. Uji Polifenol
Senyawa fenol ada hubungannya dengan lignin terikat sabagai ester atau
tedapat pada daun di dalam fraksi yang tak larut dalam etanol, atau mungkin terdapat
di dalam fraksi yang larut dalam etanol, sebagai glikosida sederhana.
Satu golongan polifenol alam yaitu melanin tumbuhan, pada penguraian basa
menghasilkan juga fenol sederhana, katekol. Sebagian besar melanin tumbuhan,
misalnya pigmen hitam pada kulit biji atau pada spora fungus karat berupa polimer
tak bernitrogen. Mencirikannya yaaitu dengan cara pemanasan 200º C - 300º C dalam
lingkungan nitrogen akan menghasilkan katekol dan peleburan dasa akan
menghasilkan katekol, asam protokatekuat dan asam salisilat.
Polifenol merupakan bagian terpenting bagi tumbuhan kayu, terkait dengan
kualitas kayu dan ketahanan terhadap penyakit. Mengancung paling sedikitnya satu
cincin aromatik yang tersubstitusi satu minimal gugus hidroksil (-OH). Cincin
aromatik yang mengandung bermacam gugus pengganti yang menempel seperti
gugus hidoksil (-OH), karboksil (-COOH) dan metoksi (-OCH3). Sifat fenol lebih
larut dalam air, dan pelarut orgaik polar serta kurang larut dalam pelarut organik non
polar.
4. Uji Tanin
Tanin merupakan senyawa polifenol yang berarti termasuk dalam
senyawafenolik. Tanin dapat bereaksi dengan protein membentuk kopolimer mantap
yang tak larut dalam air. Terdapat 2 jenis utama tanin yaitu tanin terkondensasi,
tersebar pada paku-pakuan, angiospermae dan gymnospermae; dan tanin terhidrolisis,
terdapat padatumbuhan berkeping dua. Tanin dapat dideteksi dengan sinar UV
pendek berupa bercak lembayung yang bereaksi positif dengan setiap pereaksi fenol
baku. Elagitanin(tanin terhidrolisis) bereaksi khas dengan asam nitrit (NaNO2
ditambah dengan asamasetat) membentuk warna merah cerah yang kian lama berubah
menjadi biru indigo.(Harborne, 1987)
Menurut batasanya tanin dapat bereaksi dengan proteina mambentuk
kopolimie mantap yang tidak larut air. Di dalam industri tanin, dimanfaatkan dalam
mengubah kulit hewan mentah menjadi kulit hewan jadi siap pakai karena
kemampuan silang protein. Fungsi utama tanin dalam tumbuhan adalah sebagai
penolak hewan pemakan tumbuhan.
5. Uji Saponin
Saponin adalah glikosida triterpena dan sterol dan telah terdeteksi dalam lebih
dari 90 suku tumbuhan. Saponin merupakan senyawa aktif permukaan dan bersifat
seperti sabun, serta dapat dideteksi berdasarkan kemampuannya membentuk busa dan
menghemolisis sel darah. Encarian saponin dalam tumbuh-tumbuhan telah dirangsang
oleh kebutuhan akan sumber sapogenin yang mudah diperoleh dan dapat diubah di
laboratorium menjadi sterol hewan yang berkhasiat penting (misal kortison, esterogen
kontrasepsi dll)
Sifat-sifat saponin : berasa pahit dan berbusa dalam air, mempunyai sifat deterjen yang baik, beracun bagi binatang berdarah dingin, mempunyai aktivitas hemolisis, merusak sel darah merah, tidak beracun bagi binatang berdarah panas, mempunyai sifat antieksudatif, mempunyai sifat antiinflamasi mempunyai aplikasi yang baik dalam preparasifilm fotograf
Pembentukan busa yang mantap sewaktu mengekstraksi tumbuhan atau waktu
memekatkan ekstrak tumbuhan merupakan bukti terpercaya adanya saponin. Memang
benar bila dalam tumbuhan terdapat banyak saponin, sukar untuk memekatkan
ekstrak alkohol dengan vaik, walaupun digunakan penguap pputar. Karena itu uji
saponin yang sederhana aialah mengocok ekstak alkohol – air dari tumbuhan dalam
tabung reaksi dan diperhatikan apakah ada terbentuk busa tahan lama pada
permukaan cairan. (JB.Harbone,1987)
III. ALAT & BAHAN :
Alat :1. erlenmeyer2. corong3. Cawan porselin4. Oven5. Tabung reaksi6. Pipet7. gelas ukur8. cawan porselin9. penjepit10. kaki tiga11. gelas beker12. kertas saring13. spirtus14. korek api15. corong
Bahan :1. serbuk tanaman2. kloroform3. etanol 95 %4. kertas saring5. KOH 0,5 N6. HCl7. Dragendroff8. pereaksi mayer9. serbuk Na2CO3
10. kertas pH11. CH3COOH 5%12. larutan hidrogen peroksida13. kapas14. FeCl3
15. NaCl 2%16. gelatin 1 %
IV. CARA KERJA
1. Uji Pendahuluan
Tabung Reaksi
Serbuk curcuma aeruginosa 2
gram
Tangas air mendidih
Dimasukkan
Dipanaskan 30 menit
Air 10 ml
Ditambahkan
Filtrat
Kertas Saring
Disaring
Dihasilkan
KOH 3 tetes
Warna larutan menjadi lebih
intensif
2. Uji Antrakinon
H2O2 3 tetes
Filtrat
Disaring
Asam asetat
Dihasilkan
Kertas Saring
Tangas air mendidih
Dididihkan 2 menit
Tabung reaksi
Dimasukkan
100 mg serbuk Curcuma
aeruginosa2 ml KOH 0,5 N
Terbentuk Lapisan
Ditambahkan Ditambahkan3 ml
Toluena
Tabung reaksi
Dipisahkan dengan pipet
KOH 0,5 NDitambahkan
Warna merah menunjukkan senyawa antrakinon
Dididihkan 2 menit
Dimasukkan
3. Uji Polifenol
500 mg serbuk simplisia
Dimasukkan
Dipanaskan selama 10 menit
Disaring panas-panasFiltrat
Warna hijau biru
Tabung Reaksi
3 tetes FeCl3
Ditambahkan
5 ml air
Tangas air mendidih
4. Uji Tanin
500 mg serbuk simplisia 10 ml air
1 ml NaCl 1 %
Tangas air mendidih
Disaring
Ditambahkan
Tabung Reaksi
Filtrat
Dimasukkan
Dipanaskan selama 10 menit
Dimasukkan
Endapan disaring
Filtrat 2 ml Larutan gelatin
1%
Endapan menunjukkan adanya
tanin
5. Uji Saponin
V. HASIL PENGAMATAN
NO UJI IDENTIFIKASI +/- KETERANGAN
1. Polifenol - Tidak mengalami perubahan warna. Warna tetap
kuning kecokelatan.
2. Saponin + Terdapat buih setelah dikocok dan didiamkan
selama 30detik.
3. Uji pendahuluan + Wrna yang semula kuning kecokelatan, setelah
disaring dan ditetesi KOH sebanyak 3 tetes maka
larutan berubah warna menjadi berwarna kuning
sampai merah.
4. Antrakinon - Setelah campuran didihkan dan disaring
didapatkan cairan bening. Kemudian saat diuji
dengan kertas lakmus berwarna hitam yang
menunjukkan basa. Setelah diencerkan untuk
mendapatkan pH 5 dan ditambah dengan KOH
tidak terdapat perubahan pada filtrat tersebut.
100 mg serbuk simplisisa
Tabung reaksi
Buih/sarang lebah
menunjukkan adanya saponin
Ditutup dan dikocok 30 detik,
dibiarkan 30 menit
Dimasukkan
10 ml air
5. Tanin - Setelah dipanaskan 30 menit campuran memisah.
Setelah ditambah NaCl tidak ada endapan begitu
juga saat penambahan larutan gelatin, tidak
ditemukan adanya endapan.
VI. PEMBAHASAN
Uji Pendahuluan
Untuk mengetahui suatu sampel simplisia itu mengandumg senyawa seperti
kromofor(flavonois, antrakinon, dsb) dengan gugus hidrofilik(gugus gula, asam fenolat, dsb)
maka harus dilakukan prosedur kerja sebagai berikut serbuk tanaman sebanyak 2 gram
dipanaskan dengan 10ml air selama 30menit diatas tangas air mendidih, larutan yang terjadi
disaring melalui kertas saring. Jika laruta berwarna kuning sampai merah menunjukkan
bahwa larutan tersebut terdapat senyawa yang mengandung kromofor(flavonois, antrakinon,
dsb) dengan gugus hidrofilik(gugus gula, asam fenolat, dsb). Jika pada saat pengamatan
warna yang teramati kurang sempurna, maka dapat dilakukan dengan cara penambahan 3
tetes laruta kalium hidroksida agar warna larutan lebih intensif. Uji pendahuluan yang
dilakukan pada sampel Curcuma aeruginosa didapatkan hasil bahawarna larutan yang baru
disaring berwarna kuning kecokelatan namun setelah penambahan 3 tetes KOH, maka lama
kelamaan warna berubah menjadi kuning sampai merah. Hal ini dapat menunjukkan bahwa
sampel simplisia temu ireng terdapat senyawa yang mengandung kromofor dengan gugs
hidropilik.
Uji Antrakinon
Pada pengujian antrakinon harus dilakukan pengamatan dengan prosedur sebagai
berikut. Pertama 100gram serbuk tumbuhan didihkan selama 2 menit dengan kalium
hidroksida dan larutan hidrogen peroksida. Seyelah dingin, suspensi disaring melalui kertas
saring. Filtrat ditambahkan asam asetat sampai pH 5, lalu ditambah toluen 3ml. Lapisan atas
dipisahkan dengan pipet dan dimasukkan dalam tabung reaksi, kemudian ditambah KOH.
Perubahan warna yang terjadi yaitu akan berwarna merah pada lapisan air (basa) yang
menunjukkan adanya senyawa antrakinon. Dari prosedur tersebut didapatkan hasil
pengamatan yaitu setelah campuran didihkan dan disaring akan didapat cairan yang bening.
Kemudian, saat diuji dengan kertas lakmus berwarna hitam yang menunjukkan basa. Setelah
diencerkan untuk mendapat pH 5 dan ditambah KOH. Tidak terdapat perubahan pada filtrat
tersebut sehingga dapat disimpilkan bahwa Curcuma aeruginosa tidak mengandung senyawa
antrakinon.
Uji Tanin
Pada uji tanin prosedur yang harus dilakukan adalah 500mg serbuk tanaman
dipanaskan dengan 10ml air selama 30 menit diatas tangas air. Filtrat yang tersaring
ditambah dengan larutan Natrium klorida, bila terjadi suspensi atau endapan disaring melalui
kertas saring, kemudian filtrat ditambah larutan gelatin. Jika terbentuk endapan menunjukkan
adanya tanin. Pada pengjian tanin pada simplisia didapat hasil bahwa setelah dipanaskan 30
menit campuran tidak memisah. Setelah ditambah NaCl tidak ada endapan begitu juga
dengan penambahan larutan gelatin yang juga tidak didapatkan adanya endapan. Dari
pengamatan tersebut dapat diketahui bahwa curcuma aeruginosa tidak terdpat senyawa tanin.
Uji saponin
Pada uji saponin ini dilakukan dengan cara memenambahkan air suling pada tabung reaksi
yang berisi serbuk tumbuhan 100mg, kemudian ditutup lalu dikocok kuat- kuat selama 30
detik. Lalu, dibiarkan tabung dalam posisi tegak selama 30 menit. Apabila terdapat buih
maka menunjukkan adanya andungan saponin. Saat dilakukan pengujian saponin pada serbuk
simplisia Curcuma aeruginosa didapatkan hasil bahwa terdapat buih setelah dilakukan
pengocokan selama 30 detik dan didiamkan selama 30 menit. Hal ini menunjukkan bahwa
sampel Curcuma aeruginosa (+) mengandung saponin.
Uji polifenol
Pada uji polifenol dapat diidentifikasi bahwa senyawa polifenol merupakan kelompok
zat kimia yang ditemukan pada tumbuhan. Zat ini memiliki tanda khas yakni memiliki
banyak gugus fenol dalam molekulnya. Pada uji yang pertama yakni uji polifenol. Uji
polifenol dilakukan pada sample serbuk simplisia temu ireng. Untuk menguji keberadaan
suatu polifenol maka terlebih dahulu sampel simplisia Curcuma aeruginosa dihaluskan. Hal
ini bertujuan untuk mnghancurkan dinding sel yang sifatnya kaku sehingga senyawa target
(metabolic sekunder) yang berada dalam vakuola mudah diambil. Kemudian sample
diekstraksi dengan aquadest dengan bantuan pemanasan untuk melarutkan polifenol,
kemudian disaring. Tabung reaksi yang berisi filtrat tadi ditambahkan larutan FeCl3
sebanyak 3 tetes. Dimana jika sampel tersebut mengandung senyawa polifenolat maka akan
menghasilkan warna hijau- biru pada larutan filtrat. Untuk sampel serbuk simplisia, setelah
dilakukan penambahan larutan FeCl3 tidak ditemukan terjadinya perubahan warna dari hijau-
biru, hal itu menunjukkan bahwa sampel Curcuma aeruginosa tidak mengandung senyawa
polifenol.
VII. KESIMPULAN:
1. Pengujian kandungan kimia disebut juga skrining fotokimia yang bertujuan untuk
mengetahui kandungan metabolit sekunder/ senyawa identitas dari simplisia yang di
uji
2. Kandungan senyawa metabolit sekunder dari simplisia Curcuma aerugenosa adalah
saponin dan kromofor
3. Pengujian saponin ditandai positif dengan terbentuknya buih/ sarang lebah setelah
dilakukan pengocokan
4. Pengujian senyawa yang mengandung kromofor pada uji pendahuluan ditandai positif
dengan adanya perubahan warna kuning sampai merah pada penambahan 3 tetes
KOH
5. Pengujian pada praktikum kali ini bersifat kualitatif karena tidak disertai dengan
identifikasi prosentase kadar dari masing- masing senyawa identifikasi.
VIII. DAFTAR PUSTAKA:
Anonim. 2000. Materi Materia Medika Indonesia. Jakarta: Depkes RI
Sudarsono,dkk. 2006. Tanaman Obat I. Yogyakarta: UGM press
Tim Penyusun. 2012. Petunjuk praktikum Farmakognosi. Surakarta: FMIPA UNS
ACARA II
PENETAPAN KADAR SARI YANG LARUT
DALAM AIR DAN ETANOL
PENETAPAN KADAR SARI YANG LARUT DALAM AIR
DAN
SARI YANG LARUT DALAM ETANOL
I. TUJUAN:
1. Dapat menetukan kadar sari dari serbuk simplisia Curcuma aeruginosa yang
larut dalam air
2. Dapat menentukan kadar sari dari serbuk simplisia Curcuma aeruginosa
yang larut dalam etanol
II. DASAR TEORI:
Penetapan kadar sari yang larut dalam air
Sampel serbuk sebanyak 5 g dimaserasi selama 24 jam dengan 100 mL kloroform,
ekstraksi dilakukan dalam labu bersumbat, berkali-kali dikocok selama 6 jam
pertama dan kemudian dibiarkan selama 18 jam. Sebanyak 20 mL filtrat disaring dan
diuapkan sampai kering dalam cawan porselen, hasil penguapan dipanaskan pada
suhu 105oC sampai bobot tetap. Kadar dalam persen sari larut dalam air, dihitung
terhadap bahan yang telah dikeringkan di udara.
Penetapan kadar sari yang larut dalam etanol
Sampel serbuk sebanyak 5 g dimaserasi selama 24 jam dengan 100 mL etanol 95%,
ekstraksi dilakukan dalam labu bersumbat, berkali-kali dikocok selama 6 jam
pertama dan kemudian dibiarkan selama 18 jam. Filtrat disaring lalu diambil
sebanyak 20 mL filtrat dan diuapkan sampai kering dalam cawan porselen, hasil
penguapan dipanaskan pada suhu 105oC sampai bobot tetap. Kadar sari larut dalam
etanol 95% dihitung terhadap bahan yang telah dikeringkan di udara.
III. ALAT & BAHAN:
ALAT:
1) Erlenmeyer bertutup
2) Corong
3) Cawan porselen 75 ml
4) Oven
BAHAN:
1) Serbuk tanaman
2) Kloroform
3) Etanol 95%
4) Kertas saring
IV. CARA KERJA:
1. Penetapan Kadar Sari yang Larut Dalam Air
Serbuk simplisia 4/18 5 gram
Erlenmeyer bertutup
saring
Ditambahkan 100 ml kloroform
dimasukkan
Dimaserasi 24 jam ( 6 jam pertama
dikocok, 18 jam didiamkan
Uapkan 20 ml filtrat ad kering
2. Penetapan kadar sari larut dalam etanol
Cawan porselen
Sisa dipanaskan sampai bobot
tetap
Dihitung kadar dalam persen sari
yang larut dalam air terhadap bahan
yang telah dikeringkan di udara
5 gram serbuk simplisia
4/18
erlenmeyer
Ditambah 100 ml etanol (95%)
20 ml filtrat di uapkan sampai
kering
Di maserasi 24 jam (6 jam
dikocok, 18 jam dibiarkan)
Saring dengan kertas saring
Cawan porselin
Dimasukkan
V. HASIL
Jenis uji Bobot
cawan
(gram)
Bobot awal
serbuk
(gram)
Bobot cawan
+serbuk
(gram)
Penguapan Bobot
akhir
(gram)
I
(gram)
II
(gram)
III
(gram)
Kadar
sari larut
air
66,86 28,4 95,3 67 66,9 Kadar
sari
larut
air
66,86
Kadar
sari larut
etanol
72,69 15,91 88,6 72,9 72,9 Kadar
sari
larut
etanol
72,69
Perhitungan kadar :
Oven 105° C
Sisa di panaskan hingga bobot
tetap
Dihitung kadar dalam persen sari yang
larut dalam etanol, dihitung terhadap
bahan yang dikeringkan di udara
1. Penetapan kadar sari yang larut dalam air
Kadar sari yang larut dalam air (tanpa cawan) ¿bobot awal−bobot akhir tetap
bobot awal x100%
¿28,4−0,14
2 8,4 x 100%
¿99,51 %
Kadar sari yang larut dalam air (dengan cawan) ¿bobot awal−bobot akhir tetap
bobot awal
x100%
¿95,3−67
95,3 x 100%
¿29,7 %
2. Penetapan kadar sari yang larut dalam etanol
Kadar sari yang larut dalam etanol (tanpa cawan):
¿bobot awal−bobot akhir tetap
bobot awal x100%
¿15,91−0,21
15,91 x 100%
¿98,68 %
Kadar sari yang larut dalam etanol(dengan cawan):
¿ bobot awal−bobot akhir tetapbobot awal
x100%
¿ 88,6−72,988,6
x 100%
¿17,72 %
VI. PEMBAHASAN
Pada acara II ini bertujuan untuk menetapkan kadar sari yang larut dalam air dan sari
yang larut dalam etanol.
Penetapan kadar sari yang larut dalam air dilakukan untuk mengetahui kandungan
terendah zat yang larut dalam air. Penetapan kadar sari yang larut dalam air dilakukan
dengan mengeringkan 5 gram serbuk Curcuma aeruginosa diudara lalu dimaserasi dengan
100 ml kloroform selama 24 jam. Dipilih larutan kloroform karena kloroform memiliki
beberapa kesamaan sifat dengan air dalam mengekstraksi zat. Sari yang larut dalam air
kloroform adalah bersifat polar, sehingga sari yang larut dalam kloroform P bersifat semi
polar. Karena serbuk dilarutkan dalam kloroform, maka proses maserasi harus ditempatkan
pada tabung erlenmeyer bertutup, agar kloroform tidak menguap. Setelah dimasukkan dalam
tabung, erlenmeyer ditutup rapat dan digoyang-goyangkan secara konstan. Proses ini
dilakukan untuk meratakan konsentrasi larutan diluar butir serbuk simplisia, sehingga dengan
penggoyangan tersebut tetap terjaga adanya derajat perbedaan konsentrasi yang sekecil-
kecilnya antara larutan didalam sel dengan larutan di luar sel.
Setelah dimaserasi selama 24 jam, larutan disaring dengan kertas saring atau kapas
menggunakan corong. Penyaringan harus dilakukan sampai semua pelarut tersaring hingga
didapat filtrat yang dibutuhkan. Kemudian dari hasil filtrasi diambil 20 ml untuk diuapkan
dalam cawan dangkal berdasar rata yang sebelumnya telah ditara. Selanjutnya sisa
dipanaskan pada suhu 105K hingga bobot tetap. Lalu kadar sari larut dalam air dihitung
terhadap bahan yang telah dikeringkan di udara.
Maserasi dilakukan selama 24 jam agar semua zat aktif yang terdapat pada penyari
dapat keluar yang dapat diketahui dari kejenuhan larutan dengan zat aktif tersebut.
Penetapan kedua adalah penetapan kadar sari yang larut dalam etanol. Penetapan
tersebut dilakukan untuk mengetahui kandungan terendah zat yang larut dalam etanol tetapi
mungkin tidak larut dalam air. Penetapan ini tidak jauh berbeda prosedurnya dengan
penetapan kadar sari dalam air, yaitu 5 gram serbuk Curcuma aeruginosa dilarutkan atau
dimaserasi dengan 100 ml etanol selama 24 jam. Digunakan etanol karena zat aktif yang
akan diambil adalah semuanya baik polar maupun non polar. Selain itu, etanol
dipertimbangkan sebagai penyari karena lebih selektif, kapang dan kuman sulit tumbuh
dalam etanol diatas 20%, tidak beracun, netral dan absorbsinya baik. Etanol dapat bercampur
dengan air di segala perbandingan dan energi yang digunakan untuk pemekatan lebih sedikit.
Karena serbuk dilarutkan dalam etanol, maka proses maserasi harus ditempatkan pada
tabung erlenmeyer bertutup, agar etanol tidak menguap. Setelah dimasukkan dalam tabung,
erlenmeyer ditutup rapat dan digoyang-goyangkan secara konstan. Proses ini dilakukan untuk
meratakan konsentrasi larutan diluar butir serbuk simplisia, sehingga dengan penggoyangan
tersebut tetap terjaga adanya derajat perbedaan konsentrasi yang sekecil-kecilnya antara
larutan didalam sel dengan larutan di luar sel.
Setelah dimaserasi selama 24 jam, larutan disaring dengan kertas saring atau kapas
menggunakan corong. Penyaringan harus dilakukan sampai semua pelarut tersaring hingga
didapat filtrat yang dibutuhkan. Kemudian dari hasil filtrasi diambil 20 ml untuk diuapkan
dalam cawan dangkal berdasar rata yang sebelumnya telah ditara. Selanjutnya sisa
dipanaskan pada suhu 105K hingga bobot tetap. Lalu kadar sari larut dalam etanol dihitung
terhadap bahan yang telah dikeringkan di udara.
Maserasi dilakukan selama 24 jam agar semua zat aktif yang terdapat pada penyari
dapat keluar yang dapat diketahui dari kejenuhan larutan dengan zat aktif tersebut.
VII. KESIMPULAN:
1. Persentase kadar sari yang larut dalam air adalah 98,68%
2. Persentase kadar sari yang larut dalam etanol adalah 17,71%
VIII. DAFTAR PUSTAKA
Anonim. Materia Medika Indonesia Jilid VI. 1995. Jakarta: Depkes RI
Tim Penyusun. 2012. Petunjuk Praktikum Farmakognosi. FMIPA: Surakarta
ACARA III
UJI ALKALOID & UJI FLAVONOID
UJI ALKALOID & UJI FLAVONOID
I. TUJUAN:
1. Dapat melakukan identifikasi kandungan alkaloid
2. Dapat melakukan identifikasi kandungan flavonoid
II. DASAR TEORI:
Alkaloid
Alkaloid adalah sebuah golongan senyawa basa bernitrogen yang kebanyakan
heterosiklik dan terdapat di tetumbuhan (tetapi ini tidak mengecualikan senyawa yang
berasal dari hewan). Asam amino, peptida, protein, nukleotid, asam nukleik, gula amino
dan antibiotik biasanya tidak digolongkan sebagai alkaloid. Dan dengan prinsip yang
sama, senyawa netral yang secara biogenetik berhubungan dengan alkaloid termasuk
digolongan ini. Alkaloid dihasilkan oleh banyak organisme, mulai dari bakteria, fungi
(jamur), tumbuhan, dan hewan. Ekstraksi secara kasar biasanya dengan mudah dapat
dilakukan melalui teknik ekstraksi asam- basa. Rasa pahit atau getir yang dirasakan lidah
dapat disebabkan oleh alkaloid. Istilah "alkaloid" (berarti "mirip alkali", karena dianggap
bersifat basa) pertama kali dipakai oleh Carl Friedrich Wilhelm Meissner (1819),
seorang apoteker dari Halle (Jerman) untuk menyebut berbagai senyawa yang diperoleh
dari ekstraksi tumbuhan yang bersifat basa (pada waktu itu sudah dikenal, misalnya,
morfina, striknina, serta solanina). Hingga sekarang dikenal sekitar 10.000 senyawa
yang tergolong alkaloid dengan struktur sangat beragam, sehingga hingga sekarang tidak
ada batasan yang jelas untuknya. Alkaloid bersifat basa yang tergantung pada pasangan
electron pada nitrogen. Kebasaan alkaloid menyebabkan sentawa tersebut sangat mudah
mengalami dekomposisi terutama oleh panas dan sinar dengan adanya oksigen.
Dekomposisi alkaloid selama atau setelah isolasi dapat menimbulkan berbagai persoalan
jika penyimpanan dalam waktu lama. Pembentukan garam dengan senyawa organic atau
anorganik sering mencegah dekomposisi.
Alkaloid biasanya diklasifikasikan menurut kesamaan sumber asal molekulnya
(precursors),didasari dengan metabolisme pathway (metabolic pathway) yang dipakai
untuk membentuk molekul itu. Kalau biosintesis dari sebuah alkaloid tidak diketahui,
alkaloid digolongkan menurut nama senyawanya, termasuk nama senyawa yang tidak
mengandung nitrogen (karena struktur molekulnya terdapat dalam produk akhir. sebagai
contoh: alkaloid opium kadang disebut "phenanthrenes"), atau menurut nama tumbuhan
atau binatang dimana senyawa itu diisolasi. Jika setelah alkaloid itu dikaji,
penggolongan sebuah alkaloid dirubah menurut hasil pengkajian itu, biasanya
mengambil nama amine penting-secara-biologi yang mencolok dalam proses sintesisnya.
Alkaloid secara umum mengandung paling sedikit satu buah atom nitrogen yang bersifat
basa dan merupakan bagian dari cincin heterosiklik. Kebanyakan alkaloid berbentuk
padatan kristal dengan titik lebur tertentu atau mempunyai kisaran dekomposisi.
Alkaloid dapat juga berbentuk amorf atau cairan. Dewasa ini telah ribuan senyawa
alkaloid yang ditemukan dan dengan berbagai variasi struktur yang unik, mulai dari yang
paling sederhana sampai yang paling sulit.
Flavonoid
Flavonoid adalah senyawa yang terdiri dari dari 15 atom karbon yang umumnya tersebar
di dunia tumbuhan. Lebih dari 2000 flavonoid yang berasal dari tumbuhan telah
diidentifikasi, namun ada tiga kelompok yang umum dipelajari, yaitu antosianin,
flavonol, dan flavon. Antosianin (dari bahasa Yunani anthos , bunga dan kyanos, biru-
tua) adalah pigmen berwarna yang umumnya terdapat di bunga berwarna merah, ungu,
dan biru . Pigmen ini juga terdapat di berbagai bagian tumbuhan lain misalnya, buah
tertentu, batang, daun dan bahkan akar. Flavnoid sering terdapat di sel epidermis.
Sebagian besar flavonoid terhimpn di vakuola sel tumbuhan walaupun tempat
sintesisnya ada di luar vakuola.
Fungsi Antosianin dan flavonoid lainnya menarik perhatian banyak ahli genetika karena
ada kemungkinan untuk menghubungkan berbagai perbedaan morfologi di antara spesies
yang berkerabat dekat dalam satu genus misalnya dengan jenis flavonoid yang
dikandungnya. Flavonoid yang terdapat di spesies yang berkerabat dalam satu genus
memberikan informasi bagi ahli taksonomi untuk megelompokkan dan menentukan garis
evolusi tumbuhan itu.
III. ALAT & BAHAN:
ALAT:
a) Tabung reaksi
b) Corong
c) Pipet
BAHAN:
a) Serbuk simplisia
b) ammonia 25%
c) kloroform
d) pereaksi dragendroff
e) pereaksi meyer
f) Natrium karbonat
g) Asam asetat
h) Asam klorida 1%
i) Metanol
j) Eter
k) Asam klorida pekat
IV. CARA KERJA
Uji Alkaloid
2 gram serbuk simplisia 10 ml HCl 1%
V. HASIL:
N Uji identifikasi +/- Keterangan
Dipanaskan 20 menit
dimasukkan
Dihasilkan
Tabung ATabung B
Disaring dan dimasukkan
Tabung A2Tabung A1
Dipisahkan
Ditambah pereaksi
dragendorff
Diamati
Ditambah Na2CO3
Diamati sampai pH 8-9
Ditambahkan
O
1 Uji flavonoid - Tidak ditemukan lapisan methanol
pada saat pengocokan campuran.
2 Uji alkaloid - Tidak adanya endapan pada filtrate
setelah ditetesi reagen dragendroff
maupun reagen mayer.
VI. PEMBAHASAN:
Pada praktikum kali ini dilakukan uji flavonoid dan uji alkaloid pada sampel yang
digunakan yaitu Curcumae aeruginosae Rhizoma atau lebih dikenal temu hitam. Yang
pertama uji flavonoid dilakukan dengan cara serbuk simplisia yang sudah diayak sesuai
derajat halusnya ditimbang sebanyak 0,5gram dipanaskan dengan menggunakan 10ml
methanol selama 10 menit, setelah itu disaring dengan kertas saring. Encerkan filtrate
dengan 10 ml air, setelah dingin ditambahkan 5 ml eter,dikocok. Ambil lapisan methanol
kemudian diuapkan 40°C dan sisa dilarutkan dalam 5 ml etil asetat dan disaring.
Diuapkan hingga 1ml larutan kemudian ditambahkan 1 ml etanol 95%, 0,5gram
serbuk seng, dan 2ml asam klorida 2N, diamkan 1 menit. Tambahkan 10 ml HCl conc jika
dalam waktu 2-5 menit terjadi warna merah intensif menunjukan adanya flavonoid. Namun
dalam praktikum tidak ditemukan lapisan methanol yang memisah setelah dilakukan
penyaringan. Sehingga dapat dinyatakan temu hitam tidak mengandung senyawa flavonoid.
Pecobaan selanjutnya dilakukan iji alkaloid, pada percobaan ini dilakukan dengan
cara ditimbang 2 gram serbuk temu hitam dan dilembabkan dengan ammonia 25%, lalu
digerus. Dan ditambah 20ml kloroform digerus kuat. Dalam penggerusan jangan terlalu
halus dalam penyerbukan simplisia karena dapat memecah dinding selnya. Sehingga ada
kemungkinan proses uji alkaloid terhambat. Disaring kemudian filtrate diteteskan pada
kertas saring dan diberi dragendroff, bila warna menjadi jingga maka simplisia mengandung
alkaloid nmun pada percobaan setelah penambahan dragendroff warna tidak menjadi jingga.
Namun untuk lebih memastikan lagi serbuk simplisia 2 gram dipanaskan dengan
penambahan 10ml HCl 1% selama 30 menit. Kemudian disaring dan dibagi menjadi dua,
larutan A dibagi menjadi dua lagi larutan A1 ditetesi dragendroff dan larutan A2 ditetesi
reagen mayer. Bila terdapat endapan pada kedua larutan tersebut maka positif mengandung
alkaloid, namun dalam praktek tidak ditemukan endapan sedikitpun maka sampel negative
alkaloid. Pada uji alkaloid ini digunakan pereaksi dragendroff dan mayer karena kedua
reagen ini paling baik untuk uji alkaloid.
VII. KESIMPULAN:
1) Tidak terdapat kandungan alkaloid pada sampel Curcuma aeruginosa
2) Tidak terdapat kandungan flavonoid pada sampel Curcuma aeruginosa
VIII. DAFTAR PUSTAKA:
http://Scribd.com diakses pada tanggal 30 maret 2012
Tim Penyusun.2012. Buku Petunjuk Praktikum Farmakognosi. Surakarta: FMIPA UNS
ACARA IV
PENETAPAN KADAR ABU, PENETAPAN
KADAR ABU TIDAK LARUT ASAM,
PENETAPAN KADAR ABU LARUT AIR,
INDEKS BIAS,BOBOT JENIS & KADAR
MINYAK ATSIRI
PENETAPAN KADAR ABU, PENETAPAN KADAR ABU TIDAK
LARUT ASAM, PENETAPAN KADAR ABU LARUT AIR,
INDEKS BIAS,BOBOT JENIS & KADAR MINYAK ATSIRI
I. TUJUAN:
1. Dapat menentukan kadar abu pada sampel simplisia Curcuma aeruginosa
2. Dapat menetukan kadar abu pada sampel simplisia Curcuma aeruginosa yang
tidak larut asam
3. Dapat menetukan kadar abu pada sampel simplisia Curcuma aeruginosa yang
larut air
4. Dapat menentukan bobot jenis pada sampel minyak atsiri
5. Dapat menentukan indeks bias pada minyak atsiri
6. Dapat menentukan kadar minyak atsiri
II. DASAR TEORI:
KADAR ABU
Abu adalah zat organik sisa hasil pembakaran suatu bahan organic. Kandungan abu dan
komposisinya tergantung pada macan bahan dan cara pengabuanya. Kadar abu ada
hubunganya dengan mineral suatu bahan. Mineral yang terdapat dalam suatu bahan terdapat
dalam suatu bahan dapat merupakan dua macam garam yaitu garam organik dan garam
anorganik. Yang termasuk dalam garam organik misalnya garam-garam asam mallat, oksalat,
asetat, pektat. Sedngkan garam anorganik antara lain dalam bentuk garam fosfat, karbonat,
klorida, sulfat, nitrat. Selain kedua garam tersebut, kadang-kadang mineral berbentuk sebagai
senyawaan komplek yang bersifat organis. Apabila akan ditentukan jumlah mineralnya
dalambentuk aslinya sangatlah sulit,oleh karena itu biasanya dilakukan dengan menentukan
sisa-sisa pembakaran garam mineral tersebut, yang dikenal dengan pengabuan.
(Sudarmadji.2003).
Penentuan kadar abu total dapat digunakan untuk berbagai tujuan sebagai berikut:
1. Untuk menentukan baik tidaknya suatu proses penggolahan
2. Untuk mengetahui jenis bahan yang digunakan
3. Untuk memperkirakann kandungan buah yang digunakan untuk membuat jelly.
Kandungan abu juga dapat dipakai untuk menentukan atau membedakan fruit uinegar
(asli) atau sintesis
4. Sebagai parameter nilai bahan pada makanan. Adanya kandungan abu yang tidak
larut dalam asam yang cukup tinggi menunjukkan adanya pasir atau kotoran lain.
(Irawati.2008 ).
Penentuan kadar abu adalah mengoksidasikan senyawa organik pada suhu yang
tinggi,yaitu sekitar 500-600°C dan melakukan penimbangan zat yang tinggal setelah proses
pembakaran tersebut. Lama pengabuan tiap bahan berbeda–beda dan berkisar antara 2-8 jam.
Pengabuan dilakukan pada alat pengabuan yaitu tanur yang dapat diatur suhunya. Pengabuan
diangap selesai apa bila diperoleh sisa pembakaran yang umumnya bewarna putih abu-abu
dan beratnya konstan dengan selang waktu 30 menit. Penimbangan terhadap bahan dilakukan
dalam keadan dingin,untuk itu krus yang berisi abu diambil dari dalam tanur harus lebih
dahulu dimasukan ke dalam oven bersuhu 105°C agar suhunya turun menyesuaikan degan
suhu didalam oven,barulah dimasukkan kedalam desikator sampai dingin,barulah abunya
dapat ditimbang hingga hasil timbangannya konstan.
BOBOT JENIS
Bobot jenis adalah perbandingan bobot zat di udara pada suhu 25º C terhadap bobot
air dengan volume dan suhu yang sama. Bobot jenis suatu zat adalah hasil yang diperoleh
dengan membagi bobot zat dengan bobot air dalam piknometer, kecuali dinyatakan lain
dalam monografi, keduanya ditetapkan pada suhu 25º C [FI IV hal 1030].
INDEKS BIAS
Refraktometer yaitu alat yang bekerja berdasarkan pembiasan sinar, dipakai untuk
menentukan indeks bias cairan (Godman,1991:452).
Indeks bias adalah ukuran kemampuan suatu medium untuk membiaskan cahaya. Indeks bias
suatu medium sama dengan kecepatan rambat cahaya di ruang hampa dibagi dengan kecepatan
rambat cahaya di dalam medium tersebut.
KADAR MINYAK ATSIRI
Minyak atsiri juga dikenal dengan nama minyak mudah menguap atau minyak
terbang. Pengertian atau defenisi minyak atsiri yang ditulis dalam Encyclopedia of Chemical
Technology menyebutkan bahwa minyak atsiri merupakan senyawa, yang pada umumnya
berwujud cairan, yang diperoleh dari bagian tanaman, akar, kulit, batang, daun, buah, biji
maupun dari bunga dengan cara penyulingan dengan uap (Sastrohamidjojo, 2004).
Minyak atsiri adalah zat yang berbau yang terkandung dalam tanaman. Minyak ini
disebut juga minyak menguap, minyak eteris, atau minyak essensial karena pada suhu biasa
(suhu kamar) mudah menguap di udara terbuka. Istilah essensial dipakai karena minyak
atsiri mewakili bau dari tanaman asalnya. Dalam keadaan segar dan murni tanpa
pencemaran, minyak atsiri umumnya tidak berwarna. Namun, pada penyimpanan lama
minyak atsiri dapat teroksidasi dan membentuk resin serta warnanya berubah menjadi lebih
tua (gelap). Untuk mencegah supaya tidak berubah warna, minyak atsiri harus terlindung dari
pengaruh cahaya, misalnya disimpan dalam bejana gelas yang berwarna gelap. Bejana
tersebut juga diisi sepenuh mungkin sehingga tidak memungkinkan berhubungan langsung
dengan oksigen udara, ditutup rapat serta disimpan ditempat yang kering dan sejuk
(Gunawan dan Mulyani, 2004).
III. ALAT & BAHAN:
ALAT:
a) Krus silikat
b) Air panas
c) Corong
d) Alat destilat
e) Refraktometer
f) Piknometer
BAHAN:
a) Serbuk tanaman
b) Kertas saring abu
c) Asam klorida
d) Aquades
IV. CARA KERJA:
1. Penetapan Kadar Abu
Digerus, ditimbang,
dimasukkan
2 gram serbuk simpisisa
Dipijarkan
Kertas saring bebas abu
Jika arang tidak dapat dihilangkan,
ditambah air panas
Filtrat
Didinginkan,ditimbang
Oven
Ditara dan diratakanKrus platina atau krus
silikat
Sisa+kertas saring
Dipijarkan
Krus yang sama di oven
Bobot tetap
Kadar abu dihitung terhadap
bahan yang dikeringkan di udara
2. Penetapan Kadar Abu Yang Tidak Larut Dalam Asam
Abu
Dicuci dengan air
panas, dipijarkan
Kertas saring bebas abu
Dididihkan 5 menit,
lalu disaring
Tabung reaksi
Dimasukkan
25 ml HCl encer
Bobot tetap
Kadar abu yang tidak larut
dalam asam dihitung
terhadap bahan yang telah
dikeringkan di udara
Dimasukkan
Penetapan Kadar Minyak Atsiri
Simplisia
Dipanaskan dan Disuling
Dibiarkan 15 menit
Cairan penyuling
Labu
Kadar minyak atsiri
dihitung
Volume minyak atsiri
pada buret
Dimasukkan
Uji Bobot Jenis
V. HASIL & PEMBAHASAN
Abu adalah zat anorganik dari sisa hasil pembakaran suatu bahan
organik.Penentuan kadar abu ada hubungannya dengan mineral suatu bahan. Mineral
yang terdapat dalam bahan pangan terdiri dari 2 jenis garam, yaitu garam organik
Ekstrak cair suhu ± 20° C
Piknometer bersih kering dan
dikalibrasi
Dimasukkan
Bobot piknometer kosong
dikurangkan dari bobot piknometer
yang telah diisi
Suhu diatur hingga 25° C
Kelebihan ekstrak cair
Bobot jenis diperoleh dengan membagi bobot ekstrak
dengan bobot air dalam piknometer pada suhu 25° C
Dibuang, sisanya ditimbang
misalnya asetat, pektat, mallat dan garam anorganik misalnya karbonat, fosfat, sulfat,
dan nitrat. Proses untuk menentukan jumlah mineral sisa pembakaran disebut
pengabuan. Kandungan dan komposisi abu atau mineral pada bahan tergantung dari
jenis bahan dan cara pengabuannya.
Pada praktikum kali ini, proses pengabuan dilakukan hingga suhu mencapai
400°C . Sampel yang digunakan adalah serbuk Curcuma aeruginosa atau biasa kita
sebut Temu Ireng. Serbuk Curcuma aeruginosa kita timbang sebanyak 2 gram, lalu
dimasukkan dalam krus platina atau krus silikat yang sebelumnya sudah kita tara
sebesar 19,2 gram. Lalu kita masukkan dalam oven hingga suhu 400°C. Kira-kira
setiap 45 menit kita lihat apakah serbuk sudah menjadi abu ditandai dengan warna
putih keabuan dan tidak ada serbuk hitam yang menggumpal. Jika masih tersdapat
gumpalan, krus platina kembali kita pijarkan hongga diperoleh bobot tetap dalam
keadaan abu. Setelah menjadi abu semua, ditimbang dan dapat dihitung besar kadar
abunya dengan menggunakan rumus. Rumus Perhitungan Kadar Abu :
% Kadar abu = w ak h ir−w cawan
w sampel x 100%
Sehingga pada penentuan kadar abu Curcuma aeruginosa diperoleh :
Berat awal sampel : 2 gram
Berat krus platina : 19,20 gram
Berat krus platina dan abu bobot tetap : 19,27 gram
Sehingga diperoleh bobot tetap abu Curcuma aeruginosa sebesar 0,07 gram atau 70
mg.
Dari hasil data tersebut kita dapat menghitung besar kadar abu Curcuma
aeruginosa menggunakan rumus diatas sehingga diperoleh kadar abu sebesar 3,5 % .
Berat abu yang didapat pada sampel Curcuma aeruginosa yakni seberat 0,07
gram atau 70 mg, jauh sekali penurunan berat yang terjadi karena berat sampel awal
yaitu 2 gram, berarti selama proses pemanasan awal sampai pada proses pengabuan
telah terjadi penguapan air dan zat-zat yang terdapat pada sampel, sehingga yang
tersisa hanyalah sisa dari hasil pembakaran yang sempurna yakni abu.
Pada sampel Curcuma aeruginosa didapat kadar abu yaitu sebesar 3,5 % yang
dihitung berdasarkan berat kering. Presentase abu yang diperoleh besarnya relatif
kecil sehingga besarnya kadar abu yang didapat dalam praktikum kali ini, mungkin
disebabkan oleh suhu ruang ataupun adanya kotoran yang terdapat dalam sampel.
Apalagi waktu pemanasan atau pemijaran kurang sempurna tidak bisa mencapai suhu
600°C karena faktor alat.
A. Penetapan Kadar Abu Yang Tidak Larut Dalam Asam
Tujuan Praktikum pada penetapan kadar abu yang tidak larut dalam asam
adalah untuk mengetahui besarnya kadar abu yang tidak larut dalam asam.
Pada penetapan kadar abu yang tidak larut dalam asam kita menggunakan abu
yang berasal dari abu yang diperoleh dari penetapan kadar abu ( dibagi 2 untuk tidak
larut dalam asam dan larut dalam air). Sebanyak 70 mg abu Curcuma aeruginosa
dididihkan dengan Asam Klorida encer sebanyak 10 ml selama 5 menit, pada proses
ini kita menggunakan oven. Kemudian kita ambil abu yang tidak larut dalam asam
dengan cara disaring menggunakan kertas saring. Lalu bersama dengan kertas saring
yang sebelumnya sudah kita tara sebesar , kita pijarkan hingga diperoleh bobot tetap.
Perhitungan kadar abu tidak larut dalam asam dapat kita hitung dengan rumus
sebagai berikut :
Kadar abu tidak larut asam = berat sisa abu yang tidak larut dalam asam
berat awal abu x 100%
Dalam percobaan ini kita dapatkan data sebagai berikut :
Berat abu awal : 0,07 gram
Berat kertas saring : 0,78 gram
Berat kertas saring dan abu bobot tetap tidak larut dalam asam : 0,85 gram
Dari data tersebut dapat kita peroleh bahwa berat abu yang tidak larut dalam
asam yaitu 0,85 – 0,78 = 0,06 gram.
Sehingga dari data tersebut dapat kita hitung kadar abu yang tidak larut dalam
asam menggunakan rumus diatas dan diperoleh kadar sebesar 85,71 % .
Kesimpulan yang dapat kita ambil bahwa abu Curcuma aeruginosa tidak
dapat melarut sempurna dalam pelarut dengan suasana asam.
B. Penetapan Kadar Abu Yang Larut Dalam Air
Tujuan dari praktikum ini adalah untuk mengetahui kadar abu yang larut
dalam air, digunakan pelarut aquadest.
Penetapan kadar abu ini dilakukan dengan bahan abu yang kita peroleh dari
penetapan kadar abu. Sebanyak 0,07 gram abu Curcuma aeruginosa kita larutkan
dalam 15 ml aquadest dalam cawan lalu dididihkan selama 5 menit di dalam oven.
Lalu kita saring dengan kertas saring yang sebelumnya telah kita timbang. Jika dalam
cawan masih ada sisa abu yang tidak larut kita tuangkan air panas hingga larut semua
baru kita saring. Lalu sisa abu dalam kertas saring kita pijarkan selama 15 menit
dengan suhu tidak lebih dari 450° C hingga diperoleh bobot tetap dengan ditimbang.
Lalu dapat kita hitung kadar abu yang larut dalam air menggunakan rumus sebagai
berikut :
Kadar abu larut air = berat abu awal−berat abu ak h ir
berat abu awal x 100%
Dan pada praktikum diperoleh data sebagai berikut :
Berat abu awal : 0,07 gram
Berat kertas saring : 0,46 gram
Berat kertas saring dan abu bobot tetap : 0,47 gram
Sehingga dari data tersebut berat akhir abu adalah 0,47 – 0,46 = 0,01 gram.
Maka dari data-data tersebut dapat kita hitung kadar abu yang larut dalam air
menggunakan rumus diatas dan diperoleh kadar sebesar 85,71 %. Dapat dilihat kalau
abu yang larut dalam air sangat banyak, hampir semua abu larut dalam pelarut air.
Maka dapat ditarik kesimpulan kalau Curcuma aeruginosa sangat baik dilarutkan
dalam air.
C. BOBOT JENIS
Berat piknometer 9.7gram
Dikalibrasi dengan aquadest 16,11gram
Piknometer + minyak atsiri 15,80gram
Bobot jenis 15,80 – 9,70 = 6,10gram÷ 6.4ml
=0,95 g/ml
Bobot jenis adalah suatu perbandingan bobot zat terhadap air volume sama
yang ditimbang diudara pada suhu yang sama. Penetapan bobot jenis dilakukan dengan cara
gunakan piknometer bersih , kering dan dikalibrasi dengan menetapkan bobot piknometer
dan bobot air yang baru dididihkan pada suhu 25°C atur hingga suhu ekstrak cair lebih
kurang 20°C, masukkan kedalam piknometer. Dalam memasukan minyak atsiri disarankan
hingga penuh agar saat ditutup tidak ada ruang atau gelembung dalam piknometer. Karena
gelembung ini akan mempengaruhi berat piknometer. Atur suhu piknometer yang telah diisi
hingga suhu 25°C , buang kelebihan ekstrak cair dan ditimbang. Kurangkan bobot
piknometer kosong dari bobot piknometer yang tela diisi . bobot jenis ekstrak cair adalah
yang diperoleh dengan membagi bobot ekstrak dengan bobot air, dalam piknometer pada
suhu 25°C.
D. INDEKS BIAS
indeks bias bunga mawar : Indeks bias bunga melati:
1,348 cm 1,348- 1,3495 1,342 cm 1,342- 1,3465
9,5 mm 6,5 mm
Metode standard dalam pengukuran indeks bias yang paling sederhana yaitu dengan
mengukur sudut pembelokan cahaya yang melewati wadah berbentuk prisma berisi larutan
uji. Meskipun metode ini akurat, namun membutuhkan ruangan yang cukup besar. Kemudian
dikembangkan metode lain. Makalah ini membahas penelitian tentang pengukuran indeks
bias menggunakan metode interferometri. Umumnya metode interferometri bekerja dengan
mengukur jari-jari cincin interferensinya, namun untuk bisa menghasilkan bayangan cincin-
cincin interferensi membutuhkan komponen optik dengan kualitas sangat baik dan sangat
mahal. Pada Tugas Akhir ini dicoba untuk melihat adanya kemungkinan indeks bias dapat
diukur hanya dengan mengukur intensitas cahaya hasil interferensi meskipun interferometer
yang dibuat tidak mampu menghasilkan cincin interferensi. Metode ini bekerja dengan cara
sinar laser dipisahkan menjadi dua berkas. Berkas uji dilewatkan ke sampel yang hendak
diukur, sedangkan berkas referensi tidak melewati apa-apa. Kedua sinar tersebut kemudian
digabungkan kembali. Hasil interferensi cahaya yang diukur berupa pelemahan amplitudo
intensitas) cahaya. Data yang didapat dianalisa secara grafis untuk dihasilkan persamaan
kurva.
VI. KESIMPULAN:
1. Pengukuran kadar abu bertujuan untuk mengukur kemurnian dan kebersihan
simplisia. Makin tinggi kadar abu makin rendah mutu simplisia
2. Kadar abu tidak larut asam diperoleh hasil persentase sebesar 85,71 %
3. Kadar abu larut air diperoleh hasil persentase sebesar 85,71 %.
4. Bobot jenis yang dihasilkan adalah 0,95 g/ml
VII. DAFTAR PUSTAKA:
Anonim.2010.LAPORAN PENENTUAN KADAR ABU.http://scribd.com. Diakses
31 oktober 2010.
Anonim.1995.Farmakope Indonesia Edisi IV. Jakarta: Depkes RI
Irawati.2008.MODUL PENGUJIAN MUTU 1.Diploma IV PDPPTK
VEDCA.Cianjur.
Sudarmadji.dkk.2003.Prosedur Analisa Bahan Makanan Dan
Pertanian.Liberti.Yogyakarta.
uji indeks bias
Diteteskan
diamati
diatur
diamati
diperoleh
1 tetes minyak atsiriKaca prisma alat
refraktometer
Lensa pengamat
Fase gelap dan
terang pada tanda x
Skala yang
ditunjukkanIndeks bias