panduan praktikum ka 2014_share

5/19/2018 Panduan Praktikum KA 2014_share

1/39

PANDUAN PRAKTIKUM

KIMIA ANALISIS

Oleh:

Tim Praktikum Kimia Analisis


2/39

KESELAMATAN KERJA

DI DALAM LABORATORIUM

Bekerja dalam laboratorium kimia yang menyebabkan kontak langsung

dengan bahan-bahan kimia, mengandung risiko berupa bahaya terhadap

keselamatan kerja. Pada umumnya risiko bahaya akan menjadi suatu kenyataan

kecelaakaan dalam bekerja di laboratorium sebagai akibat sikap dan tingkah laku

para pekerja atau praktikan. Misalnya: lalai atau enggan memakai alat pelindung

diri, salah mengambil reagen dalam praktikum dll. Oleh karena itu untuk

membangun dan mengelola kondisi keselamatan kerja di dalam laboratorium

dibutuhkan karyawan yang sering disebut sebagai laboran.

Karyawan yang bekerja mengelola praktikum atau laboranmemerlikan

pelatihan atau kursus untuk menambah pengetahuan tentang cara bekerja dalam

laboratorium berikut pengetahuan tentang sifat masing-masing bahan kimia.

Disamping ituseorang laboran harus tahu tentang tindakan yang harus dilakukan bila

terjadi bahaya atau kecelakaan.

Pengelolaan suatu praktikum yang terkait dengan matakuliah dilakukan

koordinasi antara karyawan/laboran, dosen dan asisten praktikum dengan seorang

dosen sebagai coordinator. Kerjasam yang baik dari setiap individu yang bekerja di

laboratorium adalah hal yang sangat penting demi keselamatan tercapainya tujuansuatu mata kuliah (praktikum).

S b b b h d l l b t i ki i


3/39

S b b b h d l l b t i ki i

1. Bahan Kimia Beracun (Toxic Subtances), pada dasarnya semua bahan kimia

adalah beracun tetapi hal ini sangat bergantung pada jumlah zat tersebut yang

masuk ke dalam tubuh. Demikian halnya dengan obat, baru bermanfaat bagi

tubuh pada dosis tertentu dan akan menjadi berbahaya apabila diberikan pada

dosis berlebih. Contohnya: benzene, fenol,asam sianida, dioksan, gas klor, gas

SO2, gas CO, tetra klor, dll.

2. Bahan Kimia Korosif/Iritant (Corrosive Subtance), yakni bahan/zat yang dapat

menimbulkan kerusakan berupa rangsangan/iritasi dan peradangan pada kulit,

mata dan saluran pernapasan. Contohnya: hamper semua asam dan basa,

petroleum, karbondisulfida, gas klor, ozon dll.

3. Bahan Kimia Mudah Terbakar (Flammable Subtance), adalah bahan yang mudah

terbakar dengan oksigen, tetapi bila suhu tidak cukup maka proses kebakaran

tidak terjadi. Demikian pula bila ada bahan dan panas, tetapi oksigen tidak cukup

maka kebakaran juga tidak terjadi. Masalahnya dalam laaboratorium ada banyak

oksigen dan tidak dapat ditiadakan sehingga harus diupayakan bekerja dengan

hati-hati untuk menghindarkan terjadinya kebakaran. Contohnya; hidrida logam,

eter, alcohol, benzene, aseton, gas hydrogen, asetilen dll.

4. Bahan Kimia Mudah Meledak/Eksplosif (Explosive Subtances), bahan kimia reaktif

atau tidak stabil dapat bersifat mudah meledak atau eksplosif. Pada

umumnyapeledakan terjadi karena adanya reaksi kimia yang berlangsung sangatcepat dengan menghasilkan panas dan gas dalam jumlah relative besar. Faktor-

faktor yang sering menyebabkan peledakan atau eksplosif antara lain: suhu

i b t t k k l b li t ik dll C t h


4/39

tubuh melalui saluran pernapasan atau lewat kulit. Sedangkan masuknya bahan

kimia melalui mulut amat jarang terjadi.

Keracunan melalui pernapasan

Bahan/zat kimia yang mempunyai uap berbahaya harus diletakkan pada

tempat yang tertutup di almari asam karena uapnya bisa terhirup orang yang ada

dalam laboratorium. Gas-gas seperti gas klor, asam klorida, sulfur dioksida,

formaldehid dan ammonia adalah gas yang mempunyai bau spesifik dan dapat

menyebabkan iritasi pada saluran pernapasan. Demikian pula uap kloroform,

benzene, hidrokarbon terhalogenasi, dan karbon disulfide dapat tercium baunya.

Sebaliknya gas-gas karbon monoksida, metil klorida dan air raksa sangat berbahaya

karena tidak tercium baunya. Gas karbon monoksida, hidrogen sulfide dan hidrogen

sianida dapat menghilangkan kesadaran dan mematikan.

Pertolongan pertama pada keracunan gas-gas seperti di atas, yakni segera

memindahkan korban ke tempat yang mempunyai udara segar. Apabila keracunan

terjadi pada ruangan tertutup atau oleh gas beracun dengan konsentrasi tinggi,

maka penolong hendaknya memakai pelindung pernapasan yang dilengkapi dengan

oksigen. Harus dihindarkan pemberian bahan penetral atau obat melalui mulut

terlebih pada korban yang tidak sadar. Apabila keracuna dirasa berat maka segera

korban dibawa ke dokter.

Keracunan melalui kulit

B h / t ki i t t t i if t d t l tk l k ti


5/39

Keracunan melalui mulut (Tertelan)

Keracunan melalui mulut atau tertelan jarang sekali terjadi, kecuali

kontaminasi makanan atau minuman dan kesalahan dalam pengambilan bahan/zat

kimia. Untuk mencegah terjadinya keracunan melalui mulut maka perlu dijaga

kebersihan ruang makan/minum di laboratorium dan hati-hati dalam penanganan

bahan/zat beracun.

Pertolongan pertama yang dilakukan apabila korban muntah-munttah adalah

memberi banyak minum dengan air hangta. Hal ini dimaksudkan agar korban banyak

muntah dan mengencerkan racun dalam perut. Bila korban tidak muntah, maka perlu

diberikan minum segelas larutan air garam (dua sendok teh garam dapur dalam satu

gelas air) agar yang bersangkutan bias muntah. Jika korban masih belum bisa

muntah, maka dimasukkan jari atau kertas ke dalam tenggorokan agar bisa muntah.

Hal ini dimaksudkan untuk mengambil bahan/zat beracun secepat mungkin sebelum

terserap oleh usus. Semua usaha untuk memuntahkan korban tidak boleh dilakukan

bila yang tertelan adalah pelarut petroleum atau hidrokarbon terhalogenasi. Bila

korban pingsan tidak sadarkan diri, maka pemberian sesuatu melalui mulut tidak

diperkenankan dan pengobatan selanjutnya diberikan oleh dokter.


6/39

PERATURAN TATA TERTIB

1. Setiap peserta praktikum harus hadir tepat pada waktu yang telah ditentukan,

keterlambatan 10 menit dari waktu tersebut dapat mengakibatkan ditolaknya

peserta untuk mengikuti praktikum pada hari yang bersangkutan.

2. Untuk mengurangi kemungkinan terjadinya kecelakaan akibat dari bahan kimia

selama mengikuti praktikum, peserta diwajibkan mengenakan alat perlindungan

diri (APD) yang sesuai. APD yang wajib digunakan adalah: masker, sarung

tangan, laboratory google, jas laboratorium lengan panjang putih

bersih, sepatu tertutup, celana panjang hingga mata kaki.

3. Setiap peserta praktikum wajibmengenakan tanda pengenal (callcard) yang

ditulis 3 digit terakhir dari NIM peserta menggunakan spidol hitam tebal,callcard

digunakan selama bekerja di laboratorium.

4. Setiap peserta praktikum bertanggung jawab pada ketertiban dan kebersihan

laboratorium. Tiap sub kelompok praktikum hanya boleh meletakkan 1

logbook dan 1 panduan kerja yang akan dilakukan pada hari itu saja di

meja kerja. Adanya terlalu banyak kertas/buku berserakan di meja kerja tidak

diperbolehkan. Asisten berhak menertibkan dan mengurangi poin kedisiplinan

praktikan jika terdapat pelanggaran terkait poin ini.

5. Selama mengikuti praktikum, peserta praktikum wajib berlaku sopan, tidak

bercanda / senda gurau, tidak merokok / makan / minum dalam laboratorium,

dan tidak melakukan hal-hal yang dapat mengganggu kegiatan praktikum.

6 S ti t ktik h h tik t t k ki


7/39

DESAIN PRAKTIKUM DAN RESPONSI

1. Praktikum dilaksanakan sesuai jadwal yang telah ditetapkan dengan durasi

waktu 6 x 50 menit kecuali minggu pertama hingga minggu ketiga 3 x 50 menit

(bergantian dengan praktikum FF) dengan kegiatan sebagai berikut:

minggu pertama dilaksanakan asistensi

minggu kedua dilakukan latihan uji kualitatif

minggu ketiga dilakukan r e s p o n s i k u a l i t a t i f (individu)

2. Pada minggu keempat dan seterusnya hingga minggu ketujuh, waktu praktikum

penuh 6 x 50 menit (dua minggu sekali; selang-seling dengan praktikum FF)

dengan acara uji kuantitatif titrimetri dan spektrofotometri masing-masing dua

kali praktikum.

3. Pada minggu kedelapan dilaksanakan responsi kuantitatif kelompokdengan

materi titrimetri dan spektrofotometri. Responsi ini dilaksanakan secara

lisan/wawancara dengan dosen jaga tiap kelompok.

4. Segala bentuk pembagian kelompok latihan maupun responsi diatur oleh asisten

dan/atau dosen, praktikan wajib mematuhi pembagian tersebut.


8/39

Tata Cara Penilaian Format Laporan

a.Nilai Praktikum (Skor Maksimum 100) a. Laporan Sementara

1.Disiplin 10 1. Judul

2.Pre-test 10 2. Tujuan

3.Post-test/Diskusi 10 3. Dasar Teori

4.Laporan 20 4. Alat dan Bahan

5.Rangkuman 10 5. Prosedur Kerja

6.Responsi I 20 6. Daftar Pustaka

7.Responsi II 20

b. Laporan Resmi

1. Judul

2. Tujuan

3. Dasar Teoric. Skor nilai akhir 4. Alat dan Bahan

76,00 A 5. Prosedur Kerja

66,00 s.d. 75,99 B 6. Data Pengamatan

56,00 s.d. 65,99 C 7. Pembahasan

50,01 s.d. 55,99 D 8. Kesimpulan

50,00 E 9. Daftar Pustaka


9/39

ANALISIS KUALITATIF

Tujuan : Mahasiswa mampu menganalisis beberapa senyawa obat secara kualitatif.

Parasetamol

1. Zat ditambah 10 mL air, lalu ditambahkan 1 tetes FeCl3, terjadi warna biruviolet

2. Zat ditambah 1 mL NaOH 3N, dipanaskan, lalu setelah dingin ditambah 1 mL

asam sulfanilat dan beberapa tetes NaNO2terjadi warna merah.3. Zat ditambah 1 mL HCl, dipanaskan 3 menit, ditambahkan 10 mL air,

didinginkan. Kemudian ditambahkan 1 tetes kalium bikromat akan timbulwarna violet yang tidak berubah menjadi merah

4. Zat ditambah asam nitrat encer, amati warna yang terjadi drupple plate.

Sulfadiazin

1. Zat ditambah DAB HCl, terjadi warna kuning yang kemudian berubah menjadi

oranye.2. Zat ditambah pereaksi Parri, terjadi warna hijau ungu.

3. Zat ditambah Cu asetat dan aseton, terjadi warna violet kehitaman.

4. Sedikit zat dilarutkan ke dalam campuran air 10 mL dan NaOH 0,1N 1 mL,ditambahkan 0,5 mL CuSO4, terbentuk endapan hijau zaitun yang jika

dibiarkan berubah menjadi ungu kelabu.5. Sedikit zat dilarutkan ke dalam NaOH, ditambahkan HCl sampai netral

kemudian ditambahkan 0,5 mL CuSO4, amati endapan yang terjadi.

Isoniazid

1. Zat ditambah Cu asetat dan KCNS, terjadi warna hijau kekuningan.

2. Zat ditambah CuSO4terjadi warna biru yang lama kelamaan menjadi birumuda.

3. Zat ditambah AgNO3, terjadi endapan warna putih coklat.

4. Reaksi kristal dengan Dragendorf.


10/39

6. Zat ditambah NaOH dan FeSO4(cair), timbul warna violet hijau.

7. Zat ditambah AgNO3terbentuk endapan abu-abu.

Asam salisilat

1. Zat ditambah 10 mL air, lalu ditambahkan 1 tetes FeCl3, terjadi warna biru

violet2. Zat ditambah preaksi Folin-Ciocalteu menghasilkan warna biru.3. Reaksi kristal dengan aseton-air.


11/39

ASIDI ALKALIMETRI

A. Pendahuluan

Asidimetri merupakan penetapan kadar senyawa-senyawa yang bersifat basa

dengan menggunakan baku asam. Sebaliknya alkalimetri merupakan penetapan

kadar senyawa bersifat asam dengan menggunakan baku basa. Baik asidimetri

maupun alkalimetri merupakan metode analisis kuantitatif.

Untuk asidi-alkalimetri suatu asam didefinisikan sebagai suatu molekul atau

ion yang dapat memberikan proton (donor proton). Suatu basa didefinisikan sebagaisuatu molekul atau ion yang dapat mengikatproton (akseptor proton). Sebagai

contoh molekul asam adalah H2O, H2S, HCl, dan H2SO4; contoh kation asam adalah

H3O+ dan NH4+; contoh anion asam adalah HSO4-, HS-, dan H2PO4-. Sedangkan

contoh molekul basa kation adalah Ag(NH3)2+; contoh anion basa adalah OH-, SH-,

S-, dan SO4-.

Penetapan titik akhir titrasi dapat dilakukan dengan menggunakan beberapa

indikator sebagaimana ditunjukkan pada tabel berikut.

Indikator Trayek pHWarna

Asam BasaKuning metil 2,9 4,0 Merah Kuning

Biru bromfenol 3,0 4,6 Kuning Biru

Jingga metil 3,1 4,4 Jingga Kuning

Hijau bromkresol 3,8 5,4 Kuning Biru

Merah metil 4,2 6,3 Merah Kuning

Ungu bromkresol 5,2 6,8 Kuning Ungu

Biru bromtimol 6,1 7,6 Kuning Biru

Merah fenol 6,8 8,4 Kuning Merah

Merah kresol 7,2 8,8 Kuning Merah

Biru timol 8,0 9,6 Kuning Biru

Fenolftalin 8,2 10,0 Tak berwarna Merah

Timolftalin 9,3 10,5 Tak berwarna Biru

Petunjuk pemilihan indikator:

1. Gunakan 3 tetes larutan indikator kecuali dinyatakan lain


12/39

Pembuatan larutan metil jingga

Dilarutkan 20 mg natrium p-dimetilamino azobenzen sulfonat C14H14N3NaO3S kedalam 50 mL etanol 20%

Pembuatan fenolftalin

Dilarutkan 200 mg fenolftalin dalam 60 mL etanol 90%

Pembuatan gliserol netral LP

Ke dalam 50 mL gliserol ditambahkan 3 tetes fenoltalin kemudian ditambahkan

bertetes-tetes natrium hidroksida 0,1 N hingga larutan berwarna merah jambu

Pembuatan air bebas CO2

Sejumlah air dididihkan selama beberapa menit. Didinginkan pada tampat yang

terlindung dari cahaya.

Pembuatan merah fenol

Lebih kurang 50 mg merah fenol dilarutkan dalam campuran 2,85 mL NaOH 0,05 N

dan 5 mL etanol 90%, jika perlu dilakukan pemanasan. Setelah larut sempurna

ditambahkan etanol 90% secukupnya hingga 250 mL.

Pembuatan etanol netral

Ke dalam 15 mL etanol 95% ditambahkan 1 tetes merah fenol kemudian

ditambahkan bertetes-tetes naOH 0,1 N hingga larutan berwarna merah.

Pembuatan biru brom fenol

Dihangatkan 100 mg biru bromfenol dengan 3,0 mL NaOH 0,05 N dan 5,0 mL etanol

95%, setelah larut semua, tambahkan etanol 20% secukupnya hingga 250,0 mL.

C. Pembuatan dan pembakuan larutan baku asam klorida 0,1 N

Tujuan : mampu membuat dan membakukan larutan baku asam dari senyawa baku

sekunder yang berupa cairan


13/39

Perhitungan :

N HCl =2mg NaCO

BM NaCO mL HCl yang digunakan

D. Pembuatan dan pembakuan larutan baku basa

Tujuan : Mahasiswa mampu membuat dan membakukan larutan baku basa dari

senyawa baku sekunder yang berupa padatan

Alat dan bahan:

Buret 50 mL Kalium biftalat

Gelas ukur 100 mL Natrium hidroksida

Labu takar 1000 mL Gelas beker

Pembuatan natrium hidroksida 0,1 N

Sejumlah natrium hidroksida dilarutkan dengan air bebas CO2secukupnya hingga

tiap 1000 mL larutan mengandung 4,001 g asam klorida.

Pembakuan natrium hidroksida 0,1 N

Lebih kurang 400 mg kalium biftalat (yang sebelumnya telah dikeringkan) ditimbang

seksama (sudah disediakan). Dimasukkan ke dalam erlenmeyer, ditambah 75 mL air

bebas CO2, ditutup kemudian dikocok-kocok sampai larut. Selanjutnya larutan

tersebut dititrasi dengan larutan natrium hidroksida 0,1 N menggunakan indikator

fenolftalin hingga warna berubah menjadi merah. Tiap 1 mL NaOH 0,1 N setara

dengan 20,42 mg kalium biftalat.

Reaksi : KHC2H4O4+ NaOH KNaC2H4O4H2O

Perhitungan :

Omg kalium biftalat


14/39

HO

O

HO

NaOH

HO

O

NaO

H2O

Perhitungan

Kadar asam salisilat = mL NaOH N NaOH 13,81 100%mg bahan 0,1

2. Penetapan kadar aminofilin (teofilin etilendiamin sebagai etilendiamin)

Tujuan : Mahasiswa mampu menetapkan kadar bahan obat yang berupa garam

yang dapat ditetapkan dengan menetapkan salah satu penyusun garam.

Alat dan bahan:

Buret 50 mL HCl 0,1 N

Gelas ukur 50 mL Biru bromfenol

Erlenmeyer 100 200 mL

Cara penetapan kadar

Ditimbang seksama 500 mg sampel, dilarutkan dengan 30 mL air. Titrasi dilakukan

dengan asam klorida 0,1 N menggunakan indikator larutan bromfenol P, hingga

warna biru menjadi kuning. Tiap mL asam klorida setara dengan 3,005 mg

etilendiamin.

Reaksi


15/39

NITRIMETRI

A. Pendahuluan

Metode nitrimetri merupakan suatu metode analisis kuantitatif yang

didasarkan atas reaksi antara aminaaromatik primer dengan natrium nitrit dalam

suasana asam membentuk garam diazonium.

NH2

HNO2

HCl N H2O ClN

NaNO2 HCl HNO2 NaCl

Reaksi dilakukan pada temperatur kurang dari 15C karena pada temperatur

yang lebih tinggi garam diazonium akan terurai menjadi fenol dan nitrogen. Reaksi

diazotasi dapat dipercepat dengan menambahkan kalium bromida.

Titik akhir dapat ditunjukkan dengan menggunakan pasta kanji iodida atau

kertas kanji iodida sebagai indikator luar. Ketika larutan dioleskan pada pasta,

terbentuk warna biru yang muncul dengan segera akibat kelebihan nitrit. Kejadian

ini dapat ditunjukkan kembali setelah larutan didamkan selama 1 menit.KI + HCl KCl + HI

2 HI + 2 HONO I2+ 2 NO + 2 H2O

I2+ kanji kanji iod (biru)

Penetapan titik akhir titrasi dapat juga ditunjukkan dengan campuran

tropeolin OO dan biru metilen sebagai indikator dalam. Titik akhir juga dapat

ditunjukkan secara potensiometri dengan menggunakan elektroda kolomel platina

yang dicelupkan ke dalam titrat.

B. Pembuatan dan pembakuan natrium nitrit 0,1 M

Tujuan : Mahasiswa mampu membuat dan membakukan NaNO20,1 M.

Alat dan bahan:


16/39

Pembakuan larutan natrium nitrit 0,1 MLebih kurang 400 mg asam sulfanilat p.a. yang sebelumnya telah dikeringkan pada

120 C sampai bobot tetap (sudah disediakan) ditimbang seksama, dimasukkan ke

dalam gelas beker, kemudian ditambahkan 0,2 g natrium bikarbonat dan sedikit air,

aduk hingga larut. Diencerkan dengan 100 mL air, ditambahkan 100 mL asam klorida

pekat, didinginkan hingga suhu 8C. Dilakukan titrasi pelan-pelan dengan natrium

nitrit 0,1 M hingga setetes larutan memberikan warna biru pada indikator kanji iodida

(tetap pertahankan campuran pada suhu 8C dalam baskom es selama titrasi).

Titrasi dianggap selesai jika titik akhir tercapai ditunjukkan dengan larutan yang

dibiarkan 1 menit tetap menghasilkan warna biru pada indikator. Tiap mL larutan

NaNO20,1 M setara dengan 17,32 mg asam sulfanilat.

Reaksi

S

O

O

HO NH2 NaNO2 2 HCl S

O

O

HO N 2 H2O NaCl

N

Cl

Perhitungan

Molaritas NaNO2=mg asam sulfanilat

Volume NaNO2 BM asamsulfanilat

C. Aplikasi metode nitrimetri dalam penetapan kadar parasetamol

Tujuan : Mahasiswa mampu menetapkan kadar senyawa dengan gugus amina

aromatis yang tidak bebas dengan reaksi diazotasi.

Alat dan bahan:

Buret 50 mL Natrium nitrit

Gelas beker Asam klorida


17/39

Reaksi

2 H2O NaCl Cl

O

NH

HO

CH3

HCl

O

NH2

HO

CH3Cl

NH2

HO

NaNO2 2 HCl

N

HO

N

Perhitungan

Kadar parasetamol =mL NaNO2 M NaNO2 15,116

100%mg bahan 0,1


18/39

BROMATOMETRI

A. Pendahuluan

Brom dapat digunakan untuk menetapkan kadar senyawa-senyawa organik

yang mampu bereaksi secara adisi atau substitusi dengan brom. Dalam suasana

asam kalium bromat akan mengoksidasi bromida menjadi brom dengan reaksi

sebagai berikut.

BrO3+ 5 Br-+ 6 H+3 Br2+ 3 H2O

Titrasi secara bromatometri dapat dilakukan dengan dua cara meliputi:1. Titrasi langsung dengan kalium bromat

Pada titik akhir titrasi akan terbentuk brom bebas yang langsung dapat

digunakan sebagai petunjuk bahwa titik akhir titrasi telah tercapai yaitu dengan

timbulnya warna kuning dalam larutan. Pada penggunaan indikator merah metil

titik akhir titrasi dapat diamati dengan lebih jelas. Merah metil menghasilkan

warna merah pada suasana asam yang oleh brom akan mengalami reaksi

sehingga dihasilkan warna kuning. Perubahan warna ini bersifat irrevesibel.

Dalam asam kuat reaksi ini berlangsung dengan cepat sehingga adanya brom

dapat bereaksi dengan indikator sebelum titik akhir titrasi tercapai. Oleh karenaitu penambahan sedikit indikator dilakukan menjelang titik akhir titrasi.

2. Titrasi tidak langsung

Beberapa senyawa tidak dapat dititrasi langsung dengan kalium bromat karena

reaksinya sangat lambat namun dapat bereaksi secara kuantitatif dengan brom

berlebihan. Oleh karena itu, senyawa seperti ini dapat ditetapkan kadarnya

dengan penambahan brom berlebihan yang biasanya diperoleh dari larutan

kalium bromat-kalium bromida. Setelah didiamkan beberapa saat, kelebihan

brom dititrasi dengan natrium tiosulfat setelah terlebih dahulu ditambahkan

kalium iodida. Akibat sifat brom yang mudah menguap maka penetapan kadarini dilakukan pada erlenmeyer bertutup.


19/39

Normalitas KBrO2=

mg KBrO3 0,1 N

2,784

Pembuatan natrium tiosulfat 0,1 N

Sejumlah natrium tiosulfat dilarutkan secukupnya dalam air yang telah dididihkan

(air bebas CO2) hingga 1000 mL larutan mengandung 24,82 g Na2S2O3.5H2O.

Jika larutan ini akan digunakan selama beberapa hari ditambahkan 0,1 g natrium

karbonat atau tiga tetes kloroform untuk tiap liternya.

Pembakuan natrium tiosulfat 0,1 N

Sejumlah 25,0 mL kalium bromat 0,1 N dipindahkan ke dalam labu bersumbat kaca,

diencerkan dengan 50 mL air. Ditambahkan 2 g kalium iodida dan 5,0 mL asam

klorida p.a. Labu ditutup dan dibiarkan selama 5 menit. Diencerkan kembali dengan

100 mL air dan dititrasi natrium tiosulfat, menggunakan indikator kanji.

Reaksi

BrO3+ 5 Br-+ 6 H+3 Br2+ 3 H2O

2 I-+ Br2I2+ 2 Br-

2 Na2S2O3+ I2

2 NaI + Na2S4O6

Perhitungan

Normalitas Na2S2O3=25 N KBrO3mL Na2S2O3

C. Aplikasi metode bromatometri dalam penetapan kadar isoniazid

Tujuan : Mahasiswa mampu menetapkan kadar senyawa isoniazid dengan metode

titrasi tidak langsung.

Alat dan bahan:

Buret 25 mL Kalium bromat (KBrO3) 0,1 N


20/39

N menggunakan indikator kanji. Tiap mL kalium iodida 0,1 N setara dengan 3,429

mg isoniazid.

Reaksi

K++ BrO3+ 2 Br-+ 6 H-KBr + Br2+ 3 H2O

OH

O

N2 Br24 HBr

O

NH

H2N

NN2H2O

Br2+ 2 KI 2 KBr + I2

2 Na2S2O3+ I22 NaI + Na2S4O6

Perhitungan

Kadar isoniazid =(Vblanko Vsampel) N Na2S2O3 3,429

100%mg bahan 0,1

D. Aplikasi metode bromatometri dalam penetapan kadar sulfadiazin

Tujuan : Mahasiswa mampu menetapkan kadar senyawa sulfadiazin dengan metodetitrasi langsung.

Alat dan bahan:

Buret 25 mL Kalium bromat 0,1 N

Natrium hidroksida 2 % Kalium bromida

Erlenmeyer bertutup Asam asetat glasial

Indikator merah metil Asam klorida p.a.

Cara penetapan kadarLebih kurang 300 mg sulfadiazin yang timbang seksama dilarutkan dalam 20 mL

NaOH 2 %. Pada larutan tersebut ditambahkan 80 mL asam asetat glasial, 3 g kalium

bromida, dan 2 mL asam klorida p.a. Dilakukan titrasi dengan kalium bromat 0,1 N


21/39

IODIMETRI

A. Pendahuluan

Iodium merupakan senyawa oksidator yang relatif kuat dengan nilai potensial

oksidasi sebesar +0,535 V. Iodium akan direduksi menjadi iodida pada saat terjadi

reaksi oksidasi sebagai berikut:

2eI2 2 I-

Titrasi yang melibatkan adanya iodium dapat dilakukan dengan metode

iodimetri (titrasi langsung) serta iodometri (titrasi tidak langsung). Iodimetri

merupakan titrasi langsung dengan baku iodium terhadap senyawa yang memilikipotensial oksidasi lebih rendah dibandingkan iodium. Iodometri merupakan titrasi

tidak langsung yang yang diterapkan terhadap senyawa yang memiliki potensial

oksidasi lebih tinggi dari sistem iodium iodida.Pada iodometri sampel yang bersifat

oksidator kuat direduksi dengan kalium iodida berlebihan dan akan menghasilkan

iodium yang selanjutnya dititrasi dengan larutan baku natrium tiosulfat.

B. Pembuatan dan pembakuan larutan iodium 0,1 N

Tujuan : Mahasiswa mampu membuat dan membakukan larutan iodium yang

merupakan baku sekunder

Alat dan bahan:

Buret 50 mL Iodium

Corong Kalium iodida

Erlenmeyer 250 mL Natrium bikarbonat

Jingga metil Asam klorida

Labu takar 1000 mL Larutan kanji

Arsentrioksida NaOH 1 N

Pembuatan larutan iodium 0,1 N

Dilarutkan 18 g kalium iodida dalam 30 mL air dalam labu bertutup. Sejumlah kurang

l bih 12 7 i di diti b d dit b hk dikit d i dikit k d l l t


22/39

Perhitungan

Normalitas I2=mg As2O3 x 4

mL iodium BM As2O3

C. Aplikasi metode iodimetri dalam penetapan kadar vitamin C

Tujuan : Mahasiswa mampu menetapkan kadar vitamin C dengan metode iodimetri.

Alat dan bahan:

Buret 50 mL Iodium 0,1 N

Air bebas CO2 Kanji

Erlenmeyer 100-150 Asam sulfat encer

Cara penetapan kadar

Lebih kurang 400 mg vitamin C yang ditimbang seksama dilarutkan dalam campuran

yang terdiri dari 100 mL air bebas CO2 dan 25 mL asam sulfat encer. Segera

dilakukan titrasi dengan iodium 0,1 N serta penambahan indikator kanji 1,0 mL. Titik

akhir titrasi dicapai jika terjadi warna biru yang tetap selama 1 menit. Tiap mL iodium

0,1 N setara dengan 8,806 mg vitamin C.

Reaksi

OH

OH

HO

OO

HO

I2

O

OH

HO

OO

O

2 HI

Perhitungan

Kadar vitamin C =vol I2 N iodium 8,806

100%mg bahan 0 1


23/39

Penetapan Kadar Asam Salisilat dengan Metode Spektrofluorometri

I. Tujuan

Mahasiswa mampu menetapkan kadar asam salisilat dalam sampel serbuk

dengan metode spektrofluorometri.

II. Alat dan Bahan

1. Alat

Labu takar 10 mL

Labu takar 25 mL

Pipet volume 1, 2, 3, 4, 5, 10 mL

Gelas beker 100 mL

Corong gelas dan kertas saring

Timbangan analitik

Spektrofluorometer + kuvet

2. Bahan

Baku asam salisilat

Sampel asam salisilatH2SO40,1 N

III. Cara kerja

1. Pembuatan kurva baku

a. Pembuatan larutan stok asam salisilat 1 mg/mL

Ditimbang seksama lebih kurang 50,0 mg baku asam salisilat. Dimasukkan

dalam labu takar 50 mL kemudian ditambahkan etanol 1 tetes sampai larut,

diikuti akuades 5 mL kemudian ditambahkan dengan H2SO40,1 N hingga batastanda.

b. Pembuatan larutan intermediet asam salisilat 0,1 mg/mL

Diambil 5,0 mL larutan stok asam salisilat 1 mg/mL. Dimasukkan ke dalam labu


24/39

d. Diambil 1,0 mL larutan sampel A, dimasukkan ke dalam labu takar 10 mL,

diencerkan dengan H2SO40,1 N hingga batas tanda (disebut larutan sampel B).e. Diambil 5,0 mL larutan sampel B, dimasukkan ke dalam labu takar 25 mL,

diencerkan dengan H2SO40,1 N hingga batas tanda (disebut larutan sampel C).

f. Larutan sampel C diukur intensitas emisinya pada panjang gelombang eksitasi

302 nm dan emisi 442 nm.

g. Kadar asam salisilat dalam sampel ditetapkan dengan memplotkan intensitas

emisi terukur dengan persamaan kurva baku yang telah diperoleh sebelumnya.

h. Dilakukan replikasi sebanyak tiga kali.


25/39

Penetapan Kadar Vitamin B2 dengan Metode Spektrofluorometri

A. Tujuan

Mahasiswa mampu menetapkan kadar vitamin B2 dalam sampel serbuk

dengan metode spektrofluorometri.

B. Alat dan Bahan

1. Alat

Labu takar 10 mL

Labu takar 25 mLPipet volume 1, 2, 3, 4, 5, 10 mL

Gelas beker 100 mL


Timbangan analitik

Spektrofluorometer + kuvet

2. Bahan

Baku vitamin B2

Sampel vitamin B2NaOH 1%

C. Cara kerja


a. Pembuatan larutan stok vitamin B2 1 mg/mL

Ditimbang seksama lebih kurang 50,0 mg baku vitamin B2. Dimasukkan dalam

labu takar 50 mL dan dilarutkan dengan NaOH 1% hingga batas tanda. Perlu

diperhatikan tahapan preparasi dilakukan dengan meminimalkan kontak analit

dengan cahaya sehingga labu takar yang akan digunakan terlebih dahulu ditutup

dengan aluminium foil.

b P b t l t i t di t 1 it i B2 0 1 / L


26/39

dengan meminimalkan kontak analit dengan cahaya sehingga labu takar yang

akan digunakan terlebih dahulu ditutup dengan aluminium foil.c. Sisa sampel dalam gelas beker dibilas dengan 2 x 10 mL NaOH 1% dan

dimasukkan ke dalam labu takar yang sama dengan langkah b, diencerkan

dengan NaOH 1% hingga batas tanda (disebut larutan sampel A).


diencerkan dengan NaOH 1% hingga batas tanda (disebut larutan sampel B).

e. Diambil 1,0 mL larutan sampel B, dimasukkan ke dalam labu takar 10 mL,

diencerkan dengan NaOH 1% hingga batas tanda (disebut larutan sampel C).

f. Diambil 5,0 mL larutan sampel C, dimasukkan ke dalam labu takar 50 mL,

diencerkan dengan NaOH 1% hingga batas tanda (disebut larutan sampel D).

g. Larutan sampel D diukur intensitas emisinya pada panjang gelombang eksitasi

445 nm dan emisi 530 nm.

h. Kadar vitamin B2 dalam sampel ditetapkan dengan memplotkan intensitas emisi

terukur dengan persamaan kurva baku yang telah diperoleh sebelumnya.

i. Dilakukan replikasi sebanyak tiga kali.


27/39

Penetapan Kadar Aminofilin dengan Metode Spektrofotometri UV

A. Tujuan

Mahasiswa mampu menetapkan kadar aminofilin dalam sampel serbuk dengan

metode spektrofotometri UV.

B. Alat dan Bahan

1. Alat

Labu takar 10 mL

Labu takar 25 mL

Pipet volume 1, 2, 3, 4, 5, 10 mL

Gelas beker 100 mL


Timbangan analitik

Spektrofotometer UV + kuvet

2. Bahan

Baku aminofilin

Sampel aminofilinMetanol p.a. 20%

C. Cara kerja


a. Pembuatan larutan stok aminofilin 1 mg/mL

Ditimbang seksama lebih kurang 50,0 mg baku aminofilin. Dimasukkan dalam

labu takar 50 mL dan dilarutkan dengan metanol p.a. 20% hingga batas tanda.

b. Pembuatan larutan intermediet aminofilin 0,1 mg/mLDiambil 5,0 mL larutan stok aminofilin 1 mg/mL. Dimasukkan ke dalam labu

takar 50 mL, diencerkan dengan metanol p.a. 20% hingga batas tanda.

c. Pembuatan seri larutan baku aminofilin


28/39

c. Sisa sampel dalam gelas beker dibilas dengan 2 x 10 mL metanol p.a. 20% dan

dimasukkan kedalam labu takar yang sama dengan langkah b, diencerkandengan metanol p.a. 20% hingga batas tanda (disebut larutan sampel A).


diencerkan dengan metanol p.a. 20% hingga batas tanda (disebut larutan

sampel B).


diencerkan dengan metanol p.a. 20% hingga batas tanda (disebut larutan

sampel C).

f. Larutan sampel C diukur absorbansinya pada panjang gelombang serapan

maksimum yang telah ditetapkan sebelumnya.

g. Kadar aminofilin dalam sampel ditetapkan dengan memplotkan absorbansi




29/39

Penetapan Kadar Vitamin C dengan Metode Spektrofotometri UV

A. Tujuan

Mahasiswa mampu menetapkan kadar vitamin C dalam sampel serbuk dengan

metode spektrofotometri UV.

B. Alat dan Bahan

1. Alat

Labu takar 10 mL

Labu takar 25 mL

Pipet volume 1, 2, 3, 4, 5, 10 mL

Gelas beker 100 mL


Timbangan analitik

Spektrofotometer UV + kuvet

2. Bahan

Baku vitamin C

Sampel vitamin CMetanol p.a.

C. Cara kerja


a. Pembuatan larutan stok vitamin C 1 mg/mL

Ditimbang seksama lebih kurang 50,0 mg baku vitamin C. Dimasukkan dalam

labu takar 50 mL dan dilarutkan dengan metanol p.a. hingga batas tanda.

b. Pembuatan larutan intermediet vitamin C 0,1 mg/mLDiambil 5,0 mL larutan stok vitamin C 1 mg/mL. Dimasukkan ke dalam labu

takar 50 mL, diencerkan dengan metanol p.a. hingga batas tanda.

c. Pembuatan seri larutan baku vitamin C


30/39

c. Sisa sampel dalam gelas beker dibilas dengan 2 x 10 mL metanol dan

dimasukkan ke dalam labu takar yang sama dengan langkah b, diencerkandengan metanol p.a. hingga batas tanda (disebut larutan sampel A).


diencerkan dengan metanol hingga batas tanda (disebut larutan sampel B).


diencerkan dengan metanol hingga batas tanda (disebut larutan sampel C).

f. Larutan sampel C diukur absorbansinya pada panjang gelombang serapan

maksimum yang telah ditetapkan sebelumnya.

g. Kadar vitamin C dalam sampel ditetapkan dengan memplotkan absorbansi




31/39

Penetapan Kadar Asam Salisilat dengan Metode Spektrofotometri Visibel

A. Tujuan

Mahasiswa mengenal reaksi pembentukan kompleks warna antara senyawa

yang memiliki gugus hidroksi fenolik dengan pereaksi FeCl3.

Mahasiswa mampu menetapkan kadar asam salisilat dalam sampel serbuk

dengan metode spektrofotometri visibel.

B. Alat dan Bahan

1. Alat

Labu takar 50 mL

Labu takar 10 mL

Pipet volume 1, 2, 3, 4, 5, 10 mL

Gelas beker 100 mL


Timbangan analitik

Spektrofotometer vis + kuvet

Mikropipet

2. Bahan

Baku asam salisilat

Sampel asam salisilat

FeCl35%

Akuades

Metanol p.a

C. Cara kerja1. Pembuatan larutan stok dan intermediet asam salisilat

a. Pembuatan larutan stok asam salisilat 1 mg/mL

Ditimbang seksama lebih kurang 50,0 mg baku asam salisilat. Dimasukkan


32/39

c. Dilakukan pengukuran absorbansi pada 540 nm. Absorbansi tertinggi dari ketiga

waktu pendiaman merupakan operating time pembentukan kompleks warna.Dilakukan scanpada panjang gelombang 450-600 nm. Absorbansi tertinggi dari

ketiga waktu pendiaman merupakan panjang gelombang maksimum.


a. Disiapkan 5 labu takar 10 mL. Pada masing-masing labu takar dimasukkan

campuran larutan dengan proporsi sebagai berikut.

Labu takar25 mL

Larutan

intermediet asamsalisilat (mL)

LarutanFeCl35% (mL)

Labu takar no.1 1,0 0,2





b. Didiamkan selama operating time kemudian dilakukan pengukuran absorbansi

pada panjang gelombang maksimum yang telah dipetapkan sebelumnya. Suhupercobaan dijaga pada 2-5C. Perlu diperhatikan:blangko yang digunakan

adalah larutan yang dibuat sama dengan langkah 3a tanpa penambahan

larutan intermediet asam salisilat (blangko ada lima).

c. Absorbansi masing-masing seri larutan baku diukur pada panjang gelombang

maksimum yang telah ditetapkan sebelumnya. Dibuat kurva hubungan antara

konsentrasi (sumbu x) dan intensitas absorbansi (sumbu y).

4. Penetapan kadar asam salisilat dalam sampel

a. Ditimbang seksama lebih kurang 50,0 mg sampel asam salisilat. Dimasukkan

dalam labu takar 50 mL dan diencerkan dengan H2SO41 N hingga batas tanda

(disebut larutan sampel A).


33/39

Penetapan Kadar Sulfadiazin dengan Metode Spektrofotometri Visibel

A. Tujuan

Mahasiswa mengenal reaksi diazotasi sebagai pereaksi pengkoplingan pada

senyawa yang mempunyai gugus amina primer.

Mahasiswa mampu menetapkan kadar sulfadiazin dalam sampel serbuk dengan

metode spektrofotometri visibel.

B. Alat dan Bahan

1. Alat

Labu takar 50 mL

Labu takar 25 mL

Pipet volume 1, 2, 3, 4, 5, 10 mL

Gelas beker 100 mL


Timbangan analitik

Spektrofotometer vis + kuvet

Baskom + es batu

2. Bahan

Baku sulfadiazin

Sampel sulfadiazin

HCl p.a. 4 N

NaNO2p.a. 1%

Asam sulfamat p.a. 1%

Naftilamin p.a. 1%

NaOH p.a. 4 N

Akuades

C. Cara kerja


34/39

c. Ditambah 5 mL larutan naftilamin 1% lalu segera ditambahkan 5 mL larutan

NaOH 4 N secara pelan-pelan. Didiamkan sampai semua gelembung gas habis,jika perlu dilakukan ultrasonikasi. Dilakukan penambahan akuades hingga batas

tanda.

d. Dilakukan pengukuran absorbansi pada 505 nm. Absorbansi tertinggi dari ketiga

waktu pendiaman merupakan operating time pembentukan diazo. Dilakukan

scan pada panjang gelombang 450-600 nm. Absorbansi tertinggi dari ketiga

waktu pendiaman merupakan panjang gelombang maksimum. Perlu

diperhatikan:blangko yang digunakan adalah larutan yang dibuat sama

dengan langkah 2a sampai 2c tanpa penambahan larutan intermediet

sulfadiazin (HCl 4N yang ditambahkan pada pembuatan blangko adalah

5 mL; blangko ada tiga).

3. Pembuatan kurva baku sulfadiazin

a. Disiapkan 5 labu takar 25 mL dan ditempatkan pada penangas es (baskom berisi

es). Pada masing-masing erlenmeyer dimasukkan campuran larutan dengan

proporsi sebagai berikut.

Labu takar

25 mL

Larutanintermediet

sulfadiazin

0,2 mg/mL (mL)

Larutan HCl 4 N

(mL)

Larutan NaNO2

1%(mL)

Labu takar no.1 1,0 1,0 5,0





b. Didiamkan selama operating time yang diperoleh kemudian segera ditambahkan

5,0 mL larutan asam sulfamat 1%. Didiamkan selama 2 menit.

c. Kemudian ditambahkan 5 mL larutan naftilamin 1% diikuti penambahan 3 mL

larutan NaOH 4 N secara pelan-pelan. Didiamkan sampai semua gelembung gas

h bi jik l dil k k lt ik i Dil k k b h k d hi


35/39

c. Diambil 3,0 mL larutan sampel B sulfadiazin dengan menggunakan pipet volume,

dimasukkan ke dalam labu takar 25 mL yang telah ditempatkan dalam penangases, ditambah 1,0 mL larutan HCl 4 N dan 5,0 mL larutan NaNO2. Setelah

penambahan larutan NaNO2 diamkan selama waktu yang diperoleh dari

penentuan operating timesebelumnya. Segera dilakukan penambahan 5,0 mL

larutan asam sulfamat 1%. Didiamkan selama 2 menit. Ditambah 5,0 mL larutan

naftilamin 1% dan 3,0 mL larutan NaOH 4 N secara pelan-pelan, biarkan sampai

gelembung gas hilang, jika perlu dilakukan ultrasonikasi. Dilakukan penambahan

akuades hingga batas tanda (disebut larutan sampel C).

d. Dilakukan pengukuran absorbansi larutan sampel C pada panjang gelombang

maksimum yang telah dipetapkan sebelumnya. Perlu diperhatikan:blangko

yang digunakan adalah larutan yang dibuat sama dengan langkah 4c

tanpa penambahan larutan intermediet sulfadiazin. Catat absorbansinya

dan tetapkan kadar sulfadiazin berdasarkan persamaan kurva baku.

e. Dilakukan replikasi sebanyak 3 kali.


36/39

36

P a n d u a n P r a k t i k um K i m i a A n a l is is 2 0 1 4

JADWAL PRAKTIKUM KIMIA ANALISIS

SEMESTER GASAL 2014/2015

KELOMPOK A1 (Dosen jaga: Paul Segarra, M.Sc.)

Acara

Sub

Kel.

25 Agst 1 Sept 8 Sept 22 Sept 6 Okt 3 Nov 17 Nov 1 Des

Asistensi3jp

LatihanKualitatif

(3 jp)

ResponsiKualitatif(Individu)

13.00s.d.

16.00

Titrimetri 1 Titrimetri 2 Spektro 1 Spektro 2

ResponsiKuantitatif(Kelompok)

1

12.00

s.d.

14.00

13.00

s.d.

16.00

Asam salisilat

Aminofilin

Parasetamol

Vitamin C

Isoniazid

Sulfadiazin

Asam salisilat 1

Aminofilin

Asam salisilat 2

Vitamin B2

Sulfadiazin

Vitamin C

2

3

4 Vitamin C

Isoniazid

Sulfadiazin

Asam salisilat

Aminofilin

Parasetamol

Vitamin B2

Sulfadiazin

Vitamin C

Asam salisilat 1

Aminofilin

Asam salisilat 2

5

6

KELOMPOK A2 (Dosen jaga: Paul Segarra, M.Sc.)

Acara

Sub

Kel.

25 Agst 1 Sept 8 Sept 15 Sept 29 Sept 27 Okt 10 Nov 24 Nov

Asistensi3jp

LatihanKualitatif

(3 jp)


3jp

10.00s.d.

13.00



1

10.00

s.d.

12.00

10.00

s.d.

13.00

Asam salisilat

Aminofilin

Parasetamol

Vitamin C

Isoniazid

Sulfadiazin

Asam salisilat 1

Aminofilin

Asam salisilat 2

Vitamin B2

Sulfadiazin

Vitamin C

2

3

4Vitamin C

Isoniazid

Sulfadiazin

Asam salisilat

Aminofilin

Parasetamol

Vitamin B2

Sulfadiazin

Vitamin C

Asam salisilat 1

Aminofilin

Asam salisilat 2

5

6


37/39

37


KELOMPOK B1 (Dosen jaga: Dion Notario, S.Farm., Apt.)

Acara

Sub

Kel.


Asistensi3jp

LatihanKualitatif

(3 jp)


3jp

14.00s.d.

17.00



1

13.00

s.d.

15.00

14.00

s.d.

17.00

Asam salisilat

Aminofilin

Parasetamol

Vitamin C

Isoniazid

Sulfadiazin

Asam salisilat 1

Aminofilin

Asam salisilat 2

Vitamin B2

Sulfadiazin

Vitamin C

2

3

4Vitamin C

Isoniazid

Sulfadiazin

Asam salisilat

Aminofilin

Parasetamol

Vitamin B2

Sulfadiazin

Vitamin C

Asam salisilat 1

Aminofilin

Asam salisilat 2

5

6

KELOMPOK B2 (Dosen jaga: F.Dika Octa R., M.Sc.)

Acara

Sub

Kel.

29 Agst 5 Sept 12 Sept 19 Sept 3 Okt 31 Okt 14 Nov 28 Nov

Asistensi3jp

LatihanKualitatif

(3 jp)


3jp

11.00s.d.

14.00



1

11.00

s.d.

13.00

11.00

s.d.

14.00

Asam salisilat

Aminofilin

Parasetamol

Vitamin C

Isoniazid

Sulfadiazin

Asam salisilat 1

Aminofilin

Asam salisilat 2

Vitamin B2

Sulfadiazin

Vitamin C

2

3

4 Vitamin C

IsoniazidSulfadiazin

Asam salisilat

AminofilinParasetamol

Vitamin B2

SulfadiazinVitamin C

Asam salisilat 1

AminofilinAsam salisilat 2

56


38/39

38


KELOMPOK C1 (Dosen jaga: F.Dika Octa R., M.Sc.)

Acara

Sub

Kel.


Asistensi3jp

LatihanKualitatif

(3 jp)


3jp

14.00s.d.

17.00



1

13.00

s.d.

15.00

14.00

s.d.

17.00

Asam salisilat

Aminofilin

Parasetamol

Vitamin C

Isoniazid

Sulfadiazin

Asam salisilat 1

Aminofilin

Asam salisilat 2

Vitamin B2

Sulfadiazin

Vitamin C

2

3

4Vitamin C

Isoniazid

Sulfadiazin

Asam salisilat

Aminofilin

Parasetamol

Vitamin B2

Sulfadiazin

Vitamin C

Asam salisilat 1

Aminofilin

Asam salisilat 2

5

6

KELOMPOK C2 (Dosen jaga: Rollando, S.Farm., Apt.)

Acara

Sub

Kel.


Asistensi3jp

LatihanKualitatif

(3 jp)


3jp

11.00s.d.

14.00



1

11.00

s.d.

13.00

11.00

s.d.

14.00

Asam salisilat

Aminofilin

Parasetamol

Vitamin C

Isoniazid

Sulfadiazin

Asam salisilat 1

Aminofilin

Asam salisilat 2

Vitamin B2

Sulfadiazin

Vitamin C

2

3

4Vitamin C

Isoniazid

Sulfadiazin

Asam salisilat

Aminofilin

Parasetamol

Vitamin B2

Sulfadiazin

Vitamin C

Asam salisilat 1

Aminofilin

Asam salisilat 2

5

6


39/39

39


KELOMPOK D1 (Dosen jaga: Maria Yolanda, S.Farm., Apt.)

Acara

Sub

Kel.


Asistensi3jp

LatihanKualitatif

(3 jp)


3jp

14.00s.d.

17.00



1

13.00

s.d.

15.00

14.00

s.d.

17.00

Asam salisilat

Aminofilin

Parasetamol

Vitamin C

Isoniazid

Sulfadiazin

Asam salisilat 1

Aminofilin

Asam salisilat 2

Vitamin B2

Sulfadiazin

Vitamin C

2

3

4Vitamin C

Isoniazid

Sulfadiazin

Asam salisilat

Aminofilin

Parasetamol

Vitamin B2

Sulfadiazin

Vitamin C

Asam salisilat 1

Aminofilin

Asam salisilat 2

5

6

KELOMPOK D2 (Dosen jaga: F.Dika Octa R., M.Sc.)

Acara

Sub

Kel.


Asistensi3jp

LatihanKualitatif

(3 jp)


3jp

11.00s.d.

14.00



1

11.00

s.d.

13.00

11.00

s.d.

14.00

Asam salisilat

Aminofilin

Parasetamol

Vitamin C

Isoniazid

Sulfadiazin

Asam salisilat 1

Aminofilin

Asam salisilat 2

Vitamin B2

Sulfadiazin

Vitamin C

2

3

4Vitamin C

Isoniazid

Sulfadiazin

Asam salisilat

Aminofilin

Parasetamol

Vitamin B2

Sulfadiazin

Vitamin C

Asam salisilat 1

Aminofilin

Asam salisilat 2

5

6

panduan praktikum ka 2014_share

Documents