laporan praktikum bioteknologi hutan.pdf

8/16/2019 LAPORAN PRAKTIKUM BIOTEKNOLOGI HUTAN.pdf

1/79

LAPORAN PRAKTIKUM BIOTEKNOLOGI HUTAN

Disusun oleh :

Fajar Ramadhan (201410320311009)

Freda Bayu Kusnanto (201410320311025)

Moh. Ali Mudhofir (201410320311026)

Racha Pratama Supriadi (201410320311031)Riza Rahman Prihandoko (201410320311037)

Chyntia Eka Pratiwi (201410320311048)

LABORATORIUM BIOTEKNOLOGI

JURUSAN KEHUTANAN

FAKULTAS PERTANIAN – PETERNAKAN

UNIVERSITAS MUHAMMADIYAH MALANG

2015


2/79

1

KATA PENGANTAR

Assalamualaikum Wr.Wb

Alhamdullilahirobbilalamin kami panjatkan kehadirat Allah SWT karena

atas berkat dan rahmat-Nyalah, Laporan akhir praktikum bioteknologi huta ini

dapat terselesaikan tepat pada waktunya. Laporan akhir bioteknologi hutan kami

susun sebagai prasyarat dalam menyelesaikan praktikum bioteknologi huta pada

semester ganjil ini.

Tentunya dalam penyusunan laporan Fieldtrip ini tidak lepas dari bantuan

berbagai pihak. Untuk itu kami ingin mengucapkan terima kasih kepada :

1. Isnaeni nur laili selaku Instruktur praktikum bioteknologi hutan.

2. Indah puji hastuti selaku Assisten praktikum bioteknologi hutan .

3. Dan pihak-pihak lain yang tidak dapat kami sebutkan satu per satu yang

telah membantu kami dalam menyelesaikan laporan akhir bioteknologi

hutan.

Kami mengharapkan semoga laporan yang kami susun dapat bermanfaat

bagi pihak yang mau memanfaatkannya. Dan kami menyadari dalam penyusunan

laporan laporan akhir bioteknologi hutan ini, kami banyak melakukan kesalahan.

Untuik itu kami penyusun mengharap kritik dan saran yang sifatnya membangun.

Wassalamualaikum Wr.Wb.

Malang, 20 Desember 2015

Penulis


3/79

2

DAFTAR ISI

KATA PENGANTAR ........................................................................................1

DAFTAR ISI ......................................................................................................2

BAB 1 PENDAHULUAN ...................................................................................4

1.1 Latar belakang ................................................................................4

1.2 Tujuan ..............................................................................................6

BAB II TINJAUAN PUSTAKA .........................................................................7

2.1 Kultur Kalus ....................................................................................7

2.2 Kultur Pucuk tanaman berkayu ......................................................9

2.3 Kultur organ daun ............................................................................11

2.4 Aklimatisasi tanaman anggrek .........................................................12

FASILITAS RUANG DAN PERALATAN ......................................................15

1.1 Hasil dan pembahasan alat kultur jaringan ......................................16

1.2 Hasil dan pembahasan ruang kultur jaringan .................................22

1.3 Hasil pengamatan dan pembahasan bahan kultur jaringan ..............29

PERSIAPAN PEMBUATA MEDIA...................................................................31

1.1 Tabel stok ........................................................................................32

1.2 Perhitungan ....................................................................................33

KULTUR KALUS...............................................................................................40

1.1 Hasil pengamatan .............................................................................41

1.2 Pembahasan ....................................................................................50

2.2 Kesimpulan ....................................................................................50


4/79

3

2.2 Saran ................................................................................................50

DAFTAR PUSTAKA............................................................................51

KULTUR PUCUK TANAMAN BERKAYU .....................................................52


1.2 Pembahasan ....................................................................................56

2.2 Kesimpulan ....................................................................................58

2.2 Saran ................................................................................................58

DAFTAR PUSTAKA............................................................................59

KULTUR ORGA DAUN ....................................................................................60


1.2 Pembahasan ....................................................................................68

2.2 Kesimpulan ....................................................................................70

2.2 Saran ................................................................................................70

DAFTAR PUSTAKA............................................................................71

AKLIMATISASI TANAMAN ANGGREK .......................................................72


1.2 Pembahasan ....................................................................................75

2.2 Kesimpulan ....................................................................................77

2.2 Saran ................................................................................................77

DAFTAR PUSTAKA............................................................................78


5/79

4

BAB I

PENDAHULUAN

1.1 Latar belakang

Seiring dengan berkembangnya zaman yang makin pesat, berbagai bidang

kehidupan manusia telah mengalami kemajuan akibat adanya peningkatan

penguasaan IPTEK. Salah satu bidang yang kini turut berkembang pesat yaitu

bidang pertanian-kehutanan , berbagai penemuan berkaitan dengan pertanian telah

ditemukan untuk mempermudah dalam kegiatan produksi hasil pertanian dari

sebuah tanaman atau pohon. Terdapat salah satu penemuan teknologi di bidang

pertanian dan juga kehutanan mengenai perbanyakan tanaman secara vegetaif,

mengingat perbanyakan tanaman atau pohon dahulu sering menggunakan biji

dimana sering mengalami berbagai kendala diantaranya seperti dipengaruhi oleh

iklim, sering terkontaminasi dengan baktei atau jamur. Namun kini berbagai bagai

masalah perbanyakan secara vegatif dan generatif dapat di minimalisir dengan

ditemukannya perbanyakan tanaman dengan menggunakan metode kultur jaringan.

Kultur jaringan merupakan metode perbanyakan tanaman yang berpegang pada

prinsip “totipotensi sel” yaitu kemampuan sel untuk tumbuh dan berkembang dalam

suatu lingkungan steril dan aseptik bebas dari virus, jamur dan kontaminan lainya.

Kultur jaringan merupakan perbanyakan tanaman secara vegetatif dengan

menggunakan bagian-bagian organ dari tumbuhan seperti daun, batang, akar dll.

Kultur jaringan terus berkembang dari mengkulturkan biji berkembang dengan

jaringan dan terus berkembang hingga mampu mengkulturkan satu sel dari

tanaman. Penggunaan metode kultur jaringan mempunyai kelebihan yaitu mampu

memproduksi bibit seragam dalam jumlah banyak dan dalam waktu relatif singkat.

Kultur jaringan sering dijadikan salah satu solusi sebagai metode

perbanyakan tanaman dan juga dapat digunakan sebagai metode penyimpanan

plasma nutfah yang tidak membutuhkan tempat yang besar. Keberhasilan dari

kultur jaringan sangat bergantung dari ketepatan konsentrasi nutrisi yang ada di

dalam media kultur. Ketapatan konsentrasi ini menyangkut pada ketersediaan

nutrisi bagi eksplan tanaman. Kelebihan nutrisi dari tanaman akan menyebabkan


6/79

5

tanaman mengalami keracunan unsur hara. Sehingga, pembuatan larutan stock dan

sterilisasi media dianggap penting untuk diketahui sebagai sarana penunjang

keberhasilan akan kultur jaringan. Pertumbuhan dan perkembangan eksplan kultur

jaringan tidak akan berkembang dengan baik apabila komposisi media tidak sesuai

persyaratan tumbuh eksplan dan tidak steril. Kultur jaringan memiliki beberapa

jenis metode perbanyakan berdasarkan bahan tanaman yang digunakan yaitu

diantaranya kultur kalus, kultur pucuk, kultur organ daun. Kultur kalus merupakan

kultur yang menggunakan kumpulan sel tumbuhan yang terus menerus membelah

secara in-vitro atau di dalam tabung. Untuk kultur pucuk sendiri pada prinsipnya

menggunakan jaringan meristem yang aktif membelah khususnya pada hal ini

menggunakan pucuk daun. Sedangkan kultur organ menggunakan bagian organ

daun tumbuhan sebagai eksplan. Secara keseluruhan cara kerja berbagai jenis kultur

hampirr sama yaitu pada prinsipnya menggunakan media sesuai dengan syarat

tumbuh eksplan, steril terhadap kontaminan dan pengerjaan kultur di lingkungan

aseptik. Yang membedakan dapat berasal dari perlakuan aklimatisasi di tiap jenis

kultur karena setiap jenis tumbuhan terdapat tumbuhan yang memerlukan perlakuan

khusus. Untuk dapat melakukan perbanyakan tanaman menggunakan metode kultur

jaringan, maka harus mengerti akan berbagai fasilitas sarana dan prasarana yang

diperlukan untuk tindakan kultur jaringan yang memegang prinsip aseptik,

mengerti dan faham akan pembuatan media kultur dan tentunya tahap-tahap proses

pengerjaan kultur jaringan tanaman mulai dari persiapan bahan sampai pembibitan

( Nursery)


7/79

6

1.2 Tujuan

Berdasarkan latar belakang diatas, maka dapat diambil tujuan sebagai

berikut

1.

Mengetahui berbagai fasilitas ruang dan alat dalam proses pelaksanaan

kultur jaringan

2. Mengetahui dan memahi proses pembuatan media dan larutan stok

3. Mengetahui dan memahami tata cara atau prosedur kultur kalus

4.

Mengetahui faktor yang mempengaruhi keberhasilan dan kegagalan kultur

kalus

5. Mengetahui dan memahami tata cara kultur pucuk

6.

Mengetahui pengaruh pemberian zat pengatur tumbuh pada pertumbuhan

dan perkembangan kultur pucuk

7. Mengetahui dan memahami tata cara kultur organ daun

8.

Mengetahui berbagai manfaat dari berbagai macam jenis kultur jaringan

9. Mengetahui pengaruh aklimatisasi terhadap pertumbuhan tanaman hasil

kultur jaringan (Tanaman anggrek)


8/79

7

BAB II

TINJUAN PUSTAKA

2.1 Kultur kalus

Kultur jaringan adalah teknik perbanyakan tanaman dengan cara mengisolasi

bagian tanaman seperti daun, mata tunas, serta menumbuhkan bagian-bagian

tersebut dalam media buatan secara aspetik yang kaya nutrisi dan zat pengatur

tumbuh dalam wadah tertutup yang tembuh cahaya sehingga bagian tanaman dapat

memperbanyak diri dan beregenerasi menjadi tanaman lengkap. Prinsip utama

kultur jaringan adalah perbanyakan tanaman dengan menggunakan bagian vegetatif

tanaman, menggunakan media buatan teknik kultur in- vitro dengan teknik teknik

kultur kalus atau kultur sel. Kultur kalus merupakan pemeliharaan sel yang belum

terdeferensiasi yang membelah terus menerus dalam lingkungan buatan yang steril

da kondisi yang terkontrol (Zulkarnain, 2009)

Kultur kalus merupakan suatu kumpulan sel amorphous ( tidak terbentuk atau

terdeferensiasi) yang terjadi dari sel-sel jaringan yang membelah diri secara terus

menerus – menerus secara in – vitro didalam tabung dan tidak terorganisasi

sehingga memberikan penampilan sebagai massa yang bentuknya tidak teratur.

Kalus adalah jaringan meristematik yang merupakan wujud dari diferensiasi.

Dalam kultur jaringan menginduksi terbentuknya kalus merupakan langkah

penting. Setelah terbentuknya kalus, diberikan perlakuan atau rangsangan untuk

berdiferensiasi membentuk akar atau tunas. Kalus terbentuk melalui tiga tahap yaitu

induksi, pembelahan sel, dan diferensiasi. Pembentukan kalus ditentukan sumber

eksplan, komposisi pada ,medium dan faktor – faktor lingkungan. Untuk

memelihara kalus, maka perlu subkultur secara berkala misalnya setiap 30 hari

(Yusnita, 2003).


9/79

8

Pada umumya komposisi utama media tanam kultur jaringan, terdiri dari

hormon (ZPT) dan sejumlah unsur yang biasanya terdapat di dalam tanah yang

dikelompokkan ke dalam unsur makro dan unsur mikro. Hasil yang lebih baik di

dapat apabila ke dalam media tanam ditambahkan vitamin, asam amino, dan

hormone, agar, glukosa, bahan air destilata (Aquades) dan bahan organic

(Gunawan, 2001). Zat pengatur tumbuh adalah persenyawaan organic selain dari

nutrient yang dalam jumlah sedikit dapat merangsang, menghambat, atau

mengubah pola pertumbuha dan perkembangan tanaman (Abidin, 2000). Zat

pengatur tumbuh (ZPT) dalam kultur jaringan diperlukan untuk mengendalika dan

mengatur pertumbuhan kultur tanaman.

Zat pengatur tumbuh ini mempengaruhi pertumbuhan dan morfogenesis

dalam kultur jaringan sel (kalus) dan organ. Zat pengatur tumbuh yang digunakan

dalam kultur jaringan dibagi menjadi kelompok besar yaitu auksin, sitokinin, dan

giberelin. Khusus untuk kultur kalus, zat pengatur tumbuh yang digunakan ialah

auksi 2,4D dan IBA . Hormon auksin 2,4 D dalam kultur kalus berperan

menginduksi kalus terjadinya kalus, menghamat kerja sitokinin membentuk

klorofil dalam kalus, mendorong proses morforgenesis kalus membentuk akar atau

tunas dan mendorong proses embryogenesis. Hormon IBA sendiri juga merupakan

salah satu jenis auksin yang berperan untuk membesarkan sel , mempengaruhi

protein membrane sehingga sintesis protein , asam nukleat lebih cepat. Penggunaan

ZPT harus tepat dalam perhitungan dosis pemakaian karena jika terlalu banyak

maupun terlalu sedikit dari dosis yang diperlukan justru akan berdampak negatif

terhadap pertumbuhan kalus, karena interaksi antar hormon dalam suatu media

sangat berpengaruh dalam diferensiasi sel. (Suryowinoto, 2004)

Teknik kultur kalus akan berhasil dengan baik apabila syarat yang di perlukan

sudah terpenuhi dengan baik. Syarat-syarat tersebut meliputi pemilihan eksplan

sebagai bahan dasar pembentukan kalus, penggunaan medium yang sesuai, keadaan

yang aseptik dan pengatur udara yang baik. Untuk eksplan tanaman yang baik

digunakan adalah bagian tanaman yang masih muda yaitu bagia meristemnya


10/79

9

(Herawan, 2005). Menurut santoso dan F.nursandi ada faktor yang mempengaruhi

keberhasilan kultur jaringan yaitu :

1. Genotip

Pada beberapa jenis tumuha embrio mudah tumbuh akan tetapi pada

beberapa jenis tumbuhan lain sulit untuk tumbuh, hal ini disebabkan oleh

perbedaan kultivar dari jaringan yang sama

2. Komposisi media tanam

Media untuk pertumbuhan embrio harus mengandung usur hara makro,

mikro dan glukosa.

3. Oksigen

Supai oksigen yang cukup sangat menentukan laju mutlipikasi tunas dalam

usaha perbanyakan secara invitro.

4. Cahaya

Kadang-kadang untuk perkembangan embrio membutuhkan tempat gelap

kira-kira 7-14 hari. Baru dipindahkan ke tempat terang dengan tingkat

intensistas cahaya yang cukup untuk pembentukan klorofil.

5. Temperatur

Temperature optimum yang dibutuhkan umumnya tergantung dari jenis

tumbuhan yang digunakan. Secara normal temperature yang digunakan

adalah 22 – 28 °C.

6. Lingkungan

Kondisi lingkungan sangat menentukan terhadap tingkat keberhasilan

pembiakan tanaman denga cara kultur jaringan , kondisi lingkungan yang

aseptik merupakan syarat utama untuk melakukan perbanyakan dengan

mengguanakan metode kultur jaringan.

2.2 Kultur pucuk tanaman berkayu

Kultur meristem adalah salah satu teknik dalam kultur jaringan tanaman

dengan menggunakan jaringan meristematik atau jaringan muda sebagai eksplanya.

Jaringan meristem atau meristematik merupakan kumpulan sel – sel yang aktif

membelah pada tempat tertentu pada tanaman, dimana sel-sel tersebut akan


11/79

10

membentuk sistem jaringan secara meristematik seperti akar, tunas, daun, bunga

dan lain-lain. Sel-sel jaringan meristem mempunyai kemampuan embriotik yang

dapat membelah tanpa batas untuk membentuk jaringan dewasa yang kemudian

menjadi organ-organ tanaman. (Soebandi,2000)

Kultur meristem sudah secara luas diterapkan untuk tujuan perbanyakan

tanaman. Sel-sel meristem umumnya stabil karena mitosis pada sel-sel meristem

terjadi bersama dengan pembelahan sel yang berkesinambungan sehingga ekstra

duplikasi DNA dapat dihidarkan. Hal ini menyebabkan tanaman yang dihasilkan

dengan tanaman induknya. Selain perbanyakan, aplikasi kultur meristem yang

terutama adalah eleminasi virus dari bahan tanaman dan penyimpangan plasma

nutfah yang bebas virus, degan teknik cryopreservation : preservasi rendah.

Sekelompok tanaman berupa klon yang dihasilkan oleh kultur meristem yang

disebut meriklon. Keberhasilan dari kultur meristem ini tergantung beberapa faktor,

diantaranya media kultur, keadaan fisiologis eksplan dan lingkungan fisik tumbuh,

salah satu kultur meristem yaitu kultur pucuk. (Untung, 2014)

Perbanyakan bibit dalam pengembangan tanaman atau dalam suatu produksi

merupakan salah satu aspek yang sangat penting. Produksi skala besar seperti

perkebunan akan memerlukan bibit dalam jumlah besar, varietas unggul, seragam,

bebas hama dan penyakit dan penyediaan yag kontinyue. Dengan berkembangnya

teknik kultur jaringan kendala multiplikasi untuk beberapa jenis tanaman dapat

diatasi. Dalam perbanyakan secara in-vitro terdapat perkembangbiakan melalui

kultur pucuk yang kemudian dibagi menjadi dua cara yaitu kultur pucuk (Shoot tip

culture) dan kultur mata tunas (Single node culture).

Melalui kultur pucuk, bagian tanaman yang digunakan adalah ujung tunas

lateral atau terminal. Pengaruh dominasi meristem apical dapat dihilangkan denga

menambahkan zat pengatur tumbuh sitokinin ke dalam medium. Hasil yang

diperoleh adalah tunas dengan jumlah cabang yang lebih banyak. Melalui kultur

mata tunas (Single node culture). Bahan yang digunakan sebagai eksplan adalah

mata tunas aksiler. Teknik ini digunakan apabila ada pengaruh dominasi apical pada


12/79

11

kultur pucuk, sehingga pucuk aksiler menjadi dorman (tidak menghasilkan cabang-

cabang) untuk mendapatkan eksplan yang banyak. (Mulyono, 2001)

Guna memperoleh hasil yang memuaskan dalam pelaksanaan kultur jaringan,

digunakalah zat pengatur tumbuh (ZPT). Tingkat keberhasilan dalam penggunaan

ZPT ini pada dasarnya tergatung pada jenis dan konsentrasi yang digunakan. Pada

umunya ZPT yang digunakan adalah merupakan campuran sitokinin dan auksin.

Sitokinin seperti BAP berfugsi merangsang tumbuhya tunas-tunas aksilar,

sedangkan auksin berfungsi untuk merangsang pembentukan akar tunas. (Royani,

2003)

Zat pengatur tumbuh NAA da BAP pada pertumbuhan kultur pucuk kalus berfungsi untuk merangsang pertumbuhan sel, intensitas DNA kromosom,

pembentukan tunas, pembentukan batang , serta merangsag pertumbuhan akar,

akan tetapi jika digunakan dalam dosis tinggi, maka menghalangi pertumbuhan

bahkan membunuh (Dedysetiawan, 2002). Kombinasi konsentrasi BAP dan NAA

berpengaruh nyata terhadap variable jumlah tunas, panjang tunas dan jumlah daun.

IAA juga termasuk auksi yang berfungsi untuk pembentukan akar (Tyas,2003)

2.3 Kultur organ daun

Dalam kultur jaringan terdapat beberapa macam kultur yang dikelompokkan

berdasarkan jenis bahan tanamnya, salah satu macamnya yakni kultur organ. Kultur

organ adalah salah satu metode pembiakan tanaman dengan mengisolasi eksplan

seperti daun, batang, akar, atau organ lainnya yang ditumbuhkan dalam kondisi

aseptik pada lingkungan yang sesuai. Dapat dikatakan pula bahwa kultur jaringan

merupakan metode pembiakan tanaman yang diambil dari bagian atau organ

tanaman, sehingga dapat beregenerasi menjadi tanaman yang lengkap (Tatang,

2014).


13/79

12

Secara umum kultur organ dikembangkan dari tanaman (organnya) yang

memiliki respon pertumbuhan yang baik seperti daun muda, tunas dan yang lainnya.

Adapun tahapan yang biasa dilakukan dalam kultur organ meliputi pembuatan

media, inisiasi, sterilisasi, multiplikasi, pengakaran, dan aklimatisasi. Dalam kultur

organ terdapat faktor – faktor yang mempengaruhi pertumbuhan dan morfogenesis

organ tanaman dalam kultur jaringan dan kultur organ diantaranya yaitu: asal

bahan, bagian organ yang digunakan, media, kondisi eksplan, kondisi lingkungan

(Tyas, 2014).

Dalam metode kultur jaringan khusunya kultur organ inibanyak sekali

memberikan manfaat. Disamping karena eksplannya bisa berasal dari seluruh

bagian tanaman dan menghasilkan tanaman yang bersifat sama dengan induknya.

Juga menghasilkan tanaman baru dalam jumlah banyak dengan waktu yang singkat

(Unswagati, 2014).

Selain itu, untuk menciptakan varietas baru melalui kultur jaringan sehingga

menjadi tanaman baru yang berfungsi secara lengkap. Dalam memproduksi bibit

dalam jumlah yang banyak akan tetap seragam baik ukuran maupun genotipnya.

Selain itu kultur organ ini menjadikan tanaman yang bebas virus melalui teknik ini

(Rahmadewi, 2010).

2.4 Aklimatisasi anggrek

Aklimatisasi adalah masa adaptasi tanaman hasil pembiakan pada kultur

jaringan yang semula kondisinya terkendali berubah pada kondisi lapang yang

kondisinya tidak terkendali lagi. Tanaman juga akan mengubah pola hidup dari

tanaman heterotrof ke tanaman autrotof. Sebelum angrek diaklimatisasi, planlet

anggrek diseleksi terlebih dahulu berdasarkan kelengkapan organ, warna dan

ukuran. (Trubus, 2005)

Planlet anggrek yang baik adalah memiliki organ lengkap, mempunyai pucuk

dan akar, warna pun tidak tembus pandang dan pertumbuhan akar bagus. Ciri-ciri

bibit anggrek berkualitas baik yaitu tampak sehat, tidak berjamur, ukuran planlet


14/79

13

seragam, berdaun hijau dan tidak menguning. Selain itu planlet tumbuh normal,

tdak kerdil, komposisi daun dan akar seimbang. Aklimatisasi bertujuan untuk

mempersiapkan planlet agar siap ditanam dilapangan. Tahap alkimatisasi mutlak

dilakukan pada tanaman hasil kultur in vitro karena planlet akan mengalami

perubahan fisiologis yang disebabkan oleh faktor lingkungan. Hal ini bisa dipahami

karena pembiakan in vitro semua faktor terkontrol sedangkan di lingkungan sulit

dikontrol. (Herawan, 2006)

Terdapat berbagai macam media aklimatisasi yang termasuk kategori organik

umumnya berasal dari komponen organisme hidup antara lain: daun, batang, akar

dan kulit tanaman. Media organik memiliki berbagai keunggulan diantaranya yaitu

mempunyai pori-pori makro dan mikro yang hampir seimbang sehingga udara yang

dihasilkan cukup banyak dan daya serap air tinggi. Media organik yang sering

dipakai antara lain, arang kayu, arang sekam, moss dan akar pakis. (Rossa, 2011)

Media moss berasal dari paku-pakuan atau kadaka. Media ini mempunyai

banyak rongga, sehingga memungkinkan akar anggrek dapat tumbuh dengan

leluasa. Media moss memiliki kelebihan yaitu dapat menyerap air dan

mempertahankan air dengan baik, menjaga kelembapan media dan lingkungan

sekitar anggrek, dapat menyerap dan menyimpan pupuk dengan pemupukan yang

tidak intensif. Moss mengandung nitrogen dan sedikit fosfor yang berfungsi

merangsang pertumbuhan tanaman dan mempercepat pembungaan pada anggrek.

(Beni, 2007)

Kesuksesan proses aklimatisasi bibit anggrek ditentukan oleh beberapa hal

penting, diantaranya adalah jenis bibit anggrek, media in vitro, umur bibit, teknik

aklimatisasi, dan kemampuan pelaksana. Faktor-faktor tersebut saling berhubungan

satu sama lain. Jenis anggrek yang mudah diaklimatisasikan akan menghasilkan

prosentase hidup bibit yang tinggi, sedangkan jenis anggrek yang sulit

diaklimatisasikan akan menghasilkan presentase hidup bibit yang rendah. Contoh

anggrek yang susah diaklimatisasikan yaitu Dendrobium johania. (Untung, 2013)


15/79

14

Media in vitro, media agar yang digunakan menanam bibit dalam botol sangat

mempengaruhi sifat fisiologis tanaman yang pada akhirnya dapat mempengaruhi

kemampuan hidup bibit pada saat aklimatisasi. Media yang hanya menggunakan

hara yang tersedia seperti Mos tanpa penambahan bahan organik kompleks/pupuk

akan menghasilkan produk bibit yang bagus tapi kemampuan aklimatisasinya akan

jelek. Kemampuan pelaksana, bibit yang bagus ditangani oleh orang yang tidak

berpengalaman pasti prosentase kematiannya tinggi. Prosentase kegagalan

aklimatisasi bibit anggrek sering terjadi karena kecerobohan pelaksanaan.

(Fatimah, 2013)

Dalam kultur organ terdapat faktor – faktor yang mempengaruhi

pertumbuhan dan morfogenesis organ tanaman dalam kultur jaringan diantaranya

yaitu : genotip tanaman, asal eksplan ditentukan atas spesies, varietas, atau asal

daerah. Bagian organ yang digunakan menghasilkan pertumbuhan yang berbeda,

kondisi eksplan dan kondisi lingkungan dapat mempengaruhi karena dari faktor

kelembaban, cahaya, suhu ,dll (Tyas, 2010).

Selain faktor – faktor tersebut faktor media atau ZPT juga mempengaruhi

morfogenesis. Dalam kultur jaringan ini ZPT yang biasanya dipakai adalah auksin

yang bisa meningktkan kandungan asam nukleat sel, mempengaruhi protein

membran. Sedangkan sitokinin dapat berperan dalam memacu pembentangan sel

dan pembelahan sel, serta mengarahkan transpor zat hara (Santoso, 2009).


16/79

15

FASILTAS RUANG DAN PERLATAN


17/79

16

BAB I

HASIL DAN PEMBAHASAN

1.1 Hasil dan pembahasan alat kultur jaringan

No Nama alat Deskripsi alat Fungsi Gambar

1. Kompor

gas/Mirowave

Kompor gas memiliki

tabung gas sebagai

pemasok gas ke kompor

dan memiliki pematik

untuk menyelakan api.

Micorwave memiliki

tombol transformator

untuk

meningkatkan/menurunkan

Tegangan . tombol

magnetron berfungsi untuk

mengubah tegangan tinggi

ke gelombang mikro.

Ruang masak sebagai

tempat meletakkan bahan

yang ingin dipanaskan,

tombol control terdiri dari

timer (pengatur waktu)

Untuk

memanaskan

bahan

2. Hotplate

stirrer

Memiliki pelat yang

dipanaskan sehingga

mampu mempercepat

proses homogenisasi.

Terdapat tombol “stir”

untuk pengadukan.

Tombol “Heat” untuk

Miliki fungsi

ganda yaitu untuk

memanaskan

suatu zat/larutan

da bisa digunakan

untuk


18/79

17

memanaskan, terdapat

lampu indicator untuk

memberi informasi apakah

alat dalam keadaan hidup

atau mati

menghomogenkan

larutan

3. Timbangan

analitik

Timbangan analitik

memiliki ketelitian cukup

tinggi. Prinsip kerja

menggunakan sumber

listrik. Terdapat instrument

tombol untuk

menghidupkan/mematikan

dan tombol zero untuk

mereset ke angka “0”,

dilengkapi layar monitor

kecil untuk melihat dari

perimbangan. Dilengkapi

oleh penutup dari kaca

agar penimbangan tidak

terganggu oleh debu,

angina dll.

Untuk mengukur

atau menentukan

massa benda

denga ketelitian

cukup tinggi

sampai 0,0001 g

4. Autoklaf Memiliki tombol pengatur

waktu mundur (Timer),

pengukur tekanan, tombol

on/off untukmenghidupkan dan

mematikan, tombol lock-

unclock untuk mengunci

(pengaman), layar monitor

Untuk

mensterilisasi

suatu benda

menggunakan uap bersuhu dan

bertekanan tinggi

(121, 15 lbs).

autoklav


19/79

18

kecil untuk melihat/ berisi

tentang suhu dan tekanan.

ditujukan untuk

membunuh spora

5. pH indaktor Terbuat dari kertas lakmus,

dalam pengamatannya

mengenai asam/basah

dilihat pada perubahan

warnanya kemudian warna

hasil pencelupan

dicocokkan dengan tabel

indicator warna

Untuk mengukur

pH suatu benda,

apakah bersifat

asam, netral dan

basa. Digunakan

pada proses

pembuatan media

6. Laminar air

flow (LAF)

Disebut juga biological

safety cabinet (BCS),

mempunyai pola

pengaturan dan

penyaringan udara dengan

blower serta aplikasi sinar

UV-C dengan panjang

gelombang 253,7 nm.

Terdapat filter untuk

menyaring udara yaitu pre-

filter, HEPA filter. Biasa

diletakkan ditempat steril

dengan dinding dilengkapi

porselen sehingga mudah

untuk disetetilkan dengan

menyemprot/ menggosok

dengan alcohol

Sebagai tempat

pengerjaan kultur

jaringan

(Penamaan

eksplan) dalam

kondisi steril


20/79

19

7. Bunsen

burner

Memiliki cairan spiritus

yang digunakan sebagai

bahan bakar pembakaran

terletak pada gelas

berbentuk labu dan

terdapat sumbu sebagai

media pembakaran dan

juga tutup untuk menutup

sumbu dan sekaligus

memadamkan api pada

sumbu

Untuk

memanaskan

larutan dan dapat

pula digunakan

sterilisasi dalam

proses suatu

proses seperti

pada saat

penanam eksplan

untuk menghidari

terjadinya

kontaminasi

8. Cawan petri Sebuah wadah yang

berbentuk bundar dan

terbuat dari kaca. Cawan

petri selalu berpasangan,

yang ukurannya agak kecil

sebagai wadah da yang

lebih besar merupakan

tutupnya

Untuk meletakan

eksplan pada saat

transfer kultur

dilakukan

9. Hand spayer Memiliki tangki sebagai

wadah cairan yang

kemdian terdapat tuas

pompa untuk

menyemprotkan cairandengan cara dipompa

Sebagai wadah

alcohol atau

menyemprotkan

alcohol pada LAF

setelahmelakukan

pekerjaan

penanaman

eksplan untuk

sterilisasi


21/79

20

11. Beaker glass Terbuat dari kaca

beberntuk silinder.

Terdapat skala angka

untuk membantu

mengukur/menakar larutan

Sebagai tempat

untuk melarutkan

zat yang tidak

membutuhkan

ketelitian tinggi

dan untuk

pembuatan media

12. Gelas ukur Terbuat dari boro silikat.

Berbentuk silinder tapi

tidak sebesar beaker glass.

Terdapat skala angka

dengan garis penanda

penanda volume dibagian

luarnya

Berfungsi untuk

mengukur

volume/cairan

13. Pipet tetes Berbentuk seperti tabung

kecil yang ujung

bawahnya meruncing dan

terbuat dari kaca plastic,

tetapi ujung atasnya

berdiameter sama degan

badan pipet da tertutup

oleh karet yang berbentuk

balon kecil. Prinsip pipet

tetes apabila pada

penerapan tekanan udaradalam ruang

Berfungsi untuk

memindahkan

cairan dari tempat

satu ke tempat

yang lain dalam

skala yang

relative kecil,

hanya ukuran

tetes tanpa

mengkontaminasi

larutan lain

16. Spatula Terbuat dari boro silikat,

memilik bentuk seperti

sendok

Berfungsi untuk

alat bantu

mengambil bahan

padat/kecil dalam


22/79

21

skala kecil da

juga dapay

digunakan untuk

mengaduk larutan

17. Alat diseksi

(Scapel,

pinset, cutter,

gunting)

Terbuat dari stainless steel,

scapel blade memiliki

bentuk seperti pisau,

diujungnya terdapat mata

pisau, pinset memiliki

memiliki bentuk

pejapit/pegangapit runcing

ke bawah

Scapel blade

berfungsi untuk

memotong

eksplan. Pinset

untuk menjepit da

menggambil

eksplan

18. Mirkopipet Berbentuk dan berfungsi

hamper sama dengan pipet

tetes, memiliki instrument

tombol press button untuk

mengambil larutan, untuk

mengeluarkan larutan

dapat menekan tombol

dibawah press button

Berfungsi untuk

memindahkan

cairan dari satu

tempat ke tempat

yang lain dengan

ketelitian tinggi.

19. Botol kultur Terbuat dari kaca,

berbentuk silindris,

menyempit pada bagian

leher dan terdapat tutup

yang biasanya ditutupmenggunakan alumunium

foil

Berfungsi sebagai

tempat media

tumbuh eksplan


23/79

22

20. Rak kultur Terbuat dari

besi/alumunium yang

berbentuk susun atau

bertingkat

Berfungsi untuk

menyimpan botol

yang berisi

eksplan sebagai

penyimpan

eksplan selama

proses

pertumbuhan

eksplan sebelum

di lepaskan ke

lapang

21. Alat destilasi Di dalam alat ini terdapat

filter yang digunakan

untuk menyaring air

sehingga nantinya didapati

air yang siap minum

Berfungsi sebagai

penyedia

kebutuhan

aquadest pada

saat proses

pembuatan media

4.2 Hasil dan pembahasan ruang kultur jaringan

No

.

Nama

ruang

Deskripsi ruang Fungsi Gambar

1. Ruang

persiapan

Ruang persiapan

dipergunakan

sebagai tempat

mempersiapkan

eksplan, medium

dan alat-alat.

Persiapan

pelaksanaan

dalam kultur in-

Berfungsi

sebagai

tempat

persiapan

pelaksanaan

pekerjaan

kultur in-

vitro, mencuci

alat-alat


24/79

23

vitro seperti

pencucian alat-

alat laboratotium,

penyimpanan.alat

, persiapan bahan

tanaman,

persiapan media,

serta sterilisasi

alat dan media.

Terdapat berbagai

peralatan di

ruangan ini

seperti

microwave,

timbangan

analitik, hot plate,

agar dispenser,

autoclave, pH

meter, alat

destilasi, Bunsen

burner, alat-alat

gas, alat diseksi.

Alat-alat untuk

mencuci,

mikropipet dan pipet tetes

laboratorium

dan tempat

menyimpan

alat-alat gelas.


25/79

24

2. Ruang stok

atau ruang

bahan

Merupakan

ruangan yang

berisi baha-baha

yang diperlukan

untuk kultur in-

vitro, menyimpan

bahan-bahan

kimia yang belum

dipergunakan,

biasanya terdapat

almari untuk

menyimpan

bahan dan almari

ES untuk

menyimpan

bahan yang tidak

tahan lama seperti

larutan

Berfungsi

untuk

menyimpan

bahan-bahan

yang

berkaitan

dengan kultur

jaringan.

Menyimpan

bahan-bahan

kimia yang

belum

dipergunakan

disediakan

(Larutan stok)

3. Ruang

transfer

Ruang digunakan

untuk isolasi,

inokulasi dan

subkultur

(penjarangan)

pada kondisi

steril. Diruanganini terdapat LAF

digunakan untuk

transfer atau

penanaman

eksplan di dalam

media, Bunsen

Berfungsi

sebagai

tempat untuk

isolasi bagian

tanaman,

sterilisasi

eksplan, penanama

atau inokulasi

eksplan dalam

media.


26/79

25

burner, cawan

petri, hand

sprayer, alat

diseksi.

4. Ruang

kultur

Terdapat banyak

botol kultur berisi

eksplan yang

dalam masa

pertumbuhan di

tempatkan pad

arak kultur secara

tersusun.

Dilengkapi

dengan AC untuk

menjaga.

Sterilisasi selalu

terjaga dan

tersekat dengan

ruangan lain

dengan pintu

penghubung

selalu tertutup

Berfungsi

sebagai

tempat

meletakkan

botol-botol

kultur dalam

masa

pertumbuhan

eksplan.

5. Ruang

analisa

Tempat

menganalisis

hasil perkerjaankultur in – vitro

yang telah

dilaksanakan,

diperuntukan

untuk keperluan

Berfungsi

sebagai

tempatmenganalisi/

meneliti hasil

perkerjaan

kultur in-vitro


27/79

26

riset, terdapat

mikroskop, gelas

preparat,

mikrotom dan

peralatan lain

sesuai kebutuha

untuk keperluan

riset/ penelian

6. Areal cuci Tempat mencuci

bahan-bahan

keperluan kultur

in-vitro seperti

botol kultur, botol

tekontaminasi,

serta bahan tanam

yang baru diambil

dari lapang

sekaligus juga

untuk mencuci

tangan. Tempat

ini dilengkapi

dengan air yang

mengalir dari

kran dan terdapat

peralatan- peralatan mencuci

seperti ember,

sikat dan sabun

dll.

Sebagai

tempat untuk

membersihka

n berbagai

peralatan dan

tentunya juga

bagian tubuh

khususnya

tangan setelah

melakukan

perkejaan

kultur


28/79

27

7. Ruang

aklimatisas

i

Suatu tempat

yang terdapat rak

sebagai tempat

untuk melatakkan

bibit hasil kultur

jaringan setelah

keluar dari botol

untuk adaptasi

terhadap

lingkungan luar.

Ruang ini

dilengkapi

peranet untuk

mengatur

intensistas cahaya

yang masuk dan

dilengkapi bak air

untuk penyiraman

dan menjaga

kelembaban

ruagan.

Berfungsi

sebagai

tempat

adaptasi bibit

hasil kultur

jaringan

setelah keluar

dari dalam

botol kultur

terhadap

lingkungan

luar.

8. Ruang

pembibitan

/ Nursery

Terdapat rak

sebagai tempat

meletakkan bibit

setelah keluardari ruang ruang

aklimatisasi dan

sudah cukup kuat

berdaptasi

terhadap

lingkungan luar.

Berfungsi

sebagai

temoat

meletakkan bibit setelah

keluar dari

ruang

aklimatisasi

yang sudah

cukup


29/79

28

Memiliki sumber

air untuk

penyiraman

beradaptasi

terhadap

lingkungan

luar.


30/79

29

4.3 Hasil pengamatan dan pembahasan bahan kultur jaringan

No. Nama bahan

kimia

Sifat Simbol Penanggulan

1. Potasium nitrat

(KNO3)

Oksidator,

dapat

membakar

bahan

lain/penyebab

timbulnya api

dan penyabab

sulitnya api

dipandamkan

Hindari

panas serta

ahan mudah

terbakar dan

konduktor

2 Ammonium

nitrat (NHNO3

Eksplosive,

bersifat

mudah

meledak.

Eksplosive

pada keadaan

tertentu

Hindari

benturan,

gesekan,

loncatan api

dan panas

3. Borid Acid

H3BO3

Hazardous,

sharp, and

stingy smells

(Bersifat

berbahaya,

berbau tajam,

dan

menyengat)

Hindari

kontak denga

tubuh atau

hindari

menghirup

zat kimia ini


31/79

30

4. Zinc Sulfate

Heptadtty drate

(ZnSO7H O

Dangerous

for

Eviromental,

berbahaya

bagi

lingkungan,

dan dapat

menyebabkan

gangguan

ekologi

Hindari

pembuangan

langsung ke

lingkungan

5. Iron (II) sulfate

heptahydrate

Hazardous,

strap, and

stingy smells.

Bersifat

berbahaya,

berbau tajam

dan

menyengat

Hindari

kontak

dengan

tubuh/

hindari

menghirup

zat kimia ini.


32/79

31

PERSIAPAN DAN PEMBUATAN MEDIA KULTUR


33/79

32

BAB I


1.1 Tabel stok

VI= 870 ml

Hara Senyawa Media MS

Mg/l Media (C1)

Stok (C2) V2

Makro NH NO3 1650 16500 mg/100 ml 8,7 ml

KNO3 1900 19000 mg/ 100

ml

8,7 ml

CaCl2HO 440 4400 mg/ml 8,7 ml

MgSO 7HO 370 3700 mg/100 ml 8,7 ml

KHPO 170 1700 mg/100 ml 8,7 ml

Mikro FeSO7HO 27,8 2780mg/ 100 ml 0,87 ml

NaEDTA 37,3 3730mg/100 ml 0,87 ml

MnSO4HO 22,3 2230mg/100ml 0,87 ml

ZnSO7HO 8,6 860mg/100ml 0,87 ml

H3 BO3 6,2 62mg/50ml 4,35 ml

Kl 0,83 83mg/50ml 0,435 ml

NaMo2HO 0,25 25mg/50ml 0,435 ml

CuSO5HO 0,25 25mg/100ml 0,087 ml

CaCl2HO 0,25 25mg/100ml 0,87 ml

Vitamin Myonitoso l 100 2500 mg/50ml 1,74ml

Niacin 0,5 50 mg/50ml 0,435 ml

Proyidoxine-

HCL

0,5 50 mg/50ml 0,435 ml

Thiamin-

HCL

0,1 50 mg/100 ml 0,174 ml


34/79

33

Sumber

karbon

Sukrosa 30.000 26,1 gr

Bahan

pemadat

Bacto agar 7500 6,252gr

1.2 Perhitungan

Makro

V1.C1 = V2.C2

870 ml x160

1000 =

160

100

8,7 ml x 165 = V2.165

V2=8,16

16

V2= 8,7 ml

V1.C1 = V2.C2

870 ml x1900

1000 =

1900

100

87 ml x 19 = V2.190

V2=819

190

V2= 8,7 ml


35/79

34

V1.C1 = V2.C2

870 ml x0

1000 =

00

100

87 ml x 19 = V2.190

V2=8,

V2= 8,7 ml

V1.C1 = V2.C2

870 ml x30

1000 =

300

100

8,7 ml x 37 = V2.190

V2=819

190

V2= 8,7 ml

V1.C1 = V2.C2

870 ml x10

1000 =

100

100

8,7 ml x 17 = V2.17

V2=8, .1

1

V2= 8,7


36/79

35

Mikro

V1.C1 = V2.C2

870 ml x,8

1000 =

80

100

V2 =80 ,8

1000 ,8

V2= 0,87ml

EDTA

V1.C1 = V2.C2

870 ml x3,3

1000 =

3,30

100

V2 =803 ,3

10003 ,3

V2= 0,87ml

V1.C1 = V2.C2

870 ml x,3

1000 =

,3

100

V2 =80 ,3

1000 ,3

V2= 0,87ml

V1.C1 = V2.C2

870 ml x8,6

1000 =

860

100

V2 =808,6

10008,6


37/79

36

V2= 0,87ml

V1.C1 = V2.C2

870 ml x6,

1000 = V2.

6,

100

V2 =806,

10006,

V2 =80

1000

=30

1000

= 4,35 ml

Kl

V1.C1 = V2.C2

870 ml x0,83

1000 = V2.

83

0

870 ml. 0,00083 = V2. 1,66

V2 =800,00083

1,66

= 0,435

V1.C1 = V2.C2

870 ml x 0,1000

= V2. 0

870 ml. 0,00025 = V2. 0,5

V2 =800,000

0,

V2= 0,435 ml


38/79

37

V1.C1=V2.C2

870 ml x 0,1000

= V2. 100

870 ml. 0,00025 = V2. 0,25

V2 =800,000

0,

V2= 0,087 ml

V1.C1=V2.C2

870 ml x0,0

1000 = V2.

100

870 ml. 0,00025 = V2. 0,25

V2 =800,000

0,

V2= 0,087 ml

Myonositol

V1.C1=V2.C2

870ml x100

1000 = V2.

00

0

V2 =8

0

V2= 1,74 ml


39/79

38

Niacin

V1.C1=V2.C2

870ml x 0,1000

= V2. 0 0

V2 =8.0,

0

V2= 0,435 ml

Pridoxine HCL

V1.C1=V2.C2

870ml x0,

1000 = V2.

0

0

V2 =8.0,

0

V2= 0,435 ml

Thiamin – HCL

V1.C1=V2.C2

870ml x0,1

1000 = V2.

0

0

870. 0,0001 = V2 . 0,5

V2 =8.0,0001

0,

V2= 0,174 ml

Sukrosa

30000

=

1000

80

1000x = 30.000 x 870

x=30000 .80


40/79

39

x =30.870= 26100

x= 26,1 gr

Bacto agar

00

=

1000

80

x=00.80

1000

x = 6525

x= 6,525 gr


41/79

40

KULTUR KALUS


42/79

41

BAB I


1.1. Hasil pengamatan

PERLAKUAN

ZPT AUKSIN

NO.

BOTOL

DAN

NAMA

SAAT

INISIASI

SAAT

MUNCUL

NYA

TUNAS

GAMBAR

2,4 D

1MG/1

1.Laila:

K1 H3 Bakteri (

30-11-

2105)

2.Riza

K1 H3 Jamur(17-

11-2015)

3.Chyntia

K1 H3 (17-11-

2015)

(23-11-

2015)

4.Rani

K1 H3 Browning

( 23-11-

2015)


43/79

42

2,4 D

1MG/1

5.Asrul

K1 H3 Jamur

(17-11-

2015)

6.Racha

K1 H3 Browning

(20-11-

2015)

7.Ade

K1 H3 Browning

(17-11-

2015)

8.Ayu

K1 H3 Browning

(7-12-

2015)


44/79

43

2,4 D

1MG/1

2,4 D

1MG/1

9.Ali

K1 H3 Jamur (17-

11-2015

10.Fajar

K1 H3 (20-11-

2015)

(23-11-

2015)

11.Rinda

K1 H3 (17-11-

2015)

(23-11-

2015)

12.Nanto

K1 H3 (17-11-

2015)

(23-11-

2015)


45/79

44

% Berkalus:

.

x100%

= 1

x100%=33.33%

% Kontaminasi:

.

x100%

8

1X100%= 66,67%

PERLAKUAN

ZPT AUKSIN

NO.

BOTOL

DAN

NAMA

SAAT

INISIASI

SAAT

MUNCUL

NYA

TUNAS

GAMBAR

IBA

1MG/1

1.Laila:

K2 H3 Bakteri (

30-11-

2105)

2.Riza

K2 H3 Kalus(17-

11-2015)

(23-11-

2015)

3.Chyntia

K2 H3 (17-11-

2015)

(23-11-

2015)


46/79

45

IBA

1MG/1

4.Rani

K2 H3 Browning

( 17-11-

2015)

5.Asrul

K2 H3 Jamur

(20-11-

2015)

6.Racha

K2 H3 Browning

(20-11-

2015)

7.Ade

K2 H3 Browning

(17-11-

2015)


47/79

46

IBA

1MG/1

8.Ayu

K2 H3 Browning

(7-12-

2015)

9.Ali

K2 H3 Jamur

(20-11-

2015

10.Fajar

K2 H3 (20-11-

2015)

(23-11-

2015)

11.Rinda

K2 H3 (17-11-

2015)

(23-11-

2015)


48/79

47

12.Nanto

K2 H3 (17-11-

2015)

(23-11-

2015)

% Berkalus:

.

X100%

1x100%=41,67

% Kontaminasi:

.

X100%

1X100%= 58,33%

1.2 Pembahasan

Pada praktikum kali ini yaitu menganai kultur kalus dengan menggunakan

eksplan wortel. Kalus sendiri merupakan suatu kumpulan sel amorphous(belum

berdifisiensi) yang terjadi dari sel-sel jaringan yang membelah diri secara terus

menerus secara in-vitro atau di dalam tabung dan tidak terorganisasi sehingga

memberikan penampilan massa sel yang bentuknya tidak teratur. Dalam proses

pembuartanya wortel terlebih dahulu dicuci dan dikupas kemudian diambil jaringan

kambium , jaringan kambium inilah yang digunakan sebagai eksplan dalam proses

kultur jaringan wortel. Sebelumya wortel terlebih dahulu direndam dalam larutan bakterisida agar steril dari kontaminasi bakteri dan kemudian direndam di larutan

Clorox 10 dengan kadar berbeda 10%, 5 % sebagai disinfektan, setelah itu

dilakukan sterilisasi sedang dengan menggunakan HgCl untuk menghilangkan

berbagai mikroba yang dapat mengakibatkan kontaminasi pada eksplan. Tujuan

pemberian berbagai larutan yang telah disebutkan diatas sebenarnya sama yaitu

untuk sterilisasi bahan dari kontaminan agar nantinya eksplan dapat tumbuh dengan


49/79

48

ba tanpa adanya kontaminasi yang dapat mengakibatkan eksplan menjadi mati.

Prinsip kultur jaringan sendiri yaitu harus steril dan tentunya dalam pembuatan

media juga harus steril sebagai tempat eksplan untuk tumbuh dan berkembang, agar

eksplan dapat tumbuh dengan baik dan optimal maka media yang dibuat harus dapat

memenuhi kebutuhan unsur-unsur hara ensensial yang dibutuhkan eksplan untuk

tumbuh dan berkembang, untuk memenuhi akan kebutuhan unsur hara eksplan

tersebut, di dalam media ditambahkan berbagai zat seperti vitamin, asam amino,

hormon dan zat pengatur tumbuh (ZPT). Selain untuk memenuhi kebutuhan eksplan

akan unsur hara, vitamin dan zat pengatur tumbuh (ZPT) digunakan untuk

mempercepat pertumbuhan eksplan dan mengatur tumbuhnya eksplan. Namun

dalam penggunaan zat pengatur tumbuh dalam pembuatan media jika terlalu tinggi

dapat menghambat pola pertumbuhan dan perkembangan tanaman, karena interaksi

antar hormone dalam suatu media sangat berpengaruh dalam diferensiasi sel. Zat

pengatur tumbuh ini mempengaruhi pertumbuhan dan morfogensis dalam kultur

kalus. Untuk kultur kalus, zat pengatur tumbuh yang digunakan yaitu zat pengatur

tumbuh dari kelompok auksin yaitu 2,4 D 1mg/1 dan IBA 1 mg/1. 2,4 D memiliki

fungsi penting untuk pemanjangan sel dalam pembentukan kalus sedangkan IBA

( Indole butyric acid) nantinya berfungsi untuk perpajangan akar. Berdasarkan

praktikum kultur kalus wortel ( Daucus Carota L) dengan menggunakan 2

perlakuan yaitu menggunakan zat pengatur tumbuh 2,4 D dan IBA, masing-masing

perlakuan terdiri dari 12 botol kultur . Dari hasil praktikum penanaman eksplan

wortel didapatkan eksplan yang ditanam dalam botol kultur terkena kontaminasi 1

minggu setelah penanaman dengan munculnya jamur berwarna putih dengan ciri-

ciri eksplan menjadi kering dan muncul hifa jamur pada tanaman yang terserang

dan dicirikan dengan adanya garis-garis (seperti benang) yang berwarna putihsampai abu-abu, selain itu juga terdapat eksplan yang terkena bakteri dengan

dicirikan terdapat lendir berwarna putih disekitar eksplan dan di dalam media.

Kontaminasi itu terjadi di dua perlakuan baik itu perlakuan 2,4D dan IBA. Untuk

di perlakuan 2,4 D terdapat 8 eksplan yang terkontaminasi jamur/bakteri dengan

kadar (%) kontaminasi 66,67% sedangkan di perlakuan IBA terdapat 7 eksplan

yang terkontaminasi jamur maupun bakteri dengan kadar kontaminasi (%) 58,33 %.


50/79

49

Penyebab terjadinya kontaminasi bisa dapat diakibatkan karena kesalahan

penaman, saat sterilisasi media dan eksplan atau bahkan pada saat pembuatan yang

kurang steril. Eksplan dapat terkontaminasi oleh beragai mikroorganisme seperti

jamur, bakteri, serangga, virus. Organisme-organisme tersebut secara universal

terdapat pada jaringan tanaman. Banyak yang bersifat pantogenik, artinya

menyebabkan tanaman menjadi rusak bahkan mati karena adanya aktivitas mikroba

yang merusak sel atau jaringan eksplan. Dalam kondisi in-vitro mengandung

sukrosa dan hara dalam konsentrasi tinggi, kelembaban tinggi dan suhu hangat

sangat disukai oleh mikroorganisme, sehingga sering kali tumbuh dan berkembang

cepat, mengalahkan eksplan jika pada proses saat kultur telah terkontaminasi.

Sedangkan terdapat 4 eksplan yang tumbuh kalus pada perlakuan 2,4 D dengan

kadar kalus (%) 33,33% dan terdapat 5 eksplan yang tumbuh kalus pada perlakuan

IBA dengan kadar kalus (%) 41,67%. Terbentuknya kalus ini sebagai respon

terhadap perlukaan (woulding ) yang dilakukan dalam pemotongan umbi wortel.

Setelah terbentuknya kalus maka nantinya dapat menjadi tanaman utuh setelah

melalui proses morfogenesis yang telah di induksi. Dalam proses induksi ini

memerukan agen penginduksi yaitu berupa zat pengatur tumbuh dalam kultur kalus

wortel kali ini menggunakan ZPT dari kelompok auksin yaitu 2,4 D dan IBA.


51/79

50

BAB II

KESIMPULAN

2.1 Kesimpulan

Berdasarkan pembahasan diatas maka dapat diambil kesimpulan sebagai

berikut

1.

Dalam melakukan kultur kalus wortel ( Daucus carota L) harus

memegang keseterilan bahan maupun fasiltas dalam melakukan

penanaman eksplan untuk menghidari kontaminasi dari berbagai macam

mikroorganisme seperti jamur maupun bakteri

2. Untuk dapat memenuhi kebutuhan akan unsur hara dalam media kultur

kalus dilakukan penambahan vitamin, asam amino, hormon dan zat

pengatur tumbuh (ZPT)

3. Zat pengatur tumbuh (ZPT) yang digunakan dalam kultur kalus wortel

yaitu dari golongan auksin 2,4 D untuk pemanjangan sel dalam

pembentukan kalus dan IBA untuk pemajangan akar

4. Prosentase hidup kalus lebih besar pada perlakuan IBA dengan nilai

41,67%

5. Terbentuknya kalus merupakan respon dari perlakuan perlukaan

(Woulding) dalam pemotongan umbi wortel

6. Penyebab terjadinya kontaminasi pada eksplan disebabkan karena

kesalahan penaman, saat sterilisasi media dan eksplan atau bahkan pada

saat pembuatan yang kurang steril

1.2 Saran

Untuk pelaksanaan praktikum sendiri berjalan lancar. Diharapkan

kedapanya fasilitas laboratorium bioteknologi dapat ditingkatkan agar nantinya

praktikan mudah untuk mengerti dan dapat berjalan lancar


52/79

51

DAFTAR PUSTAKA

Abidin, Z. 2000. Dasar-dasar tentang zat pengatur tumbuh. PT. Angkasa.

Bandung

Gunawan, L.W . 2001. Teknik kultur jaringan in-vitro dalam hortikultura.

Penebar Swadaya. Jakarta

Herawan, T . 2004 . Protokol kultur jaringa tanaman hutan. Rajawali Press.

Jakarta

Santoso da F. nursandi. 2004. Kultur jaringan tanaman. Unibraw Press. Malang

Yusnita. 2003. Buku petunjuk praktikum kultur jaringan. UNS press. Surakarta

Zulkarnain. 2009 . Kultur jaringan tanaman. Bumi aksara. Jakarta


53/79

52

KULTUR PUCUK TANAMAN BERKAYU


54/79

53

BAB I


1.1 Hasil pengamatan

PERLAKUAN

ZPT PADA

MEDIA

TANAM

NO.

BOTOL

DAN

NAMA

SAAT

INISIASI

SAAT

MUNCUL

NYA

TUNAS

GAMBAR

1.Laila Jamur

(26-11-

2015)

2.Riza Media

Rusak

(26-11-

2015)

3.Chyntia Bakteri

(26-11-

2015)


55/79

54

MSNAA

0,3 mg/l

BAP 1

mg/l

(P2H3)

4.Rani Inisiasi (7-

12-2015)

26-12-2015

5.Asrul Jamur

(7-12-

2015)

6.Racha Jamur

(7-12-

2015)

7.Ade Jamur

(7-12-

2015)

8.Ayu Bakteri

(7-12-2015)


56/79

55

9.Ali Inisiasi (7-

12-2015)

26-12-2015

10.Fajar Jamur

(26-11-

2015)

11.Rinda Inisiasi (7-

12-2015)

26-12-2015

12.Nanto Inisiasi (7-

12-2015)

26-12-2015


57/79

56

% Berkalus:

.

X100%

1X100%= 33,3%

% Kontaminasi:

.

X100%

8

1X100%= 66,7%

1.2 Pembahasan

Praktikum kali ini mempelajari tentang bagaimana pertumbuhan dari

tanaman. Kultur meristem ini sendiri memiliki dua cara berbeda dalam

penumbuhannya sendiri. Yaitu ada cara kultur pucuk serta kultur mata tunas. Kultur

pucuk sendiri yaitu proses penumbuhan tanaman menggunakan eksplan dari

tumbuhan itu sendiri, khususnya dari pucuk muda tanaman yang akan dikulturkan.

Untuk praktikum kali ini kita memakai kultur pucuk untuk proses

pengkulturannya. Eksplan yang kita yang pakai yaitu tunas Gymelina. Untuk

perlakuan ini sendiri harusnya memakai 2 ZPT yang berbeda, yaitu IBA dan BAP

serta NAA dan BAP. Tetapi dikarenakan terjadi insiden dalam praktikum ini, yaitu

media IBA dan BAP mencair, sehingga NAA dan BAP lah yang digunakan sebagaimedia utama. Fungsi penambahan zat pengatur tumbuh dari kelompok auksin dan

sitokinin yaitu untuk merangsang pertumbuhan sel, sintesis DNA kromosom,

pembentuk tunas, merangsang pertumbuhan akar , akan tetapi jika digunakan dalam

dosis tinggi , maka akan menghalangi pertumbuhan bahkan membunuh.

Untuk percobaannya sendiri digunakan pucuk tanaman muda dari eksplan,

kemudian ditanam di media yang telah disediakan. Setelah itu dilakukan

pengamatan di setiap 4 hari sekali. Berdasarkan tabel yang telah dicantumkan

memberikan hasil bahwa kebanyakan dari pucuk yang ditumbuhkan mengalami

kontaminasi.


58/79

57

Mulai dari terkena bakteri maupun jamur serta ada yang medianya sendiri

rusak, yaitu belum memadat. Untuk media sendiri terjadi karena adanya kesalahan

teknis di ruangan penyimpanan, dimana AC dalam ruangan itu mati dan

menyebabkan media tersebut mencair kembali dan kemungkinan dapat disebabkan

oleh kesalahan dalam pembuatan komposisi awal . Untuk media maupun tanaman

yang tercemar oleh bakteri serta jamur kali ini memiliki banyak alasan.

Yang pertama bisa saja karena kurang sterilnya para pelaku praktikum. Hal

ini bisa sangat membahayakan bagi tanaman tersebut, karena apabila jamur ataupun

bakteri sudah menginvasi media maupun tumbuhan tadi maka dapat menyebabkan

kematian apabila tanaman tersebut tak dapat bersaing. Selain itu penyebab eksplan

tercemar juga bisa karena tak sengaja menjatuhkan eksplan, kemudian menaruhnya

kembali dan menanamnya kembali pada media. Hal ini walau terlihat sepele tapi

dapat mengakibatkan gagalnya penumbuhan tanaman.

Karena apabila tanaman sudah jatuh, sapa tau tanaman tersebut membawa

bibit-bibit jamur ataupun bakteri yang kemudian dibawa tumbuh di media tadi. Dan

apabila kedua hal ini berhasil tumbuh, maka akan sangat membahayakan bagi

kelangsungan hidup tanaman yang kita kulturkan di botol kultur. Sedangkan untuk

tanaman yang telah tumbuh, membutuhkan waktu yang lumayan lama. Untuk mulai

tumbuh sendiri kebanyakan mencapai waktu-waktu paling akhir di praktikum. Dan

jumlah dari tanaman yang tumbuh ini sangatlah sedikit, karena kebanyakan eksplan

yang kita pakai kontaminasi semua.


59/79

58

BAB II

PENUTUP

2.1 Kesimpulan

Berdasarkan pembahasan diatas, maka dapat diambil kesimpulan sebagai

berikut.

1.

Kultur pucuk adalah kultur jaringan yang menumbuhkan tanaman melalui

pucuk muda dari tanaman itu sendiri

2. Kultur meristem ini terbagi menjadi dua, ada kultur pucuk serta kultur

mata tunas

3. Dalam kultur organ pucuk mengguankan zat pengatur tumbuh dari

kelompok auksin dan sitokinin yaitu IBA, NAA dan BAP

4. Rusaknya media dalam kultur pucuk yaitu dapat disebabkan oleh karena

adanya kesalahan teknik matinya AC dalam ruangan yang menyebabkan

media menjadi mencair kembali dan kesalahan dalam pembuata komposisi

awal media juga bisa mempengaruhi.

5. Penyebab kontaminasi dalam eksplan kultur pucuk diantaranya dapat

disebabkan oleh kurang sterilnya praktikan dan kesalaha praktikan dalam

proses penanaman eksplan dalam media sehingga menyebabkan eksplan

tidak steril

6. Fungsi penambahan zat pengatur tumbuh dari kelompok auksin dan

sitokinin yaitu untuk merangsang pertumbuhan sel, sintesis DNA

kromosom, pembentuk tunas, merangsang pertumbuhan akar , akan tetapi

jika digunakan dalam dosis tinggi , maka akan menghalangi pertumbuhan

bahkan membunuh

2.2 Saran

Mengingat rusaknya media karena kesalahan teknis fasilitas labaratorium,

maka kedepanya fasilitas harus dapat ditingkatkan kembali.


60/79

59

DAFTAR PUSTAKA

Dewi, Intan Ratna. 2008. Peranan dan Fungsi Fitohormon bagi Pertumbuhan

Tanaman. Fakultas Pertanian Universitas Padjajaran.Bandung

Gunawan, L.W. 2009. Teknik Kultur Jaringan Tumbuhan. Laboratorium Kultur

Jaringan, Pusat Antar Universitas (PAU) Institut Pertanian Bogor. Bogor.

P. 304

Hardini, Yunita. 2009. Kultur Jaringan Tanaman. Online,

http://dinhardini.blogspot.co.id/. Diakses tanggal 21 november 2015

Luri, Sepdian. 2009. Macam Macam Mikropropagasi. Online, http://kultur-

jaringan.blogspot.co.id/. Diakses tanggal 21 november 2015

Sriyanti, D.P. dan A.Wijayani. 1994. Teknik Kultur Jaringan. Yayasan

Kansius.Yogyakarta. Hal. 18, 54, 57, 63, 67, 69, 82-83.

Tanamaninvitro. 2012. Zat Pengatur Tumbuh. Onine,

http://tanamaninvitro.blogspot.co.id/. Diakses tanggal 21 November 2015

http://dinhardini.blogspot.co.id/http://dinhardini.blogspot.co.id/http://kultur-jaringan.blogspot.co.id/http://kultur-jaringan.blogspot.co.id/http://kultur-jaringan.blogspot.co.id/http://tanamaninvitro.blogspot.co.id/http://tanamaninvitro.blogspot.co.id/http://tanamaninvitro.blogspot.co.id/http://kultur-jaringan.blogspot.co.id/http://kultur-jaringan.blogspot.co.id/http://dinhardini.blogspot.co.id/


61/79

60

KULTUR ORGAN DAUN


62/79

61

BAB I

PEMBAHASAN

1.1 Data pengamatan

PERLAKUAN

EKSPLAN

NO.

EKSPLAN

SAAT

INISIASI

SAAT

BERKALUS

WARNA

KALUS

GAMBAR

1.Riza Kalus (16-

12-2015)

Hijau

2.Freda Kalus (16-

12-2015)

Hijau

3.Fajar Jamur

(3-12-

2015)


63/79

62

MS IBA

0,5 ppm

BAP 0,7

ppm

4.Racha Jamur

(3-12-

2015)

5.Ali Jamur

(7-12-

2015)

6.Asrul Bakteri

(7-12-

2015)

7.Ayu Jamur

(3-12-

2015)


64/79

63

8.Rani Inisiasi

(7-12-

2015)

9.Ade Jamur

(3-12-

2015)

10.Chyntia Jamur

(3-12-

2015)

11.LaIla Kalus (16-

12-2015)

Hijau


65/79

64

12.Rinda Jamur

(7-12-

2015)

%Tanaman Berkalus:

.

X100%

:

X100%= 33,3%

%Tanaman Kontaminasi:

.

X100%

:

X100%= 66,67%


66/79

65

PERLAKUAN

EKSPLAN

NO.

EKSPLAN

SAAT

INISIASI

SAAT

BERKALUS

WARNA

KALUS

GAMBAR

MS NAA

0,5 ppm

BAP 0,7

ppm

1.Riza Jamur

(7-12-

2015)

2.Freda Inisiasi

(16-12-

2015)

3.Fajar Inisiasi

(7-12-2015)

4.Racha Inisiasi

(26-12-

2015)


67/79

66

MS NAA

0,5 ppm

BAP 0,7

ppm

5.Ali Jamur

(7-12-

2015)

6.Asrul Kalus (16-

12-2015)

Hijau

7.Ayu Bakteri+

Jamur

(3-12-

2015)

8.Rani Inisiasi

(16-12-

2015)

9.Ade Jamur

(7-12-

2015)


68/79

67

10.Chyntia Jamur

(7-12-

2015)

11.Layla Kalus (16-

12-2015)

Hijau

12.Rinda Inisiasi

(16-12-

2015)

%Tanaman Berkalus:

.

X100%

:

X100%= 58,3%

%Tanaman Kontaminasi:

.

X100%

:

X100%= 41,7%


69/79

68

1.2 Pembahasan

Praktikum kali ini yaitu berhubungan dengan kultur jaringan khususnya yaitu

kultur organ dari suatu tanaman. Dan kultur organ yang dipakai pada kultur kali ini

yaitu kultur organ daun. Praktikum kali ini yaitu akan menumbuhkan tanaman dari

bagian daun tersebut. Dimana manfaat dari kultur daun sendiri yaitu untuk

menumbuhkan tanaman dari bagian yang dimilikinya, khusunya yaitu bagian

daunya sendiri. Secara umum kultur organ dikembangkan dari tanaman (organnya)

yang memiliki respon pertumbuhan yang baik seperti daun muda, tunas dan yang

lainnya. Adapun tahapan yang biasa dilakukan dalam kultur organ meliputi

pembuatan media, inisiasi, sterilisasi, multiplikasi, pengakaran, dan aklimatisas i.

Untuk eksplan yang kita pakai sendiri yaitu menggunakan daun dari

tembakau yang sudah dikulturkan terlebih dahulu. Dan kita mengambil bagian dari

tembakau ini sendiri untuk kita kulturkan kembali. Dan untuk media sendiri dibagi

menjadi 2 dengan ZPT yang berbeda. Yang pertama menggunakan ZPT IBA dan

BAP serta yang kedua menggunakan ZPT NAA dan BAP. Fungsi penambahan ZPT

dari kelompok auksin dan sitokinin dalam kultur organ daun yaitu untuk

merangsang pertumbuhan sel, pembentukan tunas dan BAP berfungsi untuk

merangsang tumbuhya tunas aksiler.

Menurut tabel yang tercantum diketahui bahwa media kedua, yaitu media

NAA dan BAP merupakan media yang terbanyak mengalami pertumbuhan

tanaman daripada media yang pertama. Hal ini dibuktikan dengan jumlah daun

yang mengalami inisiasi dan berkalus lebih banyak dari media pertama. Sehingga

bisa ditarik hipotesis bahwa pada media yang kedua ini merupakan media yang

ideal dan optimum bagi pertumbuhan dari organ daun itu sendiri.

Hal ini bisa dikarenakan ZPT yang ada pada media kedua ini lebih dapat

diterima oleh eksplan daun yang ditanam disini. Dimana ZPT pada media kedua

dapat dengan mudah diserap dan dicerna oleh eksplan yang ditanam pada media

kedua ini. Sehingga daun disini mengalami banyaknya pertumbuhan daripada daun


70/79

69

yang ditanam di media pertama tadi. Dan menjadikan ZPT pada media kedua

merupakan ZPT yang optimal yang dapat diserap dengan cepat oleh tumbuhan dan

dapat membantu proses pertumbuhan dari tanaman itu sendiri.

Selain itu juga unsur kontaminasi juga tak lupa selalu ada pada setiap

praktikum yang kita lakukan. Mulai dari eksplan yang terkena serangan jamur

maupun dia terkena serangan bakteri. Hal ini semua bisa ditarik hipotesis,

kontaminasi ini disebabkan kurang terjaga sterilisasi pada saat melakukan

praktikum sendiri. Baik pelaku praktikan yang kurang menjaga kebersihannya

ataupun pada saat pelaksanaannya praktikan melakukan hal yang cerobih seperti

mengeluarkan tangan pada saat melakukan proses kultur di LAF atau mungkin saja

menjatuhkan bahan eksplan yang akan dipakai. Hal ini walau terlihat sepele tapi

sangat mempengaruhi proses dalam kita melakukan proses pengkulturan. Dimana

apabila sampai tanaman yang kita kulturkan tadi sampai terkontaminasi maka

dampaknya akan menghambat pertumbuhan dari tanaman tadi, bahkan bisa jadi

membuat tanaman tersebut malah mati.


71/79

70

BAB II

PENUTUP

2.1 Kesimpulan

Berdasarkan pembahasan diatas, maka dapat diambil kesimpulan sebagai

berikut

1.

Kultur organ yaitu kultur jaringan yang memakai organ dari suatu tanaman

khususnya itu daun.

2. Kultur organ daun sendiri berfungsi untuk menumbuhkan tanaman dari

bagian tanaman itu sendiri, semisal dari daun tanaman itu.

3. Tahapan yang biasa dilakukan dalam kultur organ meliputi pembuatan

media, inisiasi, sterilisasi, multiplikasi, pengakaran, dan aklimatisasi.

4. Fungsi penambahan ZPT dari kelompok auksin dan sitokinin dalam kultur

organ daun yaitu untuk merangsang pertumbuhan sel, pembentukan tunas

dan BAP berfungsi untuk merangsang tumbuhya tunas aksiler.

5.

Perlakuan NAA dan BAP merupakan media yang terbanyak mengalami

pertumbuhan tanaman daripada media yang pertama. Hal ini dibuktikan

dengan jumlah daun yang mengalami inisiasi dan berkalus lebih banyak dari

media pertama.

6.

Faktor yang menyebabkan eksplan mengalami kontaminasi baik itu oleh

bakteri maupun jamur yaitu praktikan dalam proses penanaman eksplan ke

dalam media kurang hati-hati sehingga mengakibatkan eksplan

terkontaminasi.

7. Eksplan yang terkontaminasi dapat menyebabkan pertumbuhan eksplan

menjadi terhambat bahkan dapat mengalami kematian.

2.2 Saran

Agar praktikan dapat mengerti dan mendapatkan data yang benar-benar

valid, maka berbagai fasilitas laboratorium harus lebih ditingkatkan.


72/79

71

DAFTAR PUSTAKA

Uswaganti, 2014. Manfaat kultur organ . PT. angkasa. Surabaya

Rahmadewi, 2010. Kultur organ daun tanaman. PT. Erlangga . Jakarta

Santoso, 2009. Pengaruh zat pengatur tumbuh dalam kultur in-vitro. Unibraw

press. Malang

Tatang, 2014. Kultur Organ daun tanaman hutan. Institut Pertanian Bogor. Bogor


73/79

72

AKLIMATISASI TANAMAN ANGGREK


74/79

73

BAB I


1.1 Data pengamatan

NO MEDIA AKAR

PAKIS

MEDIA MOS GAMBAR/FOTO

1. Akar Pakis 1

kelompok 2: 90%

2. Akar Pakis 2

kelompok 2: 50%

3. Akar Pakis 1

kelompok 1: 70%

4. Akar Pakis 2

kelompok 1:

100%


75/79

74

5. Akar Mos 1

kelompok 1: 40%

6. Akar Mos 2

kelompok 1: 90%

7. Akar Mos 1

kelompok 2: 90%

8. Akar Mos 2

kelompok 2: 90%

% Tanaman Hidup: ∑

X 100%

:

8 X100%= 87.5%


76/79

75

1.2 Pembahasan

Praktikum kali ini yaitu mengenali bagaimana proses aklimatisasi anggrek.

Aklimatisasi sendiri adalah proses pemindahan planlet dari botol-botol kultur

jaringan ke lahan dengan lingkungan yang terkendali, terutama terkendali akan

ketersediaan cahaya dan kelembaban. Dilakukannnya aklimatisasi ini yaitu untuk

mengenalkan tanaman pada lingkungan baru dan penyesuaian akan tanaman

terhadap lingkungan luar.

Untuk jenis anggrek yang digunakan pada penelitian kali ini yaitu D.Savin

White. Anggrek ini sendiri merupakan anggrek yang ditanam sebelumnya di dalam

planlet, kemudian kita aklimatisasikan. Untuk umur anggrek yang kitaaklimatisasikan sendiri, anggrek ini berumur 6 bulan. Dan untuk aklimatisasi

anggrek ini sendiri kita memakai media tanam yang berbeda-beda.

Media yang digunakan untuk untuk pengaklimatisasian ini sendiri

menggunakan media akar pakis beserta mos. Dengan penggunaan 2 media ini kita

mengecek media manakah yang paling cocok untuk media aklimatisasi dari

anggrek yang kita uji cobakan ini. Dan dari hasil yang didapat yaitu membuktikan

bahwa menunjukkan bahwa kedua media ini bisa dibilang cocok untuk aklimatisasi

tanaman anggrek.

Karena dalam tabel yang telah tersedia, rasio tumbuh mereka juga sama.

Hanya saja untuk pertumbuhan individu lebih bagus pada mos. Dimana anggrek

yang diaklimatisasikan pada media mos 3 dari 4 yang ditanam mengalami

pertumbuhan yang signifikan, dengan bagian yang tumbuh sekitar 90%. Hal ini

dapat dibandingkan dengan media akar pakis yang hanya 2 dari 4 yang ditanam

yang mengalami pertumbuhan signifikan. 2 dari tanaman lainnya pada media akar

pakis sendiri mengalami pertumbuhan dibawah 50%.

Hal ini bisa disebabkan karena pada media mos sendiri, media ini lebih

menyerap banyak air daripada media akar pakis. Sehingga dengan banyaknya

ketersediaan air dalam media, membuat anggrek sendiri bisa tumbuh berkembang

karena kebutuhan airnya sendiri tercukupi. Selain itu juga media moss sendiri


77/79

76

memiliki kandungan nitrogen dan sedikit fosfor yang berfungsi untuk merangsang

pertumbuhan tanaman dan mempercepat pertumbuhan dan pembungaan pada

tanaman anggrek. Dan hal ini lah yang membuat nilai tambah dari moss sendiri

karena 2 kandungan hara tadi dapat mempengarui pertumbuhan dari anggrek itu

sendiri.

Selain itu juga faktor penyebab kematian pada praktikum kali ini lebih banyak

disebabkan oleh daun dari anggrek yang terserang bakteri. Dikarenakan daun yang

terserang bakteri ini menyebabkan anggrek tak dapat tumbuh secara maksimal.

Serta dapat diasumsikan bahwa anggrek yang diaklimatisasikan kali ini masih

belum siap untuk dikeluarkan. Dimana kebanyakan anggrek yang kita

aklimatisasikan terkena serangan bakteri. Sehingga membuat anggrek sendiri

memiliki daya hidup yang rendah dan bisa saja anggrek tersebut mengalami

kematian.

Solusi yang bisa dilakukan pada praktikum kali ini yaitu dimana

dilakukannya perawatan secara berkala dan dapat menyemprotkan bakterisida ke

tanaman anggrek sesuai dengan dosis yang dianjurkan atau dapat menggunakan

pestisida nabati yang tentunya ramah lingkungan. Serta juga kita harus mengetahui

kesiapan dari planlet anggrek sendiri, apakah anggrek ini sudah siap untuk

diaklimatisasikan atau tidak. Karena apabila anggrek masih belum waktu

aklimatisasi, lalu kita paksa untuk aklimatisasi maka akan menimbulkan kematian

pada tanaman itu sendiri. Sehingga diharapkan kita bisa lebih mengetahui seluk

beluk dari tanaman yang akan kita aklimatisasi.


78/79

77

BAB II

PENUTUP

2.1 Kesimpulan

Berdasarkan pembahasan diatas, maka dapat diambil kesimpulan

sebagai berikut

1.

Media yang digunakan pada aklimatisasi tanaman anggrek adalah akar

pakis beserta moss

2. Faktor yang mempengaruhi keberhasilan Aklimatisasi sendiri antara

lain ada cahaya, suhu, kelembapan serta ketersediaan air

3. Aklimatisasi sendiri berperan bagi penyesuaian anggrek pada

lingkungan sekitarnya, sehingga bisa dibilang aklimatisasi yaitu cara

pengenalan tanaman dari planlet ke lingkungan luar.

4. Terdapat solusi untuk mengatasi pencegahan anggrek mengalami

kematian dan terkena kontaminasi yaitu dengan perawatan secara

berkala dan penyemprotan tanaman anggrek menggunakan bakterisida

sesuai dosis pemakaian atau menggunakan pestisida nabati yang ramah

lingkungan.

5. Rasio tumbuh pada aklimatisasi tanaman anggrek terbesar yaitu

dengan menggunakan media moss dengan nilai 90%, karena media ini

lebih banyak menyerap air daripada media akar pakis dan memiliki

kandungan nitrogen dan fosfor yang berfungsi untuk merangsang

pertumbuhan tanaman dan mempercepat pertumbuhan dan

pembungaan pada tanaman anggrek

2.2 Saran

Kedepannya untuk fasilitas untuk aklimatisasi dapat ditingkatkan, karena

fasilitas yang sekarang begitu minum sehingga pengamatan tidak dapat

menghasilkan data yang valid.


79/79

DAFTAR PUSTAKA

Beni , 2007. Macam-macam media akimatisasi kultur jaringan. PT. Angkasa.

Bandung.

Fatimah, 2013. Media kultur jaringan . Unibraw Press. Malang

Herawan, 2006. Kultur jaringan tanaman anggrek . Bumi aksara. Jakarta

Rossa, 2011. Teknik kultur jaringan tanaman. UNS press. Surakarta

Trubus, 2005. Aklimatisasi tanaman kultur jaringan. Penebar swadaya. Jakarta

Untung, S. 2013. Aklimatisasi tanaman anggrek . UMM press. Malang

laporan praktikum bioteknologi hutan.pdf

Documents