laporan fertilisasi

8/10/2019 laporan Fertilisasi

1/19

FERTILISASI DAN PERKEMBANGAN EMBRIONAL

IKAN NILEM (Osteochilus hasselti )

Oleh:

Nama : Nur Afiyati Fazrin

NIM : B1J013010Rombongan : VII

Kelompok : 2

Asisten : Iis Setiawati

LAPORAN PRAKTIKUM PERKEMBANGAN HEWAN

KEMENTERIAN PENDIDIKAN DAN KEBUDAYAAN

UNIVERSITAS JENDERAL SOEDIRMAN

FAKULTAS BIOLOGI

PURWOKERTO

2014


2/19

I. PENDAHULUAN

A. Latar Belakang

Fertilisasi merupakan proses yang dimulai dengan bertemunya sel

kelamin jantan dan sel kelamin betina. Penetrasi spermatozoa ke dalam telur

diakhiri dengan bergabungnya kedua pronuklei. Karena setelah terjadi

pembuahan, ovum akan menjadi lebih aktif untuk melakukan pembelahan

segmentasi dan berkembang, sedangkan bila tidak terbuahi ovum akan segera

mati (Soeminto, 2008).

Spermatozoa adalah sel gamet jantan yang merupakan sel yang sangat

terdiferensiasi, satu-satunya sel yang memiliki jumlah sitoplasma yang terperas,

nyaris habis. Fungsi spermatozoa ada dua yaitu mengantarkan satu set material

genetis jantan ke betina dan mengaktifkan program perkembangan. Sperma ikan

terdiri dari tiga komponen utama yaitu kepala, leher dan ekor. Kepalanya terutama

terdiri dari suatu nukleus padat yang dimahkotai dengan akrosom kecil berbentuk

bulan sabit. Akrosomnya mengandung sejumlah enzim hidrolitik dan dianggap

berperan dalam penembusan telur oleh spermatozoa (Djuhanda, 1982).

Telur adalah satu-satunya sel hewan yang memiliki sifat totipotensi.

Totipotensi yaitu memiliki potensi atau kemampuan berkembang menjadi individu

baru dalam satuan hari atau minggu. Sifat totipotensi itu dimiliki sel telur setelah

diaktivasi. Tidak ada sel lain dalam hewan tingkat tinggi yang memiliki

kemampuan seperti itu (Sistina, 2000).

Ikan Nilem (Osteochillus hasselti) dipilih sebagai preparat dalam

praktikum kali ini merupakan perwakilan dari classis Pisces. Alasannya, karena

ikan Nilem memiliki ukuran tubuh yang relatif kecil (berat per ekor induk yang

telah masak kelamin adalah 120 gram), dapat dipelihara di akuarium dan produk

telur yang dihasilkan oleh setiap induk betina yang masak kelamin cukup banyak

yaitu 20.000 butir. Ikan nilem hidup di air tawar dan banyak dibudidayakan

masyarakat sehingga mudah untuk mendapatkannya. Ikan Nilem dapat dipelihara

dengan baik pada daerah dengan ketinggian 150 1000 m dpl, daerah yang paling

baik pada ketinggian 1800 m dpl dengan suhu optimum 18 28 C. Pembelahan

segmentasi pada ikan nilem memerlukan waktu yang relatif tidak terlalu lama,


3/19

sehingga tidak menjadi kendala pada saat melakukan pengamatan

(Soeminto,2008).

B.

Tujuan

Tujuan dari praktikum praktikum fertilisasi dan perkembangan embrional

ikan nilem adalah dapat melakukan fertilisasi pada ikan, mengenali sel telur ikan

yang telah terfertilisasi, mengidentifikasi faktor-faktor yang mempengaruhi

fertilisasi dan mengetahui tahapan perkembangan embrio ikan nilem.


4/19

II. MATERI DAN METODE

A. Materi

Alat-alat yang digunakan dalam praktikum fertilisasi dan perkembangan

embrional pada ikan nilem adalah spuit injeksi, kain katun, akuarium yang

dilengkapi dengan sistem aerasi, mangkuk plastik, well plate, pipet transfer

berskala, cawan plastik, mikroskop cahaya, pencatat waktu, haemocytometer, dan

saringan.

Bahan yang diperlukan dalam praktikum fertilisasi dan perkembangan

embrional pada ikan nilem adalah ikan nilem (Osteochilus hasselti) jantan dan

betina matang gonad, sediaan hormon untuk induksi ovulasi dan spermiasi,

larutan NaCl fisiologis atau larutan Ringer dan air sumur atau air ledeng.

B. Metode

B.1 Induksi untuk mendapat gamet segar

1. Pilih ikan nilem yang telah matang gonad.

2.

Timbang ikan jantan dan betina untuk menentukan dosis hormon yang

diperlukan untuk induk induksi ovulasi dan spermiasi.

3. Siapkan hormon yang akan digunakan untuk induksi sesuai dengan

ketentuan

4. Suntikkan sediaan hormon yang telah disiapkan secara intra muskuler di

daerah punggung. Pastikan semua hormon masuk kedalam jaringan otot.

5.

Masukkan induk jantan dan betina yang telah diinduksikan ke dalam

akuarium yang dilengkapi aerasi.

6.

Setelah 5-6 jam, amati perilaku ikan. Apabila ikan sudah mulai melompat

ke permukaan, mengindikasikan bahwa ikan hampir memijah.

7. Angkat ikan dari akuarium dan urut bagian abdomen dari ikan. Apabila

milt dan sel telur telah keluar maka ovulasi dan spermiasi sudah berlangsung dan

ikan siap distripping.

B.2 Fertilisasi dengan berbagai rasio pengenceran spermatozoa ; sel telur.

1. Persiapkan semua peralatan yang akan digunakan.


5/19

2. Angkat ikan nilem jantan matang gonad, bersihkan bagian abdomen dan

sekitargenital poremenggunakan tissue.

3.

Urut dinding abdomen secara halus, kemudian setelah keluar miltnya

tampung dengan menggunakan spuit tanpa jarum.

4. Lakukan pengenceran milt dalam well plate. 1 bagian milt ditambah 9

bagian larutan NaCl fisiologis dan dihomogenkan. Sehingga didapatkan

pengenceran 10x, lakukan hal serupa dengan hasil pengenceran 100 x dan 1000 x.

5. Setelah itu lakukan stripping pada ikan betina, bagian abdomennya

dibersihkan dengan tissue.

6. Tampung hasilstrippingpada mangkuk kecil yang bersih.

7.

Ambil satu sendok kecil sel telur dan tambahkan 1 mL milt pengenceran

10x secara perlahan dilakukan agitasi selama 3 menit dan diberi tambahan air

hingga sel telur dan milttercampur rata.

8. Setelah pencampuran sel telur dan milt, secara perlahan media pembuahan

yang berisi sel telur dan spermatozoa dituangkan ke dalam saringan halus untuk

menghilangkan spermatozoa, kemudian dibilas dengan cara mencelupkan

saringan ke dalam air bersih sebanyak 3 kali.

9.

Sel telur yang telah di cuci dimasukkan ke dalam mangkok berisi air.

10. Sel telur diambil 10 buah dari masing-masing hasil pembuahan

menggunakan pipet transfer dan diletakkan di cavity slidedan diamati di bawah

mikroskop.

11. Proporsi sel telur yang dibuahi maupun yang tidak di buahi dihitung.

12. Mengulangi dengan mengambil 10 sel telur sesuai dengan waktu yang

ditentukan.

13.

Data diisi sesuai dengan yang diamati dimikroskop.B.3 Fertilisasi dengan berbagai waktu kontak spermatozoa dengan sel telur.

1. Persiapkan semua peralatan yang akan digunakan.

2. Angkat ikan nilem jantan matang gonad, bersihkan bagian abdomen dan

sekitargenital poremenggunakan tissue.

3. Urut dinding abdomen secara halus, kemudian setelah keluar miltnya

tampung dengan menggunakan spuit tanpa jarum.


6/19

4. Lakukan pengenceran milt dalam well plate. 1 bagian milt ditambah 9

bagian larutan NaCl fisiologis dan dihomogenkan. Sehingga didapatkan

pengenceran 10x.

5.

Setelah itu lakukan stripping pada ikan betina, bagian abdomennya

dibersihkan dengan tissue.

6.

Tampung hasilstrippingpada mangkuk kecil yang bersih.

7. Ambil satu sendok kecil sel telur dan tambahkan 1 mL milt pengenceran

10x secara perlahan dilakukan agitasi selama 1 menit dan diberi tambahan

air hingga sel telur dan milttercampur rata.

8. Setelah pencampuran sel telur dan milt, secara perlahan media pembuahan

yang berisi sel telur dan spermatozoa dituangkan ke dalam saringan halus

untuk menghilangkan spermatozoa, kemudian dibilas dengan cara

mencelupkan saringan ke dalam air bersih sebanyak 3 kali.

9. Sel telur yang telah di cuci dimasukkan ke dalam mangkok berisi air.

10.

Sel telur diambil 10 buah dari masing-masing hasil pembuahan

menggunakan pipet transfer dan diletakkan di cavity slidedan diamati di

bawah mikroskop.

11.

Proporsi sel telur yang dibuahi maupun yang tidak di buahi dihitung.

12. Mengulangi dengan mengambil 10 sel telur sesuai dengan waktu yang

ditentukan.

13. Data diisi sesuai dengan yang diamati dimikroskop.

14. Lakukan hal serupa dengan waktu agitasi 3 menit dan 5 menit.


7/19

III. HASIL DAN PEMBAHASAN

A. Hasil

Tabel 1. Persentase telur terbuahi pada jeda waktu yang berbeda

Jeda WaktuPersentase telur terbuahi (%)

Total (%) Rerata (%)Ulangan I Ulangan II

Kontrol 76,7 % - 76,7 % 76,7 %

1 menit 56,67 % 76,7 % 133,7 % 66,7 %

3 menit 40 % 80 % 120 % 60 %

5 menit 90 % 63,3 % 153,3 % 76,65 %

Tabel 2. Persentase telur tebuahi pada tingkat pengenceran milt

Tingkat

Pengeceran

milt

Persentase telur tebuahi (%)

Total (%) Rerata (%)Ulangan I Ulangan II

10 x 56,7 % 80 % 136,7 % 68,4 %

100 x 66,7 % 56,7 % 123,4 % 61,7 %

1000 x 73,3 % 63,3 % 136,6 % 68,3 %

Tabel 3. Persentase telur pada setiap tahap perkembangan selama waktu

pengamatan pada perlakuan jeda waktu

Perlakuan

Waktu

Pengamatan

Tahap

perkembangan

% telur pada setiap

tahap

perkembangan

Jumlah

(%)

Rerata

(%)Ulangan

I

Ulangan

II

Kontrol

20

Hylock 50 % 50 % 50 %

Belum

terfertilisasi50 % 50 % 50 %

35Hylock 40 % 40 % 40 %

2 sel 60 % 60 % 60 %


8/19

50

Hylock 20 % 20 % 20 %

2 sel 10 % 10 % 10 %

4 sel 20 % 20 % 20 %

8 sel 30 % 30 % 30 %

Rusak 20 % 20 % 20 %

PerlakuanWaktu

Pengamatan

Tahap

perkembangan

% telur pada setiap

tahap

perkembanganJumlah

(%)

Rerata

(%)Ulangan

I

Ulangan

II

Jeda

waktu 1

menit

20Hylock 40 % 30 % 70 % 35 %

Utuh 60 % 70 % 130 % 65 %

35

2 sel 60 % 90 % 150 % 75 %

Utuh 40 % - 40 % 20 %

Hylock - 10 % 10 % 5 %

50

Utuh 30 % - 30 % 15 %

Hylock 10 % 30 % 40 % 20 %

2 sel 30 % 20 % 50 % 25 %

4 sel 20 % 30 % 50 % 25 %

8 sel 10 % 20 % 30 % 15 %

Perlakuan WaktuPengamatan

Tahapperkembangan

% telur pada setiap

tahap

perkembangan Jumlah(%)

Rerata(%)

Ulangan

I

Ulangan

II

Jeda

waktu 3

menit

20

Hylock 40 % 50 % 90 % 45 %

Belum

terfertilisasi60 % 30 % 90 % 45 %

2 sel - 20 % 20 % 10 %


9/19

35

Hylock 10 % - 10 % 5 %

2 sel 30 % 70 % 100 % 50 %

4 sel 40 % - 40 % 20 %

Belum


Hylock 20 % 10 % 30 % 15 %

50

4 sel 10 % 30 % 40 % 20 %

8 sel 40 % 60 % 100 % 50 %

Belum

terfertilisasi30 % - 30 % 15 %

PerlakuanWaktu

Pengamatan

Tahap

perkembangan

% telur pada setiap

tahap

perkembanganJumlah

(%)

Rerata

(%)Ulangan

I

Ulangan

II

Jeda

waktu 5

menit

20

2 sel 40 % - 40 % 20 %

Hylock 30 % 20 % 50 % 25 %

Belum


35

Hylock 20 % 40 % 60 % 30 %

4 sel 60 % 20 % 80 % 40 %

2 sel 20 % 20 % 40 % 20 %

Belum

terfertilisasi- 20 % 20 % 10 %

50

16 sel 40 % - 40 % 20 %

8 sel 50 % 50 % 100 % 50 %

4 sel 10 % 20 % 30 % 15 %

Hylock - 20 % 20 % 10 %

Belum

terfertilisasi- 10 % 10 % 5 %


10/19

Tabel 4. Persentase telur pada setiap tahap perkembangan selama waktu

pengamatan pada perlakuan tingkat pengenceran.

PerlakuanWaktu

Pengamatan

Tahap

perkembangan

% telur pada setiap

tahap

perkembanganJumlah

(%)

Rerata

(%)Ulangan

I

Ulangan

II

Tingkat

pengenceran

10 x

20

Hylock - 20 % 20 % 10 %

Rusak 10 % - 10 % 5 %

Belum


2 sel - 40 % 40 % 20 %

35

4 sel 30 % - 30 % 15 %

2 sel 30 % 60 % 90 % 45 %

Hylock 20 % 20 % 40 % 20 %

Belum

berkembang20 % 20 % 40 % 20 %

50

8 sel 60 % 50 % 110 % 55 %

4 sel 20 % 50 % 70 % 35 %

Hylock 10 % - 10 % 5 %

Belum

berkembang10 % - 10 % 5 %

Perlakuan Waktu

Pengamatan

Tahap

perkembangan

% telur pada setiap

tahap

perkembangan Jumlah

(%)

Rerata

(%)Ulangan

I

Ulangan

II

Tingkat

pengenceran

100 x

20

Hylock 50 % 30 % 80 % 40 %

Belum


35 Hylock 40 % 30 % 70 % 35 %


11/19

2 sel 30 % 30 % 60 % 30 %

Belum

berkembang30 % 30 % 60 % 30 %

Rusak - 10 % 10 % 5 %

50

4 sel 30 % - 30 % 15 %

8 sel 40 % 30 % 70 % 35 %

Hylock 10 % 50 % 60 % 30 %

Belum


Rusak - 10 % 10 % 5 %

PerlakuanWaktu

Pengamatan

Tahap

perkembangan

% telur pada setiap

tahap

perkembanganJumlah

(%)

Rerata

(%)Ulangan

I

Ulangan

II

Tingkat

pengenceran

1000 x

20

Hylock 10 % 30 % 40 % 20 %

2 sel 50 % -

50 % 25 %

4 sel 10 % - 10 % 5 %

Belum


35

Belum


2 sel 30 % 60 % 90 % 45 %

4 sel 30 % - 30 % 15 %

8 sel 10 % - 10 5 5 %

50

Hylock 10 % - 10 % 5 %

8 sel 50 % - 50 % 25 %

16 sel 20 % - 20 % 10 %

Belum

terfertilisasi10 % - 10 % 5 %


12/19

Rusak 10 % - 10 % 5 %

4 sel - 100 % 100 % 50 %

Gambar 1. Kontrol menit ke 20 Gambar 2. Kontrol Menit ke 35

Gambar 3. Kontrol menit ke 50 Gambar 4. Pengenceran 100x menit ke-

20

Gambar 5. Pengenceran 100x menit ke-

35

Gambar 6. Pengenceran 100x menit ke-

50


13/19

Gambar 7. Larva ikan Nilem (Osteochillus hasselti)


14/19

B. Pembahasan

Berdasarkan hasil praktikum, presentase telur terbuahi tiap kelompok

berbeda, kelompok 1 dengan pengenceran 10x memiliki rata-rata presentase telur

terbuahi adalah 68,4%, kelompok 2 mempunyai rata-rata presentase telur terbuahi

61,7 % pada pengenceran 100x, rata-rata presentase telur terbuahi pada

pengenceran 1000x yang dilakukan kelompok 3 yaitu 68,3 %. Selain itu rata- rata

presentase telur terbuahi pada jeda waktu 1 menit adalah 66,7 %, kelompok 2

dengan jeda waktu 3 menit mempunyai rata-rata telur terbuahi adalah 60 % serta

kelompok 3 memiliki presentase rata-rata telur terbuahi 76,65 % dari jeda waktu 5

menit. Hasil presentase kontrol yang didapat yaitu 76,7 %.

Tingkat pengenceran 100x yang dilakukan, menghasilkan rata-rata telur

terbuahi 40 % di menit ke 20. Pada menit selanjutnya yaitu menit ke 35

mempunyai rata-rata sel telur terbuahi yaitu 75 %, serta di menit ke 50

mempunyai presentase sel telur terbuahi rata-ratanya adalah 80 %. Hal ini tidak

sesuai dengan Menurut Wijayanti (1997), persentase pembuahan yang

mengindikasikan bahwa sel telur dan sperma yang digunakan berkualitas baik

dapat mencapai hingga 99 %. Persentase yang besar ini dihasilkan dari telur dan

milt yang mudah keluar pada saat distripping, telur tidak bergerombol dengan

diameter yang relatif seragam, warna yolk tajam, tidak memiliki ruang perivitelin,

dan milt yang dihasilkan dalam jumlah banyak dengan konsistensi normal.

Urutan proses utama selama fertilisasi (pembuahan) (Soeminto, 2000):

1. Kontak dan pengenalan sperma-telur untuk memastikan sperma-telur dari

spesies yang sama,

2. Pengaturan masuknya sperma ke dalam telur untuk pencegahan

polispermi,

3. Fusi materi genetik dari sperma dan telur,

4.

Aktivasi metabolisme telur untuk mengawali perkembangan.

Tahapan dalam pengenalan sperma dan telur (Soeminto, 2000):

1. Telur mengeluarkan kemoatraktant pada spesies tertentu,

2.

Eksositosis vesikula akrosom,

3. Ikatan antara sperma dengan bungkus ekstraseluler telur,

4.

Sperma menembus bungkus telur,


15/19

5. Fusi membran sel telur dan membran sel sperma.

Pekembangan embrio pada ikan nilem (Osteochillus hassselti) betina

dimulai setelah telur dibuahi oleh inti spermatozoon yang semua haploid, menjadi

inti zigot yang diploid. Zigot inilah yang mempunyai kemampuan untuk

melakukan pembelahan segmentasi melalui proses mitosis yang cepat. Zigot yang

tersegmen-segmen menjadi bagian yang kecil (cleavage), bermula dari satu sel

kemudian membelah menjadi 2 sel, 4 sel, 8 sel, 16 sel, hingga 32 sel yang disebut

fase morula ( Djuhanda, 1982). Ostrander (2000) menambahkan bahwa awal

perkembangan embrio dimulai dengan proses pembuahan antara sperma dan sel

telur membentuk zigot. Kemudian tahap selanjutnya terjadi proses cleavage,

stadium 1 mulai berkembang dari sel menjadi 2 sel, stadium 2 menjadi 4 sel,

stadium 3 menjadi 8 sel, stadium 4 menjadi 16 sel dan stadium 5 menjdai 32 sel.

Selanjutnya, morula berkembang menjadi blastula, terbentuknya rongga yang

disebut blastosol. Tahap selanjutnya yaitu gastrula, pada tahap inilah dimulainya

Fate map (peta takdir) setiap makhluk hidup. pada tahap gastrula terbentuk germ

ring dan embryonicshield. Antara germ ring terdapat dua lapisan germinal.

Lapisan atas (epiblas) dan lapisan bawah (hypoblas). Epiblas selanjutnya

berkembang menjadi ektoderm dan setelah akhir gastrula menimbulkan jaringan

seperti epidermis, sistem saraf pusat, pial neural, dan placodes sensorik.

Hypoblast tersebut menimbulkan mesoderm dan endoderm.

Tahap Organogenesis ini terbentuk lima tabung bagian pembentuk organ

dasar yang berhubungan dengan notochord axial yaitu epidermis, neural,

endodermal, dan dua mesodermal. Tabung ektodermal menjadi penutup tubuh

(epidermis) dan derivatnya. Tabung mesodermal akan bersegregasi menjadi

bagian dorsal, intermediet dan lateral, dimana mesodermal dorsal telah lebihdahulu terbagi menjadi somit. Pada tahap somit akan terbentuk sirip pektoral,

notochord, pembuluh darah dan insang. Proses penetasan embrio terjadi apabila

adanya pelunakan korion akan menurun menjelang penetasan (Hatching)

(Kimmel et al, 1995).

Menurut Wijayanti (1997) semakin tinggi tingkat pengenceran, maka lama

motilitas spermaozoa semakin pendek, begitu juga sebaliknya. Hal ini

menunjukkan bahwa semakin pendek motilitas sperma berarti semakin sedikit


16/19

pula jumlah spermatozoa yang hidup dan dapat teramati. Semakin tinggi tingkat

pengenceran menimbulkan perbedaan osmolitas. Fertilisasi ikan nilem yang

terjadi secara eksternal yaitu terjadi di dalam air juga sangat ditentukan oleh

kondisi aliran air pada saat melakukan pemijahan. Aliran air yang sangat deras

dapat menyebabkan spermatozoa yang dikeluarkan oleh ikan jantan terbawa arus

kemungkinan untuk bertemunya ovum dan sperma sangat kecil sehingga

fertilisasi tidak dapat terjadi. Kualitas air juga menetukan dalam proses fertilisasi,

kondisi air yang banyak mengandung material-material lain yang bersifat toksik

dapat menyebabkan ketidakberhasilan fertilisasi karena sperma maupun ovum

mati. Air yang asam juga dapat membebaskan karbondioksida bebas dari

bikarbonat di dalam air yang dapat menjadi toksik atau menyebabkan pH 5-6

bersifat letal.

Menurut Effendie (2002), mengemukakan bahwa peningkatan suhu

menyebabkan masa perkembangan telur hingga menetas menjadi lebih singkat.

Waktu penetasan telur menjadi lebih lambat pada media inkubasi dengan suhu

yang rendah, sebaliknya pada media inkubasi dengan suhu tinggi proses penetasan

telur akan terjadi lebih cepat. Ah-King (2006), menjelaskan bahwa sperma sangat

sensitif terhadap perubahan tekanan osmotik, kondisi lingkungan yang dapat

mempengaruhi aktivasi sperma yang memberikan indikasi terhadap fertilisasi.

Menurut M. Yasemi (2010), penangkaran pada ikan tidak berpengaruh terhadap

presentase telur yang terbuahi dan hal tersebut tidak signifikan terhadap

kematangan sel telur diantara ikan yang di tangkar atau ikan yang bebas.

Morfologi sel digunakan untuk mengetahui kualitas telur. Pada

pembelahan awal (blastomer) embrio tidak berdiferensiasi, nantinya akan

mempengaruhi terhadap kemampuan hidup . Sel telur yang telah terbuahimempunyai ciri-ciri warna yolk yang tajam, memiliki integritas yang baik dan

pada kutub animalis terbentuk kuncup pembuahan. Telur yang belum terbuahi

mempunyai lspisan luar yang disebut selaput kapsul (Storer, 1985).

Berdasarkan pengamatan setelah 24 jam, didapatkan telur yang menetas,

namun tidak seluruhnya. Menurt Balinsky (1960), hal ini disebabkan karena:


17/19

1. Ikan dalam keadaan stress karena faktor lingkungan yang kurang mendukung,

seperti halnya media dan tempat pemijahan yang kurang bersih, suasana yang

kurang tenang, kandungan O2yang rendah serta faktor cahaya.

2.

Ikan belum matang kelamin, sehingga meskipun sudah di hipofisasi dengan

hormon ovaprin tetap tidak akan memijah karena kandungan hormon

gonadotropin dalam kelenjar hipofisisnya sedikit.

3. Penyuntikan ikan resipen yang tidak hati-hati sehingga kemungkinan terjadi

kerusakan pada sisik ikan, maka ikan tidak akan memijah walaupun sudah

diinduksi hormon ovaprin.

4. Lemahnya sperma, sifat pergerakan sperma menentukan kemampuan untuk

melakukan pembuahan.

5. Sperma mudah sekali tergantung oleh suasana lingkungan, suhu medium yang

terlalu tinggi atau sebaliknya dan perubahan pH akan merusak pertumbuhan

kemampuan untuk membuahi.


18/19

IV. KESIMPULAN DAN SARAN

A. Kesimpulan

Berdasarkan tujuan dan pembahasan, maka dapat diambil kesimpulan

sebagai berikut

1. Fetilisasi pada ikan pada praktikum kali ini, dilakukan dengan cara

mencampurkan antara milt ikan dengan sel telur. Kemudian dibandingkan

dengan tingkat pengenceran dan jeda waktu.

2.

Sel telur yang telah terfertilisasi mempunyai ciri-ciri warna yolk yang tajam,

memiliki integritas yang baik dan pada kutub animalis terbentuk kuncuppembuahan. Telur yang belum terbuahi mempunyai lspisan luar yang disebut

selaput kapsul

3. Faktor yang mempengaruhi fertilisasi adalah kualitas air, pH, tekanan

osmotik dan proses pembelahan sel.

4. Tahapan perkembangan embrio ikan adalah zigot, cleavage, morula, blastula,

grastula dan proses organogenesis.

B.

Saran

Kebersihan dan kerapian laboratorium harus tetap terjaga untuk

mempernyaman saat praktikum. Bahan-bahan untuk praktikum dilengkapi lagi.


19/19

DAFTAR REFERENSI

Ah-King, M., H. Elofsson, C. Kvarnemo, G. Rosenqvist dan A. Berglund. 2006.

Why Is There No Sperm Competition In A Pipefish With ExternallyBrooding Males? Insights From Sperm Activation And Morphology. Journal

of Fish Biology (2006) 68, 958962.

Balinsky. 1960.Embryology. Saunders Company, London.

Djuhanda, T. 1982. Anatomi dari Empat Species Hewan Vertebrata. Armico,

Bandung

Effendie, M. I. 2002.Biologi Perikanan. Pustaka Nusantara, Bogor.

Kimmel, C. B. Ballard, W. W. 1995. Stages of Embryonic Development of The

Zebrafish. Institute of Neuroscience, University of Oregon, Eugene.

M. Yasemi, Nikoo M. 2010. The impact of captivity on fertilization, cortisol and

glucose levels in plasma in kutum broodstock. Iranian Journal of Fisheries

Sciences. 9(3) 478-484

Ostrander, Gary K. 2000. The Laboratory of FISH. Academic Press. California

Sistina, Y. 2000. Biologi Reproduksi. Fakultas Biologi Universitas Jenderal

Soedirman, Purwokerto.

Soeminto. 2000.Embriologi Vertebrata. Unsoed, Purwokerto.

Storer, T. 1985. Element of Zoology. Mc Graw Hill Book Company Inc.,America.

Wijayanti, G.E. 1997. Fertilisasi Telur dan Sperma Ikan Nilem (Osteochillus

hasselti C.V.) Pasca Striping dalam Media Alami. Fakultas Biologi Unsoed,

Purwokerto

laporan fertilisasi

Documents