tikus jantan

PENGARUH PEMBERIAN VITAMIN C TERHADAP JUMLAH SEL LEYDIG DAN JUMLAH SPERMA MENCIT JANTAN

DEWASA (Mus musculus, L.) YANG DIPAPARI MONOSODIUM GLUTAMATE (MSG)

TESIS

Oleh

JULAHIR HODMATUA SIREGAR 077008002/BM

SEKOLAH PASCASARJANA UNIVERSITAS SUMATERA UTARA

MEDAN 2009

S

EK O L A

H

PASCASAR J

ANA

id3774447 pdfMachine by Broadgun Software - a great PDF writer! - a great PDF creator! - http://www.pdfmachine.com http://www.broadgun.com

Julahir Hodnatua Siregar : Pengaruh Pemberian Vitamin C Terhadap Jumlah Sel Leydig Dan Jumlah Sperma Mencit Jantan Dewasa ( Mus musculus, L. ) Yang Dipapari Monosodium Glutamate (MSG), 2009.

PENGARUH PEMBERIAN VITAMIN C TERHADAP JUMLAH SEL LEYDIG DAN JUMLAH SPERMA MENCIT JANTAN

DEWASA (Mus musculus, L.) YANG DIPAPARI MONOSODIUM GLUTAMATE (MSG)

TESIS

Diajukan Sebagai Salah Satu Syarat untuk Memperoleh Gelar Magister Kesehatan dalam Program Studi Ilmu Biomedik pada Sekolah Pascasarjana Universitas Sumatera Utara

Oleh

JULAHIR HODMATUA SIREGAR 077008002/BM

SEKOLAH PASCASARJANA UNIVERSITAS SUMATERA UTARA

MEDAN 2009


Judul Tesis : PENGARUH PEMBERIAN VITAMIN C TERHADAP JUMLAH SEL LEYDIG DAN JUMLAH SPERMA MENCIT JANTAN DEWASA (Mus musculus, L.) YANG DIPAPARI MONOSODIUM GLUTAMAT (MSG)

Nama Mahasiswa : Julahir Hodmatua Siregar Nomor Pokok : 077008002 Program Studi : Biomedik

Menyetujui Komisi Pembimbing

(Dr. Drs. Syafruddin Ilyas, M.Biomed) (dr. Delyuzar, SpPA (K)) Ketua Anggota

Ketua Program Studi Direktur

(dr. Yahwardiah Siregar, PhD) (Prof. Dr. Ir. T. Chairun Nisa B, MSc)

Tanggal lulus: 29 Agustus 2009


Telah diuji pada

Tanggal 29 Agustus 2009

PANITIA PENGUJI TESIS

Ketua : Dr. Drs. Syafruddin Ilyas, M.Biomed

Anggota : 1. dr. Delyuzar, SpPA (K)

2. Prof. Em. dr. Yasmeini Yazir

3. Prof. dr. Gusbakti Rusip, MSc, PKK


ABSTRAK

Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui tentang pengaruh vitamin C terhadap jumlah sel Leydig dan Sperma mencit jantan yang dipapari dengan monosodium glutamate (MSG). Apakah pengaruh reaktif oksigen spseies (ROS) atau radikal bebas yang ditimbulkan pemberian MSG dapat ditangkal dengan pemberian vitamin C sebagai antioksidan. Penelitian ini memakai mencit jantan Mus musculus L sebanyak 25 ekor yang dibagi dalam 5 kelompok perlakuan. Kelompok pertama sebagai kontrol negatif yang diberi dengan NaCl 0,9% 0,5 cc selama 30 hari, kelompok kedua kontrol positif diberi MSG 4mg/gBB intraperitoneal (IP) dilarutkan dengan NaCl 0,9% 0,5cc selama 15 hari, 15 hari berikutnya diberi NaCl 0,9% 0,5cc, kelompok ketiga diberi MSG 4mg/gBB (IP) selama 30 hari, kelompok keempat diberi MSG 4mg/gBB 15 hari pertama dan dilanjutkan dengan pemberian vitamin C 0.2mg/gBB oral 15 hari berikutnya, kelompok kelima diberi MSH 4mg/gBB (IP) 15 hari pertama dilanjutkan dengan pemberian MSG 4mg/gBB ditambah vitamin C 0,2mg/gBB 15 hari berikutnya. Penelitian ini telah mendapat persetujuan dari komite etik penelitian USU. Hasil yang didapat menunjukkan adanya perbedaan yang bermakna secara statistik pada jumlah sel Leydig (P<0.05), sedangkan jumlah sperma tidak memberikan nilai yang berbeda bermakna secara statistik (P>0,05) walaupun menunjukkan adanya sedikit perbedaan. Jumlah sel Leydig yang berbeda bermakna dipengaruhi oleh pemberian MSG yang mengakibatkan pembentukan radikal bebas sehingga jumlah sel Leydig berubah. Sedangkan jumlah sperma yang tidak berbeda bermakna kemungkinan diakibatkan oleh tidak adanya perubahan pada kadar terstosteron intratestikular sehingga tidak mempengaruhi proses spermatogenesis.

Kata Kunci: MSG, Sel Leydig, Sperma, Vitamin C, ROS.


ABSTRACT

The present study is aimed to investigate the effect of vitamin C to Leydig cell and the sperm concentration of mice (Mus musculus L.) which are induced by monosodium glutamate (MSG). Is there any effect on ROS after giving of MSG treatment? Is it possible vitamin C to reject ones throughout antioxidant?. Adult mice (n=5/group) are divided into five groups. The first group, as negative control which is given 0,5 cc of NaCl 0,9% intrapertoneal (IP) for 30 days. The second group, as a positive control which is given MSG 4mg/gBW (IP) for 15 days, then the next 15 days, the mice is given 0,5 cc of NaCl 0,9%. The third group is given MSG 4mg/gBW (IP) for 30 days. The fourth group is given MSG 4mg/gBW for 15 days and 15 days later they are given orally 0,2mg/gBW of vitamin C. The Fifth group is given MSG 4mg/gBW (IP) for 15 days and 15 days later the mice is given MSG 4mg/gBW (IP) and orally 0,2mg/gBW of vitamin C. All the experimental procedures and animal maintenance confirmed to the strict guidelines of institutional animal ethics committee. The amount of Leydig cell in experimental groups compared with control group significantly difference (P<0,05), whereas the amount of sperm is not significantly difference (P>0,05). MSG administration to increase free radical. It causes the formation of ROS which changes the Leydig cell. The sperm concentration insignificantly difference, because MSG does not decrease intratesticular testosterone, so it will not affect the process of spermatogenesis.

Keywords: MSG, Leydig cell, Sperm, Vitamin C, ROS.


KATA PENGANTAR

Puji syukur ke hadirat Allah SWT atas berkat dan rahmatNya, penulis dapat

menyelesaikan penelitian dengan judul Pengaruh Pemberian Vitamin C terhadap

Jumlah sel Leydig dan Jumlah Sperma Mencit Jantan Dewasa (Mus musculus.,L.)

yang dipapari Monosodium Glutamat (MSG). Tesis ini merupakan salah satu syarat

yang harus dilaksanakan penulis dalam rangka memenuhi persyaratan untuk meraih

gelar Magister pada Sekolah Pascasarjana Universitas Sumatera Utara.

Dengan selesainya tesis ini, penulis ingin menyampaikan ucapan terima kasih

yang tulus kepada:

1. Kedua Orang tua tercinta, Baginda Natorop Siregar dan Fatimah Harahap dan

seluruh keluarga atas dukungan dan doa yang tulus mendukung penulis

menyelesaikan pendidikan di Sekolah Pascasarjana USU Medan.

2. Bapak Dirjen Dikti yang telah memberikan bantuan dana berupa beasiswa

selama mengikuti pendidikan di Sekolah Pascasarjana USU Medan.

3. Bapak Rektor Universitas Sumatera Utara, Prof. Chairuddin P. Lubis,

DTM&H, SpA(K) dan seluruh jajarannya yang telah memberikan kesempatan

kepada penulis untuk mengikuti pendidikan di Sekolah Pascasarjana USU

Medan.

4. Ibu Prof. Dr. Ir. T. Chairun Nisa B, MSc, selaku Direktur Pascasarjana USU

Medan, atas kesempatan dan fasilitas yang diberikan kepada penulis untuk

mengikuti dan menyelesaikan pendidikan Program Magister Sekolah

Pascasarjana USU Medan.

5. Ketua Program Studi Ilmu Biomedik, dr. Yahwardiah Siregar, PhD.

6. Dosen Pembimbing, Dr. Drs. Syafruddin Ilyas, M.Biomed dan dr. Delyuzar,

SpPA(K) atas masukan dan dukungannya selama penelitian dan penyusunan

tesis ini.


7. Dosen Pembanding, Prof. dr. Yasmeini Yazir dan Prof. Gusbakti Rusip, M.Sc,

PKK.

8. Koordinator Kopertis Wilayah I yang telah memberikan izin kepada penulis

untuk mengikuti pendidikan Program Magister Sekolah Pascasarjana USU

Medan.

9. Rektor Universitas Islam Sumatera Utara dan Dekan Fakultas Kedokteran

UISU, yang telah memberikan izin kepada penulis untuk mengikuti

pendidikan Program Magister Sekolah Pascasarjana USU Medan.

10. Terima kasih yang tulus kepada istriku tercinta, Anni Lovina Dalimunthe, atas

semua dorongan dan semangat sehingga tesis ini dapat penulis selesaikan.

11. Terima kasih kepada mertua dan seluruh keluarga yang telah memberikan

dukungan moril selama penulis menjalani pendidikan di Sekolah Pascasarjana

USU Medan.

12. Terima kasih kepada dr. Syaiful Batubara dan keluarga yang memberikan

nasehat dan semangat kepada penulis.

13. Terima kasih tidak lupa penulis sampaikan kepada semua teman-teman

seperjuangan, mahasiswa Sekolah Pascasarjana USU Program Studi Ilmu

Biomedik angkatan 2007, atas dorongan semangat dan kerjasama yang baik

dan kekompakan yang terjalin selama ini.

14. Terima kasih juga penulis sampaikan kepada semua pihak yang telah

membantu dalam pelaksanaan penelitian sampai selesainya tesis ini.

Penulis mengharapkan kritik dan saran yang membangun guna kesempurnaan

tesis ini. Demikian tesis ini disampaikan semoga dapat bermanfaat bagi

perkembangan ilmu pengetahuan.

Medan, 29 Agustus 2009

Penulis

Julahir Hodmatua Siregar


RIWAYAT HIDUP

Nama : Julahir Hodmatua Siregar

Tempat/Tanggal Lahir : Aektampang, 12 Desember 1977

Agama : Islam

Status : Menikah

Alamat : Jl. Bantan No. 26 B Medan

Pendidikan :

SD Negeri Situmba : 1984-1990

SMP Negeri Baringin : 1990-1993

SMA Negeri 2 P. Sidempuan : 1993-1996

Sarjana (S1) FK UISU : 1997-2004

Pascasarjana (S2) Biomedik USU : 2007-2009

Pekerjaan :

Dokter PTT : 2004-2005

Dosen Kopertis Wil I dpk Akbid RS Haji Medan : 2005-2006

Dosen Kopertis Wil I dpk UISU : 2006-Sekarang


DAFTAR ISI

Halaman

ABSTRAK..................................................................................................... i ABSTRACT..................................................................................................... ii KATA PENGANTAR.................................................................................... iii RIWAYAT HIDUP........................................................................................ v DAFTAR ISI................................................................................................... vi DAFTAR TABEL........................................................................................... viii DAFTAR GAMBAR...................................................................................... ix DAFTAR LAMPIRAN................................................................................... x BAB 1. PENDAHULUAN��. 1

1.1. Latar Belakang......................................................................... 1 1.2. Rumusan Masalah.................................................................... 4 1.3. Kerangka Teori........................................................................ 4 1.4. Tujuan Penelitian..................................................................... 5

1.4.1. Tujuan Umum.............................................................. 5 1.4.2 Tujuan Khusus............................................................. 6

1.5. Hipotesis.................................................................................. 6 1.6. Manfaat Penelitian................................................................... 6

BAB 2. TINJAUAN PUSTAKA..................................................................... 7

2.1. Monosodium Glutamat (MSG)................................................ 7 2.1.1. Kimia MSG................................................................... 7 2.1.2. Metabolisme MSG........................................................ 9 2.1.3. Efek Biologis MSG��... 9 2.1.4. Efek MSG terhadap Fungsi Reproduksi....................... 9

2.2. Asam Askorbat (Vitamin C)..................................................... 11 2.2.1. Sumber-sumber Asam Askorbat (Vitamin C).............. 11 2.2.2. Biokimia Asam Askorbat (Vitamin C)......................... 12 2.2.3. Asam Askorbat (Vitamin C) dan Fertilitas................... 14

2.3. Fisiologi Reproduksi Mencit Jantan......................................... 15 2.3.1. Sistim Reproduksi Mencit Jantan................................. 15 2.3.2. Testis............................................................................. 16 2.3.3. Sel Leydig..................................................................... 16

2.4. Sistim Duktus........................................................................... 17 2.5. Spermatogenesis....................................................................... 17 2.6. Struktur Sel Spermatozoa......................................................... 18


BAB 3. METODOLOGI PENELITIAN.......................................................... 19 3.1. Tempat dan Waktu................................................................... 19 3.2. Rancangan Penelitian............................................................... 19 3.3. Bahan dan Alat Penelitian........................................................ 20

3.3.1. Bahan Penelitian........................................................... 20 3.3.2. Alat-alat........................................................................ 21

3.4. Variabel Penelitian................................................................... 21 3.4.1. Variabel Independen.................................................... 21 3.4.2. Variabel Dependen....................................................... 21

3.5. Pelaksanaan Penelitian dan Pengamatan.................................. 21 3.5.1. Pemeliharaan Hewan Percobaan.................................. 21 3.5.2. Pemberian Perlakuan.................................................... 22 3.5.3. Prosedur Pemeriksaan dan Pengamatan....................... 23

3.6. Analisis Data dan Pengujian Hipotesis.................................... 27

BAB 4. HASIL DAN PEMBAHASAN........................................................... 28 4.1. Deskripsi Hasil Penelitian........................................................ 28

4.1.1. Pengambilan Organ...................................................... 28 4.2. Hasil Penelitian......................................................................... 29

4.2.1. Berat Badan.................................................................. 29 4.2.2. Jumlah Sel Sperma....................................................... 29 4.2.3. Jumlah Sel Leydig........................................................ 30

4.3. Pembahasan.............................................................................. 31 BAB 5. KESIMPULAN DAN SARAN........................................................... 34

5.1. Kesimpulan............................................................................... 34 5.2. Saran......................................................................................... 34

DAFTAR PUSTAKA....................................................................................... 35


DAFTAR TABEL

Nomor Judul Halaman

3.1. Desain Perlakuan�� 23 4.1. Jumlah Sperma Mencit��... 30 4.2. Jumlah Sel Leydig��.. 30


DAFTAR GAMBAR

Nomor Judul Halaman

1.1. Kerangka Konsep...................................................................... 5 2.1. Struktur Ikatan Kimia Asam Askorbat...................................... 14 2.2. Sel Leydig................................................................................. 17 3.1. Kamar Hitung Improved Neubauer........................................... 27 4.1. Berat Badan Mencit Awal dan Akhir........................................ 29 4.2. Sel Leydig (Panah) dengan Pembesaran Mikroskop 400x�� 31


DAFTAR LAMPIRAN

Nomor Judul Halaman

1. Hasil Pengolahan Data Secara Statistik......................................... 39


BAB 1

PENDAHULUAN

1.1. Latar Belakang

Monosodium glutamate (MSG) adalah garam natrium dari asam glutamat

(glutamic acid). MSG telah dikonsumsi secara luas di seluruh dunia sebagai

penambah rasa makanan dalam bentuk L-glutamic acid (Geha et al, 2000). Asam

amino tersebut pada hakekatnya banyak dijumpai dalam makanan alami, bahkan

makanan tertentu bisa mengandung antara 5 - 20% dari total kandungan asam amino,

baik dalam bentuk bebas maupun terikat dengan peptida ataupun protein (Geha et al,

2000; FDA, 1995). Glutamat dalam bentuk bebas didapat dari makanan seperti tomat,

keju dan kecap yang merupakan hasil fermentasi (FDA, 1995). Secara alami glutamat

yang ada dalam tubuh kita berasal dari makanan yang mengandung protein seperti

keju, susu, daging, kacang kapri dan jamur (FDA, 1995).

Rata-rata konsumsi MSG diperkirakan sekitar 0,6 g/hari di Indonesia

(Prawiroharjo et al, 2000) atau 0,3 - 1.0 g/hari di negara industri (Geha et al, 2000).

Konsumsi tersebut bisa meningkat tergantung pada isi kandungan MSG dalam

makanan dan juga tergantung pilihan rasa seseorang (Geha et al, 2000).

Penelitian yang dilakukan Ahluwalia (1996) dengan pemberian MSG secara

subkutan pada menit jantan dewasa selama 6 hari dengan dosis 4 dan 8 mg/g BB

menyebabkan peningkatan kadar glukosa eritrosit diikuti dengan peningkatan lipid

peroksidasi. Kadar total glutation dan protein yang terikat glutation meningkat secara


signifikan dalam eritrosit, sementara glutation non protein menurun secara signifikan.

Pemberian 4 dan 8 mg/g BB MSG meningkatkan aktivitas glutation reduktase (GR),

glutathione-S-transferse (GST) dan glutation reductase (GRX). Hal ini

menggambarkan bahwa pemberian MSG di atas 4mg/g BB menghasilkan stress

oksdatif yang dilawan tubuh dengan meningkatkan aktivitas enzim metaboliknya

(Ahluwalia, 1996).

Penelitian yang dilakukan Vinodini pada tikus jantan dengan pemberian MSG

4g/kgBB selama 15 hari (paparan jangka pendek) dan 30 hari (paparan jangka

panjang) sangat berpengaruh. Berat testis, yang diukur menunjukkan penurunan pada

kedua group percobaan. Kadar lipid peroksidasi meningkat pada kedua group.

Sedangkan kadar asam askorbat pada testis terjadi penurunan (Vinodini, 2008).

Pada penelitian tikus jantan yang diberi MSG selama 15 hari (paparan jangka

pendek) dan 30 hari (paparan jangka panjang) yang diberi 4gr/kgBB intraperitoneal

memperlihatkan pengaruhnya berupa penurunan berat testis, jumlah sperma, dan

kadar asam askorbat, dan peningkatan jumlah sperma yang rusak atau abnormal.

Jumlah sperma yang normal pada tikus yang dipaparkan dengan MSG jangka pendek

lebih sedikit dibanding dengan yang dipaparkan dengan jangka panjang (Nayatara,

2008).

Hal yang penting dari aerobic respiration adalah oksigen yang sangat penting

untuk menghasilkan energi, tapi hal itu juga dapat menjadi penyebab terjadinya

Reactive oksigen species (ROS). Ketika kadar ROS melampaui batas pertahanan


antioksidan tubuh, akan terjdi stress oksidative (OS). OS yang terus meningkat akan

merusak sel, jaringan, dan organ.

Vitamin C merupakan antioksidan pemecah rantai utama dan terdapat pada

cairan ekstrasel. Vitamin C menetralisir hidroksil, superoksid, dan radikal hydrogen

peroksid dan mencegah aglutinsi sperma. Vitamin C ditemukan sedikit jumlahnya

pada pria infertile. Vitamin C meningkatkan jumlah sperma secara invivo pada pria

infertile dengan dosis 200-1000mg/hari (Agarwal, 2005).

Asam askorbat telah lama dihubungkan dengan fertilitas, yang berperan

terhadap sintesis kolagen yang berperan pada hormon produksi, dan dapat melindungi

sel dari radikal bebas. Asam askorbat terakumulasi di dalam testis dan ovarium.

Penelitian yang dilakukan oleh Yousef (2003) terhadap kelinci yang diberikan

vitamin C dan E secara terpisah maupun kombinasi menunjukkan peningkatan libido,

konsentrasi sperma, jumlah sperma dan konsentrasi fruktosa semen (Yousef, 2003).

Pemberian Vitamin C dengan dosis 0,2mg/g BB secara oral selama 36 hari

yang dilakukan oleh Fauzi (2008) menunjukkan dapat menangkal efek senyawa

radikal bebas yang disebabkan timbal (Fauzi, 2008).

Dari data-data yang sudah dipaparkan di atas terlihat bahwa pemberian MSG

memberikan pengaruh terhadap kadar lipid peroksidasi dalam testis. Maka penelitian

ini bertujuan untuk mengetahui pengaruh pemberian vitamin C terhadap jumlah sel

leydig dan jumlah sperma mencit yang dipapari MSG.


1.2. Rumusan Masalah

Bagaimana pengaruh pemberian vitamin C terhadap jumlah sel leydig dan

jumlah sperma mencit jantan dewasa yang dipapari MSG.

1.3. Kerangka Teori

Pemberian MSG dengan dosis 4mg/gBB menimbulkan stress oksidatif pada

tikus yang ditandai dengan peningkatan kadar lipid peroksidasi dan penurunan kadar

asam askorbat, yang akan berakibat terhadap penurunan berat testis dan jumlah

sperma yang morfologinya normal dan juga kualitas sperma. Vitamin C sebagai anti

okisidan akan dapat mencegah terjadinya stress oksidatif sehingga hal di atas tidak

terjadi.


Gambar 1.1. Kerangka Konsep

1.4. Tujuan Penelitian

1.4.1. Tujuan Umum

Untuk mengetahui bagaimana pengaruh pemberian Vitamin C terhadap testis

dan fungsi testis mencit jantan yang dipapari MSG.


1.4.2. Tujuan Khusus

Untuk mengetahui bagaimana pengaruh pemberian Vitamin C terhadap

jumlah sel leydig dan jumlah sperma mencit jantan dewasa (Mus musculus, L) yang

dipapari MSG.

1.5. Hipotesis

Ho : a. Vitamin C tidak mempunyai pengaruh terhadap jumlah sel Leydig

mencit jantan dewasa yang dipapari MSG.

b. Vitamin C tidak mempunyai pengaruh terhadap jumlah sperma mencit

jantan dewasa yang dipapari MSG.

Ha : a. Vitamin C mempunyai pengaruh terhadap jumlah sel Leydig mencit

jantan dewasa yang dipapari MSG.

b. Vitamin C mempunyai pengaruh terhadap jumlah sperma mencit jantan

dewasa yang dipapari MSG.

1.6. Manfaat Penelitian

Dapat dijadikan referensi untuk penelitian selanjutnya akan dampak konsumsi

MSG terhadap sistem reproduksi.


BAB 2

TINJAUAN PUSTAKA

2.1. Monosodium Glutamat (MSG)

2.1.1. Kimia MSG

MSG pertama sekali berhasil diisolasi oleh Dr. Kikunea Ikeda di Universitas

Tokyo, pada tahun 1908, seorang ahli kimia berkebangsaan Jepang (George R, 1999),

dengan rumus kimia C5H8O4NNaH2O. Dr. Ikeda mengisolasi asam glutamat tersebut

dari rumput laut �kombu� yang biasa digunakan dalam masakan Jepang. Dr. Ikeda

menemukan rasa lezat dan gurih dari MSG yang berbeda dengan rasa yang pernah

dikenalnya oleh karena itu maka dia menyebut rasa itu dengan sebutan �umami� yang

berasal dari bahasa jepang �umai� yang berarti enak dan lezat. MSG sendiri

sebenarnya sama sekali tidak menghadirkan rasa yang enak, bahkan sering

menghadirkan rasa yang dideskripsikan sebagai rasa pahit, dan asin. Akan tetapi

ketika MSG ditambahkan dengan konsentrasi rendah pada makanan yang sesuai

maka rasa, kenikmatan dan penerimaan terhadap makanan tersebut akan meningkat

(Halpern et al, 2002). Monosodium Glutamat (MSG) ini terdiri dari Natrium

sebanyak 12%, Glutamat 78% dan Air 10%.

MSG merupakan metabolit antara yang penting dalam metabolisme asam

amino dan sumber energi utama pada sel otot jantung. MSG ditambahkan dengan

bentuk sediaan garam monosodium murni ataupun bentuk campuran komponen asam

amino dan peptide yang berasal dari asam atau enzim hidrolisa protein (Geha et al,


2000). MSG dihasilkan secara fermentasi dan merupakan ramuan makanan yang

umum di Asia (Prawiroharjo et al, 2000).

MSG kemudian menjadi bahan penambah rasa yang dipakai di seluruh dunia

(Geha et al, 2000) dan menjadi bahan penambah rasa yang banyak dipakai di Asia

Tenggara (Prawirohardjono et al, 2000). MSG bila larut dalam air ataupun saliva

akan dengan cepat berdisosiasi menjadi garam bebas dan menjadi bentuk anion dari

glutamat. kemudian ion glutamat ini akan membuka channel Ca2+ pada neuron yang

terdapat taste bud sehingga memungkinkan ion Ca2+ bergerak ke dalam sel sehingga

menimbulkan depolarisasi reseptor yang akan menimbulkan potensial aksi yang

sampai ke otak lalu diterjemahkan sebagai rasa yang lezat.

Tahun 1995 Food and Drugs Administration (FDA, 1995) mengklasifikasikan

MSG sebagai bahan yang aman, generally recognized as safe (GRAS) seperti bahan

makan lainnya seperti garam, cuka dan baking powder (FDA, 1995). Sementara itu

Prawiroharjo melakukan penelitian di Indonesia menyatakan tidak ada gejala yang

signifikan antara orang yang sehat yang mengkonsumsi MSG dengan dosis 1,5 - 3,0 g

perhari dan pada placebo (Prawiroharjo et al, 2000).

Federation of American Societies for Experimental Biology (FASEB)

melaporkan bahwa mengkonsumsi MSG 3 gram satu jam setelah makan atau

mengkonsumsi MSG dalam keadaan perut kosong akan mengakibatkan terjadinya

MSG symptom complex; rasa terbakar di belakang leher, lengan dan dada, kebas

di belakang leher, hangat dan lemah di muka, dan pundak, nyeri dada, sakit kepala,

muntah denyut jantung cepat, bronchospasme, kelelahan (FDA, 1995).


2.1.2. Metabolisme MSG

Pada penelitian yang dilakukan dengan menggunakan marmut yang dilakukan

oleh Lewis D et al, terlihat bahwa akan terjadi peningkatan kadar MSG diplasma 15 -

30 menit setelah pemberian MSG yang dicampur dengan air dan kadarnya akan

kembali turun setelah 120 menit. Peningkatan kadar MSG terlihat setelah 90 - 120

menit pemberian MSG dengan cara mencampurnya dengan makanan formula bayi

babi, dan kadarnya akan turun setelah 4 jam dari pemberian awal (Lewis D, 1973).

2.1.3. Efek Biologis MSG

Federation of American Societies for Experimental Biology (FASEB)

melaporkan bahwa mengkonsumsi MSG 3 gram satu jam setelah makan atau

mengkonsumsi MSG dalam keadaan perut kosong akan mengakibatkan terjadinya

MSG symptom complex; rasa terbakar di belakang leher, lengan dan dada, kebas

di belakang leher, hangat dan lemah di muka, dan pundak, nyeri dada, sakit kepala,

muntah denyut jantung cepat, bronchospasme, kelelahan (FDA, 1995).

2.1.4. Efek MSG terhadap Fungsi Reproduksi

Pemberian MSG dengan dosis 4 mg/g berat badan secara suntikan subkutan

dapat menyebabkan terjadinya lesi neuron di nukleus arkuatus hipotalamus yang akan

mengganggu aksis neuroendokrin reproduksi (Lamperti dan Pickard, 1984). Pada

mencit baru lahir (usia 2 sampai 11 hari) yang disuntikkan MSG secara subkutan

dengan dosis 4 mg/g berat badan dapat terjadi disfungsi sistem reproduksi yang

manifestasinya akan muncul pada usia dewasa berupa berkurangnya fertilitas disertai

penurunan berat testis (Pizzi et al, 1977, Miskowiak et al, 1993). Tikus baru lahir


yang diberikan MSG secara suntikan intraperitoneal dengan dosis 4 mg/g berat badan

setiap dua hari sampai 10 hari, pada usia pubertas akan memperlihatkan penurunan

berat testis, jumlah sel sertoli dan sel leydig per testis, peningkatan kadar leptin,

penurunan kadar LH, FSH, testosteron dan T4 bebas, hal yang sama juga dijumpai

pada tikus saat usia dewasa tapi jumlah sel leydignya tetap (Franca et al, 2006,

Miskowiak et al, 1993).

Penelitian selanjutnya memperlihatkan bahwa salah satu mekanisme yang

mungkin berperan dalam timbulnya efek toksik akibat pemberian MSG pada sistem

reproduksi jantan mungkin diperantarai melalui efeknya dalam menurunkan kadar

asam askorbat. Penelitan tersebut dilakukan terhadap tikus Wistar jantan dewasa yang

disuntikkan MSG dengan dosis 4 g/kg berat badan selama 15 hari (kelompok jangka

pendek) dan selama 30 hari (kelompok jangka panjang), memperlihatkan bahwa

MSG menurunkan berat testis, jumlah sperma, kadar asam askorbat dalam testis dan

meningkatkan jumlah sperma abnormal. Pada kelompok jangka pendek

memperlihatkan penurunan jumlah sperma normal dan peningkatan jumlah sperma

dengan ekor abnormal secara signifikan ketika dibandingkan dengan kelompok

jangka panjang. Kadar asam askorbat dalam testis menurun secara signifikan pada

kelompok jangka pendek ketika dibandingkan dengan kelompok jangka panjang

(Nayanatara et al, 2008). Penelitian lanjutan yang dilakukan Vinodini et al (2008)

memperlihatkan bahwa MSG dengan dosis 4 g/kg berat badan secara intra peritoneal

selain menimbulkan terjadinya penurunan berat testis dan penurunan kadar asam

askorbat dalam testis juga memperlihatkan peningkatan kadar peroksidasi lipid dalam


testis dan pada kelompok jangka pendek memperlihatkan kerusakan oksidatif yang

lebih besar bila dibandingkan dengan kelompok jangka panjang.

2.2. Asam Askorbat (Vitamin C)

Asam askorbat adalah vitamin yang dapat larut dalam air dan sangat penting

untuk biosintesa kolagen, karnitin dan berbagai neurotransmitter. Kebanyakan

tumbuh-tumbuhan dan hewan dapat mensintesa asam askorbat untuk kebutuhannya

sendiri. Akan tetapi manusia dan golongan primata lainnya tidak dapat mensintesa

asam askorbat disebabkan karena tidak memiliki enzim gulonolactone oxidase, begitu

juga dengan marmut dan kelelawar pemakan buah. Oleh sebab itu asam askorbat

harus disuplai dari luar tubuh terutama dari buah, sayur atau tablet suplemen vitamin

C. Banyak keuntungan di bidang kesehatan yang didapat dari fungsi asam askorbat,

seperti fungsinya sebagai anti oksidan, anti atherogenik, imunomodulator dan

mencegah flu (Naidu, 2003). Akan tetapi untuk dapat berfungsi dengan baik sebagai

antioksidan, maka kadar asam askorbat ini harus terjaga agar tetap dalam kadar yang

relatif tinggi di dalam tubuh (Yi Li, 2007).

2.2.1. Sumber-sumber Asam Askorbat (Vitamin C)

Asam askorbat banyak dijumpai di dalam buah-buahan dan sayuran segar.

Buah yang banyak mengandung asam askorbat diantaranya adalah, jeruk, lemon,

semangka, strawberi, mangga dan nenas. Sedangkan sayuran yang banyak

mengandung asam askorbat diantaranya adalah sayuran yang berwarna hijau, tomat,

brokoli dan kembang kol.


Kebanyakan tumbuhan dan hewan mensintesa asam askorbat dari glukosa-D

atau galaktosa-D. Sebagian besar hewan memproduksi asam askorbat yang relatif

tinggi dari glukosa yang terdapat di liver (Naidu, 2003).

Asam askorbat merupakan molekul yang labil, sehingga dapat hilang dari

makanan pada saat dimasak. Asam askorbat sintetis tersedia dalam berbagai macam

suplemen bentuknya bisa bermacam-macam baik dalam bentuk tablet, kapsul, tablet

kunyah, bubuk kristal, dan dalam bentuk larutan. Baik asam askorbat yang alami

maupun yang sintetis memiliki rumus kimia yang identik dan tidak terdapat

perbedaan aktivitas biologi dan bioavailabilitasnya (Naidu, 2003).

2.2.2. Biokimia Asam Askorbat (Vitamin C)

Asam askorbat adalah merupakan 6 karbon lakton yang disintesa dari glukosa

yang terdapat dalam liver. Nama kimia dari asam askorbat 2-oxo-L-threo-hexono-1,4-

lactone-2,3-enediol. Bentuk utama dari asam askorbat yang dimakan adalah L-

ascorbic dan dehydroascorbic acid (Naidu, 2003). Kebanyakan spesies mamalia dapat

mensintesa asam askorbat kecuali manusia dan primata lainnya, marmut dan

kelelawar pemakan buah juga tidak dapat mensintesa asam askorbat (Luck, 1995).

Hal ini disebabkan karena mereka tidak memiliki enzim gulonolakton oksidase yang

sebenarnya sangat penting dalam mensintesa immediate precursor asam askorbat

yaitu 2-keto-1-gulonolakton. DNA yang memberi kode untuk gulonolakton oxidase

telah mengalami mutasi sehingga menyebabkan ketidakberadaan enzim yang

berfungsi. Vitamin C merupakan donor elektron dan juga merupakan reducing agent.

Asam askorbat mendonorkan dua elektron dari dua ikatan antara karbon kedua dan


ketiga dari 6 molekul karbon. Vitamin C disebut sebagai antioksidan karena dengan

mendonorkan elektronnya ia mencegah zat zat komposisi yang lain teroksidasi.

Bagaimanapun akibat dari reaksi ini secara alamiah vitamin C juga akan teroksidasi.

Setelah vitamin C mendonorkan elektronnya setelah itu dia akan menghilang dan

digantikan oleh radikal bebas semidehydroaskorbic acid atau radikal ascorbyl, yang

merupakan zat yang terbentuk akibat asam askorbat kehilangan 1 elektronnya, bila

dibandingkan dengan radikal bebas yang lain, radikal ascorbyl ini relatif stabildan

tidak reaktif. Hal inilah yang menyebabkan asam askorbat menjadi antioksidan

pilihan karena, radikal bebas yang reaktif dan berbahaya dapat berinteraksi dengan

asam askorbat, lalu direduksi dan radikal ascorbyl yang kemudian terbentuk

menggantikannya ternyata kurang reaktif bila dibandingkan dengan radikal bebas

tersebut. Bila radikal ascorbyl dan dehydroascorbic acid sudah dibentuk maka dia

akan dapat direduksi kembali menjadi asam askorbat sedikitnya dengan tiga jalur

enzym yang terpisah dengan cara mereduksi komponen yang terdapat di sistem

biologi seperti glutation, akan tetapi pada manusia hanya sebagian yang direduksi

kembali menjadi asam askorbat yang lain tidak dapat direduksi kembali menjadi asam

askorbat. Dehydroascorbic acid yang telah terbentuk kemudian dimetabolisme

dengan cara hidrolisis.


. Gambar 2.1. Struktur Ikatan Kimia Asam Askorbat

2.2.3. Asam Askorbat (Vitamin C) dan Fertilitas

Asam askorbat memiliki tiga aksi biologis dalam kaitannya untuk

mempertahankan fungsi reproduksi, masing-masing tergantung pada perannya

sebagai agent pereduksi yang diperlukan untuk proses biosintesa kolagen, hormon

steroid dan hormon peptida.

Asam Askorbat dan Testis

Asam askorbat memberikan efek baik kepada integritas dari struktur tubular

maupun terhadap fungsi sperma. Pada tubular dapat diasumsikan bahwa asam

askorbat dibutuhkan untuk sekresi dan pemeliharaan lapisan kolagen tipe I dan IV,

yang merupakan bagian utama dari kompleks lamina basalis. Pada endokrin asam

askorbat menstimulasi sekresi oxitosin. Defisiensi asam askorbat telah lama

dihubungkan dengan jumlah sperma yang rendah, peningkatan jumlah sperma yang

abnormal, mengurangi motilitas dan aglutinasi. Pada beberapa penelitian telah

dibuktikan bahwa asupan asam askorbat dapat memperbaiki kualitas sperma. Efek


yang menguntungkan dari asam askorbat ini mungkin adalah hasil dari pemecahan

radikal bebas yang sering timbul akibat polusi lingkungan dan metabolisme selular

yang dapat menyebabkan kerusakan oksidatif dari DNA.

Kadar leptin meningkat beberapa lipat (2.41: 8,07) pada tikus prepubertal

yang diberi MSG, pada tikus tersebut menunjukkan kadar plasma LH, FSH, T, dan

FT menurun secara signifikan. Data-data tersebut menunjukkan bahwa perkembangan

testis, proliferasi sel sertoly dan sel leydig terganggu dengan pemberian MSG selama

prepubertas. Tikus dewasa yang diberi MSG menunjukkan peningkatan kadar leptin

dan penurunan kadar LH, FSH, tetapi kadar T dan FT menunjukkan dalam keadaan

normal dan juga tidak terlihat perubahan struktur testis. Pada tikus dewasa yang

diberi MSG terlihat adanya penurunan jumlah sel sertoli yang signifikan. Dari

penjelasan di atas mengindikasikan bahwa pemberian MSG pada tikus menunjukkan

karakteristik hubungan perubahan Hypothalamus-pituitary-gonadal(HPG) gangguan

proliferasi sel sertoli dan sel leydig, mengurangi jumlah sel sertoli, penurunan berat

organ seksual, menunjukkan keadaan hyperleptinemia jangka panjang menjadi faktor

utama rusaknya axis HPG pada tikus jantan yang diberi MSG (Franca et al, 2006).

2.3. Fisiologi Reproduksi Mencit Jantan

2.3.1. Sistim Reproduksi Mencit Jantan

Sistim reproduksi mencit jantan terdiri dari sepasang testis yang dibungkus

skrotum, epididimis dan vassa deferens, kelenjar aksesoris, uretra dan penis (Rugh. R,

1967).


2.3.2. Testis

Pada mencit jantan Gonad sewaktu embrio berdifrensiasi menjadi testis yang

akan dibungkus oleh skrotum. Fungsi testis ini untuk menghasilkan hormon seks

jantan yang disebut androgen, dan juga menghasilkan gamet jantan yang disebut

sperma. Di dalam testis terdapat 2 komponen penting, yaitu komponen

spermatogenesis dan komponen interlobular. Komponen spermatogenesis terdiri dari

sel germinal dan sel sertoli pada tubulus seminiferus. Komponen interlobular terdiri

dari sel interstitial Leydig dan jaringan peritubular serta sistem vascular dan limfatik

(Russel L D, 1990).

Lebih dari 90% testis terdiri dari tubulus seminiferus yang merupakan tempat

menghasilkan sperma. Tubulus tersebut tersusun berliku-liku di dalam testis dan

sangat panjang. Pada mencit jantan muda struktur tubulus terdiri dari epithelium

lembaga yang menghasilkan sel-sel spermatogonia dan sel sertoly. Pada jantan yang

lebih tua spermatogonia tumbuh menjadi spermatosit primer, yang setelah

pembelahan meiosis pertama tumbuh menjadi spermatosid sekunder haploid.

Spermatosid sekunder akan menjadi spermatid yang menjalani spermatogenesis, yang

akhirnya akan menjadi sperma yang terdiri dari kepala tubuh dan ekor (Nalbandov,

1990, Robert R, 1967).

2.3.3. Sel Leydig

Sel instertisial Leydig merupakan sel yang memberikan gambaran mencolok

untuk jaringan tersebut. Sel-sel Leydig letaknya berkelompok memadat pada daerah

segitiga yang terbentuk oleh susunan-susunan tubulus seminiferus. Sel-sel tersebut


besar, dengan sitoplasma sering bervakuol pada sajian mikroskop cahaya. Inti selnya

mengandung butir-butir kromatin kasar dan anak inti yang jelas. Umumnya pula

dijumpai sel yang memiliki dua inti. Sitoplasma sel kaya dengan benda-benda inklusi

seperti titik lipid, dan pada manusia juga mengandung kristaloid berbentuk batang

(Leeson et al, 1996).

Gambar 2.2. Sel Leydig (Guyton A C, Hall J E, 2008)

2.4. Sistem Duktus

Sistim duktus mencit jantan terdiri dari rete testis, epidimis (caput, corpus,

caudal) dan duktus deferens.

2.5. Spermatogenesis

Langkah spermatogenesis mencit jantan dimulai dari perubahan

spermatogonia menjadi spermatid dan akhirnya menjadi spermatozoa.


2.6. Struktur Sel Spermatozoa

Sel sperma yang normal terdiri dari kepala, leher, bagian tengah dan ekor.

Kepala ditutupi oleh tudung protoplasmic (galea kapitis). Galea kapitis biasanya larut

bila sperma diberi pelarut lemak yang biasanya digunakan untuk pegecatan. Bila

bergerak sperma berenang dalam cairan suspensinya seperti ikan dalam air. Bila mati

sperma akan terlihat datar dengan permukaan. Pada mencit ujung kepala sperma

berbentuk kait. Leher dan ekor tersusun dari flagellum tunggal yang padat tetepi

tersusun dari 9 - 18 fibril yang dibungkus oleh satu selubung. Pada ujung ekor

selubung menghilang, fibril menyembul dalam bentuk sikat yang telanjang

(Nalbandov, 1990; Rugh, R, 1967).


BAB 3

METODOLOGI PENELITIAN

3.1. Tempat dan Waktu

Penelitian akan dilaksanakan di Laboratorium Terpadu Fakultas Kedokteran

Universitas Sumatera Utara dan Laboratorium Patologi Anatomi FK USU, Medan.

Penelitian dilakukan selama ±2 (dua) bulan, 30 Mei - 22 Juli 2009.

3.2. Rancangan Penelitian

Penelitian ini dilakukan dengan rancangan eksperimental dengan desain

Rancangan Acak Lengkap (RAL). Mencit jantan (Mus musculus, L) strain DD

Webster dewasa, sebanyak 25 ekor, dengan menggunakan rumus Frederer (Frederer,

1963) yaitu: (t-1) (n-1) ≥ 15

Di mana : t = jumlah perlakuan

n = jumlah ulangan

yang dibagi dalam 5 kelompok perlakuan, yaitu 2 kelompok kontrol (kelompok

kontrol pertama diberi aquadest selama 30 hari dan kelompok kontrol kedua

diberi MSG selama 15 hari pertama dan 15 hari berikutnya pemberian MSG

dihentikan dan diganti dengan pemberian aquadest dan 3 kelompok perlakuan

(kelompok perlakuan pertama diberi MSG selama 30 hari, kelompok perlakuan

kedua diberi MSG selama 15 hari pertama dan 15 hari berikutnya pemberian

MSG dihentikan dan diganti dengan vitamin C dan kelompok perlakuan ketiga


diberi MSG selama 15 hari pertama dan 15 hari berikutnya ditambah dengan

pemberian vitamin C), masing-masing terdiri atas 5 mencit jantan. Mencit

ditempatkan ke dalam kelompok secara random.

3.3. Bahan dan Alat Penelitian

3.3.1. Bahan Penelitian

Bahan biologis. Bahan biologis yang akan digunakan dalam penelitian ini

adalah mencit jantan (Mus musculus, L) strain DD Webster dewasa. Mencit jantan

dewasa merupakan hasil perbanyakan hewan yang diperoleh dari Universitas Gajah

Mada Yogyakarta, sebanyak 25 ekor mencit jantan dipilih dari hasil perbanyakan

untuk keperluan penelitian. Sebelum dilakukan perlakuan, 25 ekor mencit jantan

dewasa tersebut terlebih dahulu dilakukan uji fertilitas yaitu dengan cara

mengawinkan masing-masing mencit jantan dewasa dengan satu mencit betina

dewasa dan jika terjadi pembuahan yang ditandai dengan buntingnya mencit betina

dewasa tersebut maka mencit jantan dewasa yang membuahinya dianggap fertil.

Bahan Kimia

a. Larutan fiksatif Bouin.

b. Alkohol 70%,80%,90%,96% dan alkohol absolut.

c. Parafin.

d. Hematoxylin_Eosin (H-E).


3.3.2. Alat-alat

Alat utama yang digunakan dalam penelitian antara lain: jarum oval (Gavage),

spuit 1 ml, bak bedah dan dissecting set, gelas arloji, cawan petri, batang pengaduk,

kamar hitung Neubauer, mikroskop cahaya, objek glass, mikrotom, oven.

3.4. Variabel Penelitian

3.4.1. Variabel Independen

1. Monosodium Glutamate.

2. Vitamin C.

3.4.2. Variabel Dependen

1. Jumlah sel leydig.

2. Jumlah sperma.

3.5. Pelaksanaan Penelitian dan Pengamatan

3.5.1. Pemeliharaan Hewan Percobaan

Mencit ditempatkan di dalam kandang yang terbuat dari bahan plastik (ukuran

30x20x10 cm) yang ditutup dengan kawat kasa. Dasar kandang dilapisi dengan

sekam padi setebal 0,5-1 cm dan diganti setiap tiga hari. Cahaya ruangan dikontrol

persis 12 jam terang (pukul 06.00 sampai dengan pukul 18.00) dan 12 jam gelap

(pukul 18.00 sampai dengan pukul 06.00), sedangkan suhu dan kelembaban ruangan

dibiarkan berada pada kisaran alamiah. Pakan (pelet komersial) dan minum (air

PAM) disuplai setiap hari.


3.5.2. Pemberian Perlakuan

Pemberian dosis MSG terlebih dahulu dilarutkan dalam aquades sebanyak

0,5ml. Aquades yang diberikan pada kelompok kontrol sebanyak 0,5 ml.

1. Kelompok 1 (P1) = Kelompok kontrol pertama terdiri 5 ekor mencit dewasa

jantan yang diberi aquadest selama 30 hari.

2. Kelompok 2 (P2) = Kelompok kontrol kedua terdiri dari 5 ekor mencit dewasa

jantan yang diberi MSG 4 mg/g berat badan secara intraperitoneal setiap hari

selama 15 hari pertama dan 15 hari berikutnya pemberian MSG dihentikan

dan diganti dengan pemberian aquadest.

3. Kelompok 3 (P3) = Kelompok perlakuan pertama terdiri dari 5 ekor mencit

dewasa yang diberi MSG 4 mg/g berat badan secara intraperitoneal setiap hari

selama 30 hari.

4. Kelompok 4 (P4) = Kelompok perlakuan kedua terdiri dari 5 ekor mencit

dewasa yang diberi MSG 4 mg/g berat badan secara intraperitoneal setiap hari

selama 15 hari pertama dan 15 hari berikutnya pemberian MSG dihentikan

dan diganti dengan pemberian vitamin C 0,2 mg/g berat badan secara oral

setiap hari.

5. Kelompok 5 (P5) = Kelompok perlakuan ketiga terdiri dari 5 ekor mencit

yang diberi MSG 4 mg/g berat badan selama 15 hari pertama dan 15 hari

berikutnya MSG tetap diberikan dan ditambah dengan pemberian vitamin C

0,2 mg/g berat badan secara oral setiap hari.


Mencit ditempatkan ke dalam kelompok secara random.

Tabel 3.1. Desain Perlakuan

3.5.3. Prosedur Pemeriksaan dan Pengamatan

Setelah perlakuan selama 30 hari, masing-masing hewan percobaan

dikorbankan dengan cara dislokasi leher, selanjutnya dibedah.

1. Jumlah sel leydig

Cara Kerja

Pembuatan sediaan histologis testis

Pembuatan sediaan histologis menurut Suntoro, S.H, (1983) dengan metode

parafin adalah: fiksasi, pencucian, dehidrasi, penjernihan, infiltrasi parafin,

penanaman, pengirisan, penempelan, deparafinasi, pewarnaan, penutupan serta

pemberian label.


Fiksasi

Organ testis yang telah dipotong-potong kemudian dimasukkan kedalam

larutan fiksatif Bouin selama 2-10 jam.

Pencucian

Setelah proses fiksasi dilakukan pencucian dengan alkohol 70%.

Dehidrasi

Dilakukan secara bertahap, dengan alkohol 70% selama 10 menit, alkohol

80%,90%,96%, masing-masing selama 60 menit, kemudian dengan alkohol absolut

selama 30 menit.

Penjernihan

Dilakukan segera setelah proses dehidrasi dengan menggunakan toluol murni.

Infiltrasi Parafin

Proses infiltarsi parafin dilakukan di dalam oven dengan suhu 560C. Organ

testis dimasukkan kedalam campuran toluol-parafin denagn perbandingan 1:1 selama

30 menit. Kemudian berturut dimasukkan kedalam:

Parafin Murni I selama 60 menit

Parafin Murni II selama 60 menit

Parafin Murni III selama 60 menit

Penanaman

Sediaan dari Parafin murni III dimasukkan kedalam kotak kertas kecil sebagai

cetakan yang telah berisi parafin cair, dan dibiarkan sampai parafin mengeras.


Pengirisan

Blok parafin testis yang telah mengeras ditempelkan pada holder kayu sampai

melekat erat, kemudian dipasangkan pada mikrotom. Pengirisan dilakukan dengan

ketebalan 6ìm.

Penempelan

Pada gelas benda diolesi dengan larutan albumin mayer dan ditetesi dengan

aquadest. Kemudian beberapa pipa parafin diletakkan di permukaan akuades pada

gelas benda dan dibiarkan beberapa saat, kemudian gelas benda dipindahkan ke meja

pemanas hingga kering.

Pewarnaan

Pewarnaan dengan hematoxylin_Eosin (H-E) melalui tahapan

a. Preparat dideparafinasi dalam xylol sampai bebas parafin.

b. Dimasukkan dalam alkohol 96%, 90%, 80%, 70%, 50%, 30%, akuades.

c. Dimasukkan dalam larutan hematoxylin Erlich selam 1 menit.

d. Dicuci dengan air mengalir, dicelupkan kedalam akuades, alkohol 30%, 50%,

70%.

e. Kemudian dimasukkan kedalam larutan Eosin 0,5% selama 1 menit.

f. Kemudian dimasukkan kedalam alkohol 70%, 80%, 90% dan alkohol absolut.

g. Selanjutnya dimasukkan kedalam xylol.

Penutupan

Preparat ditutup dengan gelas penutup setelah ditetesi dengan canada balsem

terlebih dahulu, lalu diberi label.


Penghitungan Jumlah Sel Leydig

Jumlah sel Leydig dihitung pada semua lapangan pandang, kecuali pada

sediaan yang tubulus seminiferusnya terpotong lebih dari setengah. Tiap mencit

dihitung jumlah sel Leydignya pada tiga (3) preparat yang kemudian diambil rata-rata

dari ketiga preparat tersebut.

2. Penghitungan jumlah sperma.

Cara Kerja

Prosedur pengambilan sekresi cauda epididimis

Organ testis beserta epididimis diambil dan diletakkan kedalam cawan petri

yang berisi NaCl 0,9%. Di bawah mikroskop bedah dengan pembesaran 400 kali.

Cauda epididimis dipisahkan dengan cara memotong bagian proximal epididimis dan

bagian distal vas deferns. Selanjutnya cauda epididimis dimasukkan kedalam gelas

arloji yang berisi 1 ml NaCl 0,9% kemudian proximal cauda epididimis dipotong

sedikit dengan gunting lalu kauda ditekan dengan perlahan hingga sekresi/cairan

epididimis keluar dan tersuspensi dengan NaCl 0,9%.

Pengamatan Jumlah Sperma

Pengamatan jumlah sperma dilakukan menurut Soehadi dan Arsyad (1983).

Suspensi spermatozoa yang telah diperoleh terlebih dahulu dihomogenkan.

Selanjutnya diambil sebanyak 10 ìl, sampel dimasukkan ke dalam kotak kamar

hitung Improved Neubauer serta ditutup dengan kaca penutup. Dilihat di bawah

mikroskop cahaya dengan pembesaran 400 kali. Hasil perhitungan dimasukkan

kedalam rumus


Jumlah Sperma = N/2 x 105 spermatozoa/ml suspensi

N : jumlah sperma yang dihitung dalam kotak

Gambar 3.1. Kamar Hitung Improved Neubauer (Zaneveld et al, 1986)

3.6. Analisis Data dan Pengujian Hipotesis

Semua data dipresentasikan dalam bentuk rata-rata ± simpangan baku (rata-

rata ± SD). Dilakukan uji normalitas dan homogenitas data SPSS 15.0. Dari hasil

penelitian didapatkan data dengan distribusi normal dan homogen, sehingga

dilakukan uji parametrik Anova.


BAB 4

HASIL DAN PEMBAHASAN

4.1. Deskripsi Hasil Penelitian

Penelitian dimulai dari tanggal 30 Mei - 22 Juli 2009, hal ini lebih dari 30 hari

dikarenakan adanya beberapa mencit yang mati sewaktu penelitian, dan ini

mengganggu sampel, sehingga perlu diganti.

Selama pemeliharaan, berat badan dan aktivitas setiap hewan coba terus

diperhatikan. Untuk membedakan setiap mencit diberi tanda spidol di badan mencit.

Pemberian MSG diberikan secara intraperitoneal, di mana dosisnya

ditentukan sesudah berat badannya ditimbang lebih dulu setiap hari. Pemberian

Vitamin C secara oral juga dilakukan setelah penimbangan berat badan dilakukan

terlebih dahulu.

4.1.1. Pengambilan Organ

Pengambilan organ testis dan caudal epididimis dilakukan setelah dilakukan

perlakuan selama 30 hari, dan hari ke-31 baru organ tersebut diambil dengan

melakukan dislokasi dan laparotomi. Organ caudal epididimis dimasukkan ke piring

petri, testis diambil dan dimasukkan ke tabung berisi larutan fiksatif.


4.2. Hasil Penelitian

4.2.1. Berat Badan

Berdasarkan data yang didapat dari hasil penimbangan berat badan mencit

pada saat awal penelitian dan waktu ekskusi didapat berat badan mencit sebagai

berikut.

Gambar 4.1. Berat Badan Mencit Awal dan Akhir

4.2.2. Jumlah Sel Sperma

Setelah dilakukan penghitungan terhadap jumlah sperma maka jumlah sperma

dapat dilihat pada tabel di bawah ini:


Tabel 4.1. Jumlah Sperma Mencit

Jumlah Sperma (X106)/ml Suspensi Mencit P1 P2 P3 P4 P5

1 10.3 8.05 7.45 4.3 3.95 2 5.75 3.35 7.4 7.35 5.75 3 5.8 3.05 6.9 3.9 4.4 4 8.85 6.5 8.3 7.6 5.7 5 8.7 8 12.6 9.7 4.25

Rata-rata 7.88 5.79 8.53 6.57 4.81

4.2.3. Jumlah Sel Leydig

Jumlah sel Leydig pada kelompok kontrol maupun kelompok perlakuan

menunjukkan adanya perbedaan yang bermakna seperti pada tabel di bawah.

Tabel 4.2. Jumlah Sel Leydig

Kelompok N Jumlah Sel Leydig × ± SD P1 5 2177.4 ± 126.692a P2 5 2068.4 ± 42.524a P3 5 1787.4 ± 131.922b P4 5 2030 ± 106.13a P5 5 1779.4 ± 136.91b

Keterangan: Huruf-huruf yang sama pada kolom yang sama pada masing-masing perlakuan berbeda tidak signifikan pada taraf nyata 5% (huruf kecil).


Di bawah ini merupakan gambaran sediaan histologi dari testis mencit.

Gambar 4.2. Sel Leydig (Panah) dengan Perbesaran Mikroskop 400x

4.3. Pembahasan

Keamanan penggunaan MSG dalam makanan masih menjadi kontroversi,

pada penelitian yang sudah dilakukan pemberian MSG memberikan pengaruh

terhadap fungsi dari sistim reproduksi pria (Onakewhor J,U,E, 1998). MSG

mempengaruhi sistim reproduksi pria melalui pembentukan ROS. Terbentuknya ROS

dalam penelitian ini diimbangi dengan pemberian Vitamin C yang merupakan

antioksidan. Vitamin C merupakan antioksidan yang hidrofilik dan berfungsi

menangkap radikal bebas dan melindungi biomembran dari radikal bebas tersebut

(Alturnas, I, 2002).


Dari hasil penelitian didapat bahwa pemberian MSG 4mg/grBB dan Vitamin

C, memberikan hasil yang bermakna terhadap jumlah sel Leydig (Tabel 4.2), tetapi

pada jumlah sel sperma memberikan hasil yang sebaliknya atau tidak bermakna.

Sperma yang dihasilkan di testis dalam perkembangannya sangat dipengaruhi oleh

kadar testosteron yang dihasilkan oleh sel Leydig (testosteron intratestikular). Sel

Leydig sendiri dalam menghasilkan testosteron dipengaruhi oleh LH. Proliferasi sel

leydig dipengaruhi oleh beberapa hormon yaitu: hormon pertumbuhan, hormon

thyroid, LH, steroids, hormon anti-Mullerian, plateled-derived growth faktor-A,

TGFá/â, IGF-I dan sitokin (Franca, 2006, Mendis-Handagama, 2001). Pada

penelitian yang dilakukan Franca (2006) dengan memberikan MSG 4mgkgrBB

menurunkan kadar FSH, LH, dan thyroid (Franca, 2006). Penurunan jumlah sel

leydig akan mempengaruhi kadar testosteron yang dihasilkan sehingga dapat

mempengaruhi proses spermatogensis. Testosteron dalam tubuh terbagi dua yaitu

testosteron plasma/serum dan testosteron intratestikular, dan yang mempengaruhi

spermatogenesis adalah testosteron intratesticular. Kadar kedua testosteron berbeda,

dimana kadar testosteron intratesticular lebih tinggi dibanding kadar testosteron

serum. Kadar testosteron intratsticular 3-kali lebih tinggi dibanding dengan kadar

testosteron serum (Jarow.J.P, 2005). Dalam penelitian ini kadar testosteron

intratesticular tidak dilakukan pengukurannya. Kemungkinan penurunan jumlah sel

leydig dalam hal ini belum menurunkan kadar testosteron intratestikular sehingga

tidak berpengaruh terhadap spermatogenesis, akhirnya jumlah sperma tidak


berpengaruh atau tidak ada perbedaan yang bermakna antara kelompok kontrol dan

perlakuan (p>0,05).

Pemberian Vitamin C memberikan hasil yang baik dan mempengaruhi jumlah

sel Leydig, yang bekerja sebagai antioksidan terhadap radikal bebas yang dihasilkan

dari pemberian MSG. Sesuai dengan hasil penelitian terdahulu bahwa pemberian

vitamin C dapat meningkatkan jumlah sel Leydig (Mishra, M, 2004).


BAB 5

KESIMPULAN DAN SARAN

5.1. Kesimpulan

Pada penelitian ini diperoleh kesimpulan sebagai berikut:

1. Pemberian MSG 4mg/gr bb IV, tidak memberikan hasil yang bermakna

terhadap jumlah sperma, tetapi memberikan hasil yang bermakna terhadap

jumlah sel Leydig.

2. Pemberian Vitamin C 0,2 mg/gr bb, tidak memberikan hasil yang bermakna

terhadap jumlah sperma, tetapi memberikan hasil yang bermakna terhadap

jumlah sel Leydig.

5.2. Saran

1. Sebaiknya dilakukan penelitian lebih lanjut dengan dosis yang lebih tinggi

dan pemberian Vitamin C dengan waktu yang berbeda.

2. Sebaiknya dilakukan penelitian lanjutan terhadap kadar LH, testosteron

intratesticular dan kadar testosteron serum.


DAFTAR PUSTAKA Agarwal, A., Prabakaran, S. A. & Said, T. M. (2005), Prevention of oxidative stress

injury to sperm. J Androl, 26, 654-60. Ahluwalia, P., Tewari, K. & Choudhary, P. (1996), Studies on the effects of

monosodium glutamate (MSG) on oxidative stress in erythrocytes of adult male mice. Toxicol Lett, 84, 161-5.

Alturnas, I., Deliba, N., Demieri, M., Deliba., Demiric, M., Klinc, I., Tamer, N.

(2002), The effects of methidathion on lipid peroxidation and some liver enzymes:role of vitamin e and c.Arch.Toxicol, 76,470-3.

Lewis, D., Stegink, L., Filler Jr, l George, Baker (1973), Monosodium glutamate

metabolism in the neonatal pig : effect of load plasma brain, muscle and spinal fluid free amino acid levels. J.nutr.103:1138-1145.

FDA (1995) FDA and monosodium gtamate (MSG).[cited 2008 july 11] avaiable at

http://www.fda.gov/opacom/backgrounders/msg.html. Fauzi, T.M (2008), Pengaruh pemberian timbal asetat dan vitamin c terhadap

peroksidai lipid dan kualitas spermatozoa di dalam sekresi epididimis mencit jantan (mus musculus L) starin DD. Biomedic. Medan. Sumatera Utara.

Franca, L. R., Suescun, M. O., Miranda, J. R., Giovambattista, A., Perello, M.,

Spinedi, E. & Calandra, R. S. (2006), Testis structure and function in a nongenetic hyperadipose rat model at prepubertal and adult ages. Endocrinology, 147, 1556-63.

Federer, W. (1963), Experimental design, theory and application, New York, Mac

Millan. Garattini, S. (2000), Glutamic Acid, Twenty Years Later. Journal of Nutrition, 130,

901S�909S. Geha, R., Beiser, A., Ren, C., Patterson, R., Greenberger, P., Grammer, L., Ditto, A.,

Harris, K., Saughnessy, M., Yarnold, P., Corrent, J. & Saxon, A. (2000) Review of Alleged Reaction to Monosodium Glutamate and Outcome of a Multicenter Double-Blind Placebo-Controlled Study. The Journal of Nutrition, 130, 1058S�1062S.


http://www.fda.gov/opacom/backgrounders/msg.html.

Guyton, A, C., Hall, J, E (2008), Fungsi reproduksi hormonal pria.in:Fisiologi kedokteran alih bahasa Irawati et all.ed 11. Jakarta; EGC.p.1055.

Halpern, B. (2002), What� in a name ? Are MSG and umami the same ? Chemical

Sense. Jarow, J, P., Chen, H., Rosner, W., trentacoste, S., Zirkin, B,R. (2001), Assesment of

androgen environment within the human testis:minimally invasive method to obtain intratesticular fluid. Journal of Andrology,22,4,640-5.

Lamperti, A. A. & Pickard, G. E. (1984), Immunohistochemical localization of

luteinizing hormone-releasing hormone (LHRH) in the hypothalamus of adult female hamsters treated neonatally with monosodium glutamate or hypertonic saline. Anat Rec, 209, 131-41.

Leeson, R, C., Lesoon, S, T., Paparo, A, A (1996), Sistim reproduksi pria.in: buku

ajar histologi alih bahasa Siswojo, K., Tambojang, J., Wonodirekso, S at all. Jakarta: EGC; p.523.

Luck, R, M., Jeyaseelan, J., Scholes, A, R (1995), Ascorbic acid and fertility. Biol

Repro, 52,262-66. Mendis-Handagama, S, M., Ariyaratne, H, B. (2001), Diffrentistion of the adult

Leydig cell population in the postnatal testis. Biol Reprod.63,660-71. Miskowiak, B., Limanowski, A. & Partyka, M. (1993), Effect of perinatal

administration of monosodium glutamate (MSG) on the reproductive system of the male rat. Endocrynol Pol, 44, 497-505.

Mishra, M., Acharya, U, R.(2004), Protective action of vitamins on the

spermatogenesis in lead-treated swiss mice. Journal Of Trace Elements in Medicine and Biology,18,173-8

Nalbandov A V. (1990), Fisiologi reproduksi pada mamalia dan unggas. 3th.

Universitas Indonesia, Jakarta. pp41-53. Nayanatara, A., Vinodini, N., Damodar, G., Ahamed, B., Ramaswamy, C.,

Shabarinath & Bath, R. (2008), Role of ascorbic acid in monosodium glutamate mediated effect on testicular weight, sperm morphology and sperm count, in rat testis. Journal of Chinese Clinical Medicine, 3.

Naidu, K. (2003), Vitamin C in human health and disease is still a mystery ? .

Nutrition Journal, 1-10.


Onakewhor, J, U, E., Oforofuo, I, A, O, Singh, S, P. (1998), Chronic administration of monosodium glutamate induces oligozoospermia and glycogen accumulation in wister rat testes. Africa j reprod Health, 2,190-7.

Pizzi, W. J., Barnhart, J. E. & Fanslow, D. J. (1977), Monosodium glutamate

administration to the newborn reduces reproductive ability in female and male mice. Science, 196, 452-4.

Prawirihardjono, W., Dwiprahasto, I., Astuti, I., Hadiwandowo, S., Kristin, E.,

Muhammad, M. & Kelly, M. (2000), The Administration to Indonesians of Monosodium L-Glutamate in Indonesian Foods: An Assessment of Adverse Reactions in a Randomized Double-Blind, Crossover, Placebo-Controlled Study. Journal of Nutrition, 130, 1074S�1076S.

Rugh R, (1967), The mouse its repsoduction and development. Brgess Publising

Company.pp.1-23. Russell L.D., ettlin R.A., Hikim, A, P, S., legg E, D., Histological and

histopathological evaluation of the testis. Cache river press.1-40. Schwartz,G, R. ( 1999), In bad taste the msg symptom complex. Health press. Santa

Fe, New Mexico.p.5. Soehadi, K., Arsyad, K. M. (1983), Analisis sperma. Airlangga University Press.

Surabaya. Suntoro,S.H. (1983), Metode pewarnaan in Histologi dan histokimia. Bhratara Karya

Aksara, Jakarta. 48. Styrna J. (2008), Genetic control of gamete quality in the mouse-atribute to halina

krazanwska. Int.J.Dev.Biol.52:195-9. Vinodini, N., Nayanatara, A., Damodara, G., Ahamed, B., Ramaswamy, C.,

Shabarinath & Bhat, R. (2008), Effect of monosodium glutamat-induced oxidative damage on rat testis. Journal of Chinese Clinical Medicine, 3, 370-373.

Yi Li., Schellhorn H, E. (2007), New developments and novel therapeutic

perspectives for vitamin c.J.nutr,137:2171-84. Yousef, M. I., Addallah, G. A. & Kamel, K. I. (2003), Effect of ascorbic acid and

Vitamin E supplementation on semen quality and biochemical parameters of male rabbits. Anim Reprod Sci, 76, 99-111.


Zaneveld, Polakoski. (1977), Techniques of human andrology: 160. Dalam : Zaneveld LJD, Fulgham DL (1986). Short course : Male reproduction/Andrology and non-hormonal contraception. Chicago, IL: 19.


Lampiran 1

Paired Samples Statistics

37.6140 25 4.11176 .82235

38.1720 25 2.84364 .56873

BB_awal

BB_akhir

Pair1

Mean N Std. DeviationStd. Error

Mean

Paired Samples Correlations

25 .591 .002BB_awal & BB_akhirPair 1N Correlation Sig.

Paired Samples Test

-.55800 3.34302 .66860 -1.93793 .82193 -.835 24 .412BB_awal - BB_akhirPair 1Mean Std. Deviation

Std. ErrorMean Lower Upper

95% ConfidenceInterval of the

Difference

Paired Differences

t df Sig. (2-tailed)

Tests of Normality

.258 5 .200* .866 5 .249

.241 5 .200* .825 5 .127

.339 5 .061 .739 5 .023

.226 5 .200* .911 5 .474

.285 5 .200* .825 5 .128

KelompokP0

P1

P2

P3

P4

SpermaStatistic df Sig. Statistic df Sig.

Kolmogorov-Smirnova Shapiro-Wilk

This is a lower bound of the true significance.*.

Lilliefors Significance Correctiona.


ANOVA

Sperma

4.6E+013 4 1.145E+013 2.582 .069

8.9E+013 20 4.433E+012

1.3E+014 24

Between Groups

Within Groups

Total

Sum ofSquares df Mean Square F Sig.

Tests of Normality

.191 5 .200* .951 5 .746

.343 5 .055 .822 5 .120

.201 5 .200* .937 5 .645

.212 5 .200* .930 5 .598

.186 5 .200* .943 5 .685

kelompokP1

P2

P3

P4

P5

sel_leydigStatistic df Sig. Statistic df Sig.

Kolmogorov-Smirnova Shapiro-Wilk

This is a lower bound of the true significance.*.

Lilliefors Significance Correctiona.

ANOVA

sel_leydig

629787.4 4 157446.860 12.061 .000

261080.8 20 13054.040

890868.2 24

Between Groups

Within Groups

Total

Sum ofSquares df Mean Square F Sig.


tikus jantan

Documents