i

LAPORAN PRAKTIKUM

RESPIRASI

Oleh :

Golongan F/ Kelompok 1B

1. Dika Probo Pangestu 161510501011

2. Kizah Musdalifah 161510501012

3. Eka Pransiska Utamala Malinda 161510501015

LABORATORIUM FISIOLOGI TUMBUHAN

PROGRAM STUDI AGROTEKNOLOGI

FAKULTAS PERTANIAN

UNIVERSITAS JEMBER

2017

1

BAB 1. PENDAHULUAN

1.1 Latar Belakang

Tumbuhan termasuk makhluk hidup yang juga memerlukan adanya energi

untuk melakukan segala aktivitas mereka. Aktivitas tersebut dapat berupa sintesis,

gerak, absorbsi unsur hara serta transpor elektron yang sebelumnya dari proses

respirasi energi kimia yang tersimpan akan diubah menjadi ATP yang memiliki

energi tinggi sehingga mampu mendukung proses metabolisme dan beberapa

aktivitas / proses hidup tanaman. Tanaman dalam memperoleh nutrisi atau

makanan bergantung pada lingkungan sekitar mereka, ketersediaan nutrisi tersebut

harus mampu mencukupi kebutuhan dari tanaman. Proses reaksi kimia dalam sel

tumbuhan membutuhkan unsur penting yakni oksigen. Ketersediaan oksigen pada

lingkungan sekitar juga sangat diperlukan.

Respirasi dapat berlangsung secara aerobik maupun anaerobik dalam sel

tanaman. Respirasi aerob yakni proses yang membutuhkan adanya oksigen dan

repirasi anaerob sendiri proses tidak membutuhkan adanya oksigen atau disebut

juga fermentasi. Pengukuran laju metabolisme dapat dilakukan dengan mengukur

banyaknya oksigen yang dikonsumsi makhluk hidup yang diamati per satuan

waktu. Beberapa hal tersebut dapat terjadi karena pada proses oksidasi

memerlukan oksigen dari bahan makanan yang diserap dan akan menghasilkan

suatu produk keluaran dalam bentuk energi. Laju pada metabolisme dapat

diperkirakan dengan melihat laju pada konsumsi/serapan tanaman terhadap

oksigen.

Kegiatan respirasi yang dilakukan oleh manusia serta hewan terjadi siang

dan malam hari meskipun saat mereka beristirahat. Tumbuhan, melakukan proses

respirasi saat malam hari serta melakukan kegiatan fotosintesis di siang hari , hal

tersebut dilakukan tumbuhan dikarenakan saat siang hari tumbuhan dapat

memperoleh energi dari sinar matahari yang optimal ,akan tetapi malam hari

tumbuhan tetap melakukan proses fotosintesis saat mendapatkan pencahayaan

yang memadai sehingga mampu mengurai CO2 yang terdapat di udara.

2

Tumbuhan memiliki ciri tersendiri apabila terjadi proses respirasi yakni

dimana hasil dari proses respirasi berupa atp dan reaksi fotosintesis tersebut

dibentuk dari penyimpanan bahan cadangan makanan contohnya lemak dan

tepung. Memerlukan konsumsi oksigen pada proses siklus asam trikarboksilat,

jadi pada kondisi kekurangan oksigen proses tersebut tidak akan berjalan berbeda

apabila terdapat jaringan parenkim pada tanaman tertentu. Daun sebagai tempat

terjadinya reaksi respirasi, lebih tepatnya pada bagian daun mitokondria dan

sitoplasma yang dimana reaksi tersebut sangat penting sebab mampu melepaskan

energi dari gula. Pengendalian reaksi kimia lain melalui ATP.

Pembakaran dan respirasi termasuk pada proses pelepasan energi potensial

yang memiliki perbedaan. Pembakaran berlangsung seacara tidak terkontrol

sehingga antar molekul terpecah, menyeluruh sehingga molekulnya terbakar

secara keseluruhan, energi yang dihasilkan berbentuk panas dan menyala.

Respirasi berlangsung secara terkontrol, terjadi secara pelan-pelan, hasil dari

proses tersebut dalam bentuk ATP yang dipecah apabila saat diperlukaan saja.

1.2 Tujuan

1. Mengetahui volume O2 dan CO2 yang dihasilkan dari proses respirasi serta

membuktikan bahwa suhu berpengaruh pada proses respirasi.

3

BAB 2. TINJAUAN PUSTAKA

Respirasi adalah suatu proses dimana terjadi pertukaran reaksi kimia yang

terjadi antara organisme dengan lingkungannya. Makhluk hidup melakukan

respirasi, terutama tumbuhan yang digunakan untuk mengambil oksigen yang

berasal dari udara kemudian membuangnya dalam bentuk karbondioksida. Proses

respirasi yaitu penguraian gula serta pelepasan energi dari sel tumbuhan. Respirasi

dilakukan pada stomata lentisel dan ruang antar sel. Respirasi dapat dibedakan

menjadi 2 macam yaitu, respirasi aerob yang memerlukan bantuan oksigen untuk

menguraikan gula dan anaerob yang tidak memerlukan bantuan oksigen

(Nelistya., 2009).

Respirasi terdiri dari beberapa tahapan yaitu, tahapan glikolisis, siklus krebs,

dan rantai transpor elektron. Tahapan glikolisis merupakan suatu reaksi

pemecahan molekul glukosa (C6) menjadi asam piruvat (C3) yang secara langsung

dilakukan dalam sitoplasma secara anaerob, menghasilkan suatu energi yang

berupa 2 molekul ATP. Proses awal yaitu masuknya glukosa dalam sel melalui

protein yang terdapat pada membran sel secara spesifik, kemudian setelah glukosa

masuk ke dalam sel sitoplasma, akan mengalami suatu proses yang disebut

dengan glikolisis. Pada glikolisis gula akan dirubah dalam bentuk heksosa yaitu

glukosa (Rahmatan dkk., 2012).

Mekanisme secara umum yang beralih antara mode respirasi katabolik dan

anabolik, serta sarana umum yang digunakan untuk mengendalikan status pada

karbon, energi dan redoks sel. Pengangkutan aktif ion pada mineral yang

digunakan ke dalam tanaman adalah suatu proses intensif energi yang didukung

oleh respirasi pada tanaman. Respirasi tanaman dapat pula dibagi ke dalam proses

pertumbuhan sebagai pendukung, yang dapat mendukung proses perawatan serta

pengangkutan ion secara khusus. Proses pengangkutan tersebut bersifat dinamis

dan bervariasi, sebab ATP cenderung pada kedinamisan dan bervariasi

(Vanlerberghe., 2013).

Proses respirasi sebagai substrat sumber energi dapat menurunkan total asam

pada saat penyimpanan yang dikarenakan penggunaan suatu asam-asam organik

4

yang terdapat pada tanaman. Penurunan total tersebut dikarenakan dalam proses

respirasi, gula terurai menjadi asam piruvat yang daoat menghasilkan CO2 dan

H2O. Akibat yang ditimbulkan oleh penggunaan asam-asam organik tersebut

adalah jumlah asam organik dapat menurun yang menyebabkan nilai dari asam

juga menurun. Laju respirasi dapat menahan penggunaan asam-asam organik

sehingga dapat ditekan untuk mempertahankan total asam pada tanaman selama

dalam proses penyimpanan (Novita dkk., 2012).

Respirasi dipengaruhi oleh beberapa faktor yaitu substrat yang tergantung

pada ketersediaan substrat utama dalam bentuk karbohidrat, temperatur dapat

mempengaruhi kerja suatu enzim dan oksigen yang berfungsi sebagai tempat

penerimaan elektron pada daur krebs. Respirasi memiliki strategi pertumbuhan

yang mengakolasikan suatu fraksi karbon yang relatif tinggi menuju ke akar,

dapat meningkatkan suatu tingkat dimana dapat mengekstrak uap air dari matriks

tanaman. Strategi pertumbuhan tersebut akan dapat menghasilkan suatu biaya

metabolisme pada respirasi pertumbuhan dan perawatan nyata sebagai langkah

untuk biomassa akar tambahan pada tanaman (Pavlick et al., 2013).

Respirasi aerob dan fotosintesis dapat didukung dengan adanya penggenangan

sebagai salah satu strategi untuk penghindaran (escape strategy) terhadap

penggenangan untuk membantuk dalam kebutuhan oksigen dan karbondioksida.

Pada saat tanaman kekurangan oksigen (keadaan hipoksia), maka akar adventif

akan terbentuk sebagai upaya untuk mencari tekanan oksigen yang tinngi. Akar

tersebut akan mengurangi pengaruh buruk yang ditimbulkan oleh adanya

genangan dengan memperluas area perakaran di udara dan meningkatkan respirasi

aerob serta mengoksidasi rizosfer (Rohmah dkk., 2016).

Peningkatan respirasi dan kapasitas AOP yang terdapat pada tanaman dingin

akan melindungi terhadap spesies oksigen reaktif (ROS) yang ada di mitokondria

dan photodamage pada kloroplas. Pengonsumsian yang berlebihan akan

mereduktan melalui jaringan transpor elektroda negatif pada alternatif

mitokondria. Peningkatan respirasi mitokondria terutama yang didukung oleh

jalur oksidatif sitokrom (COP) (Gandin et al., 2014).

5

BAB 3. METODE PRAKTIKUM

3.1 Waktu dan Tempat

Praktikum Agrobiosains yang berjudul “Respirasi” dilaksanakan pada hari

Sabtu, 14 Oktober 2017 pukul 16.00 – 17.30 WIB di Laboratorium Fisiologi

Tumbuhan Fakultas Pertanian Universitas Jember.

3.2 Alat dan Bahan

3.2.1 Alat

1. Erlenmeyer 250 cc.

2. Neraca.

3. Kertas saring.

4. Respirometer.

5. Beaker glass

6. Botol semprot.

7. Biuret

3.2.2 Bahan

1. Biji imbibisi kacang hijau, kecambah kacang hijau (24 jam dan 48 jam).

2. Larutan CaCl2 0,2 N.

3. Larutan NaOH 0,2 N.

4. Larutan HCl 0,05 N.

5. Aquadest.

6. Vaseline.

7. Indikator pp.

3.3 Pelaksanaan Praktikum

1. Memasukkan sedikit NaOH (1 butir) ke dalam dasar respirometer dan

memasukkan pula kassa logam ke dalam tabung objek yang telah diisi oleh

6

biji atau kecambah kacang hijau sebanyak 15 butir dengan ukuran atau tinggi

kecambah kacang hijau yang sama.

2. Menutup sementara respirometer dengan tangan, agar NaOH tidak menguap.

3. Mengolesi vaseline pada lingkar tabung objek dan tabung pengumpul

respirometer.

4. Menutup tabung objek dengan tabung pengumpul.

5. Mengisi alat suntik dengan sedikit tinta dengan menyedotnya.

6. Menyuntikkan tinta satu tetes kecil ke ujung atas pipa ukur dan tabung

pengumpul hingga mencapai angka 0.

7. Melihat perubahan tetes tinta (menurun) dalam waktu 2 menit dalam pipa

ukur. Mencatat perubahan tetes tinta yang menunjukkan pemakaian volume

oksigen oleh biji atau kecambah kacang hijau dalam waktu 2 menit.

8. Mengeluarkan kassa logam dari respirometer.

9. Menuangkan aquadest 5 ml ke dasar tabung respirometer yang terdapat

NaOH.

10. Menuangkan larutan NaOH ke dalam erlenmeyer.

11. Menuangkan 15 ml aquadest ke dalam erlenmeyer yang terisi larutan NaOH

dan menggoyangkan erlenmeyer hingga butiran NaOH larut dalam aquadest.

12. Menuangkan CaCl2 0,2 N ke dalam erlenmeyer larutan NaOH dan

menggoyangkannya hingga terdapat endapan CaCO3.

13. Menyaring endapan CaCO3 dengan kertas saring.

14. Menyemprot endapan CaCO3 pada kertas saring dengan aquadest sebanyak

100 ml.

15. Meneteskan indikator pp sebanyak 5-10 kali ke dalam larutan endapan

CaCO3 hingga larutan tersebut berwarna pink.

16. Mentitrasi larutan endapan CaCO3 yang telah berwarna pink dengan HCl 0,05

N hingga larutan tersebut berubah menjadi bening dan mencatat volume

titrasi tersebut.

17. Menghitung volume karbondioksida dengan rumus : V = x N.HCl x

Mr.HClx V. HCl

Keterangan : N.HCl = 0,05

7

Mr. HCl = 44

18. Menghitung volume oksigen yang terpakai dengan rumus : V= 3,14 x 0,75 x

0,75 x (perubahan posisi tetes air) mm3.

19. Menghitung Kuosien Respirasi (KR) dengan rumus : KR =

20. Mencatat seluruh perhitungan ke dalam tabel.

3.4 Variabel Pengamatan

1. Volume CO2.

2. Volume O2.

3. Kuosien Respirasi

3.5 Analisis Data

Perolehan data yang dilakukan selama kegiatan praktikum selanjutnya akan

dilakukan dengan analisis statistik deskriptif.

8

BAB 4. HASIL DAN PEMBAHASAN

4.1 Hasil

No. Perlakuan Indikator Perlakuan

Volume O2 Volume CO2

1. Imbibisi 1,47 5,94

2. 24 Jam 0,65 1,55

3. 48 Jam 2,72 2,56

Data diatas merupakan data hasil pengamatan respirasi pada biji kacang

hijau yang memperoleh hasil volume O2 dan volume CO2. Biji kacang hijau yang

dilakukan untuk kegiatan pengamatan yang diperlakukan dengan cara imbibisi

dapat menghasilkan volume O2 sebanyak 1,47 dan volume CO2 sebanyak 5,94.

Kecambah kacang hijau yang berusia 24 jam dilakukan pengamatan yang

menghasilkan volume O2 sebanyak 0,65 dan volume CO2 sebanyak 1,55.

Kecambah kacang hijau yang berusia 48 jam dilakukan pengamatan yang

menghasilkan volume O2 sebnyak 2,72 dan volume CO2 sebanyak 2,56. Volume

O2 dan volume CO2 yang dihasilkan dapat di hitung dengan perhitungan sebgai

berikut:

Perlakuan Imbibisi

Volume O2 = 3,14 x (0,75)2 x

= 3,14 x (0,75)2 x

= 1,47

Volume CO2 = ½ x V x HCl x N x HCl x Mr x HCl

= ½ x 5,4 x 0,05 x 44

= 5,94

KR =

=

= 4,04

9

4.2 Pembahasan

Biji dan tanaman baru dapat melakukan respirasi layaknya makhluk hidup

lain. Respirometer merupakan alat untuk mengamati proses respirasi pada biji

kecambah. Pengamatan yang telah dilakukan dengan menggunakan alat

respirometer yaitu kecambah kacang hijau di imbibisi, kecambah kacang hijau

dengan usia 24 jam, dan kecambah usia 48 jam.

Cara untuk mengetahui volume O2 dan volume CO2 yang ada pada

kecambah kacang hijau yaitu menggunakan bahan berupa larutan NaOH, HCL,

dan larutan CaCl. Larutan yang telah disiapkan terlebih dahulu selanjutnya

langkah awal yang dilakukan yaitu memasukkan NaOH yang masih dalam bentuk

butiran yang padat. Ujung penutup tabung di olesi menggunakan vaseline.

Langkah selanjutnya yaitu memasukkan kacang hijau yang telah di imbibisi

terlebih dahulu. Fungsi dari larutan NaOH sendiri yaitu untuk dapat menyerap

oksigen yang yang dikandung dalam biji kacang hijau. Larutan NaOH telah

diberikan dan dimasukkan dalam tabung maka langkah selanjutnya yaitu ujung

pada tabung di tutup lalu diberikan tinta hitam dengan takaran titik nol.

Langkah awal telah dilakukan maka langkah selanjutnya yaitu menunggu

tinta yang di suntikkan ke dalam respirometer selama 2 menit. Perubahan yang

terjadi selama selang waktu 2 menit tersebut yaitu tinta tersebut akan bergerak ke

bawah dan tinta akan menjauhi titik nol atau titik awal. NaOH yang ada pada

gelas beker di ambil kemudian NaOH tersebut di larutkan dengan menggunakan

CaCl. NaOH yang telah di larutkan menggunakan CaCl kemudian di cuci dengan

air Aquades yang berfungsi untuk memisahkan endapan dari kertas saring.

Pemberian air Aquades yaitu sebanyak 100ml. Langkah selanjutnya yaitu

pemberian indikator PP dengan cara meneteskan 2 tetes saja. Pemberian indikator

PP akan memberikan perubahan warna berupa warna pink. Langkah terakhir yaitu

titrasi. Titrasi dilakukan dengan menggunakan larutan HCl dengan volume awal

yang mana volume tersebut telah ditentukan terlebih dahulu. NaOH yang di titrasi

yaitu di tetesi menggunakan larutan HCl sampai berubah warna menjadi warna

bening. Proses untuk mengetahi vulume O2 dan volume CO2 talah dilalui sehingga

hita bisa mengetahui hasil volume tersebut.

10

Gambar 1.1 Grafik Volume O2 dan CO2

Data hasil pengamatan di atas dapat terlihat dengan jelas, perlakuan yang

membutuhkan volume O2 terbanyak yaitu pada kecambah 48 jam. Faktor yang

mempengaruhinya yaitu meningkatnya laju respirasi. Konsentrasi oksigen akan

menurun apabila respirasi yang terjadi mengalami peningkatan. Laju respirasi

dapat menyebabkan meningkatnya konsumsi oksigen dan peningkatan hasil CO2.

Peningkatan suhu merupakan salah satu penyebab terjadinya konsumsi oksigen.

Grafik data pada gambar diatas menunjukkan bahwa volume O2 dan

volume CO2 yang dibutuhkan terjadi pada perlakuan 24 jam. Volume O2 yang

paling sedikit dibutuhkan terjadi pada perlakuan 24 jam. Volume CO2 yang dapat

menghasilkan paling banyak yaitu terjadi pada perlakuan imbibisi. Suhu

merupakan salah satu faktor yang mempengaruhi proses respirasi.

Imbibisi ialah peristiwa berpindahnya molekul iar ke suatu zat yang

memiliki pori besar dan molekul tersebut menetap dalam zat tersebut. Imbibisi

bisa berlangsung dengan baik jika memiliki daya ikat yang kuat antara penyerap

air dan air dari lingkungan. Perlakuan imbibisi pada biji kacang hijau memiliki

daya konsumsi lebih tinggi daripada daya produksi, karena biji kacang hijau telah

di imbibisi terlebih dahulu (Puspitaningrum, 2012).

11

BAB 5. KESIMPULAN DAN SARAN

5.1 Kesimpulan

1. Perlakuan konsumsi O2 pada kacang hijau yang diimbibisi mendapat hasil data

sebanyak 1,47 mm3, pada perlakuan kecambah selama 24 jam menyerap

oksigen sebanyak 0,65 mm3 dan 2,72 mm

3 didapat dengan perlakuan selama

48 jam. Kondisi diatas dapat disimpulkan bahwa kacang hijau yang telah

tumbuh selama 48 jam memerlukan adanya oksigen yang lebih banyak dari

pada kacang hijau dengan perlakukaan selama 24 jam dan pelakuan imbibisi.

2. Perlakuan pada kacang hijau yang diimbibisi menghasilkan volume CO2 yang

banyak yakni 5,94 mm3, apabila dibandingkan dengan perlakuan kacang hijau

selama 24 jam 1,55 mm3 dan pada perlakuan selama 48 jam 2,56 mm

3. Faktor

luar meyebabkan data yang diperoleh dalam hasil CO2 pada beberapa

perlakuan kacang hijau menjadi kurang maksimal.

3. KR (Kuosien Respirasi) yang diperoleh pada perlakuan imbibisi adalah 4,04

mm3.

5.2 Saran

Praktikum yang telah dilakukan berlangsung secara baik dan sesuai

prosedur yang ada , akan tetapi praktikum sendiri memiliki kelebihan waktu yang

tidak sesuai dengan yang ada pada prosedur. Akan lebih baik apabila manejemen

waktu dapat diperhatikan sehhingga praktikum mampu berjalan tepat waktu sesuai

dengan yang ditentukan.

12

DAFTAR PUSTAKA

Gandin, A., N. K. Koteyeva, E. V. Voznesenskaya, G. E. Edward, and A. B.

Cousins. 2014. The Acclimation of Photosynthesis and Respiration to

Temperature in the C3-C4 Intermediate Salsola divaricata: Induction of

High Respiratory CO2 Release under Low Temperature. Plant, Cell and

Environment, 37(1):2601-2612.

Nelistya, N. 2009. Mengenal Bagian-Bagian Tumbuhan. Jakarta: Penebar

Swadaya.

Novita, M., Satriana, Martunis, S. Rohaya, dan E. Hasmarita. 2012. Pengaruh

Pelapisan Kitosan terhadap Sifat Fisik dan Kimia Tomat Segar

(Lycopersicum pyriforme) pada berbagai Tingkat Kematangan. Teknologi

dan Industri Pertanian Indonesia, 4(3):1-8.

Pavlick, R., D. T. Drewry, K. Bohn, B. Reu, and Kleidon. 2013. The Jena

Diversity-Dynamic Global Vegetation Model (JeDi-DGVM): a diverse

approach to representing terrestrial biogeography and biogeochemistry

based on plant functional trade-offs. Biogeosciences, 10(1): 4137-4177.

Puspitaningrum, M., M. Izzati, dan S. Haryanti. 2012. Produksi Dan Konsumsi

Oksigen Terlarut Oleh Beberapa Tumbuhan Air. Buletin Anatomi dan

Fisiologi, 20(1): 47-55.

Rahmata, H. dan Liliasari. 2012. Pengetahuan Awal Calon Guru Biologi tentang

Konsep Katabolisme Karbohidrat (Respirasi Seluler). Pendidikan IPA

Indonesia, 1(1): 91-97.

Rohmah, E. A. dan T. B Saputro. 2016. Analisis Pertumbuhan Tanaman Kedelai

(Glycine max L.) Varietas Grobogan pada Kondisi Cekaman Genangan.

Sains dan Seni ITS, 5(2):2337-3520.

Vanlerberghe, G. C. 2013. Alternative Oxidase: A Mitocondrial Respiratory

Parthway to Maintain Metabolic and Signaling Homeostasis during

Abiotic and Biotic Stress in Plants. Molecular Sciences, 14(1): 6805-

6847.

13

LAMPIRAN

Gambar 1. Kecambah Imbibisi

Gambar 2. Pengambilan 15 butir kecambah kacang hijau

14

Gambar 3. Proses peletakkan 1 butir NaOH

Gambar 4. Pemberian tinta tepat pada garis 0 (nol) selama 2 menit

15

Gambar 5. Pengambilan larutan NaOH

Gambar 6. Penuangan Aquadest sebanyak 20 ml dan 2,5 ml CaCl2 pada

larutan NaOH

16

Gambar 7. Proses pencampuran larutan CaCl2 pada larutan NaOH

Gambar 8. Proses penyaringan larutan CaCl3

17

Gambar 9. Proses pengendapan pada kertas filter

Gambar 10. Pencucian menggunakan aquadest 100 ml

18

Gambar 11. Pemberian tetesan Indikator PP

Gambar 12. Perubahan warna oleh Indikator PP

19

Gambar 13. Titrasi pada larutan HCl

Gambar 14. Perubahan warna oleh larutan HCl

20

Gambar 15. ACC Flowchart Acara 2

Gambar 16. ACC Flowchart Acara 2

21

Gambar 15. ACC Flowchart Acara 2

Gambar 16. Tabel ACC Lembar Kerja

22

Gambar 17. Tabel ACC Lembar Kerja

Gambar 18. Tabel ACC Lembar Kerja

23

LITERATUR

Nelistya, N. 2009. Mengenal Bagian-Bagian Tumbuhan. Jakarta: Penebar

Swadaya.

24

Rahmata, H. dan Liliasari. 2012. Pengetahuan Awal Calon Guru Biologi tentang

Konsep Katabolisme Karbohidrat (Respirasi Seluler). Pendidikan IPA

Indonesia, 1(1): 91-97.

25

Novita, M., Satriana, Martunis, S. Rohaya, dan E. Hasmarita. 2012. Pengaruh

Pelapisan Kitosan terhadap Sifat Fisik dan Kimia Tomat Segar

(Lycopersicum pyriforme) pada berbagai Tingkat Kematangan. Teknologi

dan Industri Pertanian Indonesia, 4(3):1-8.

26

Pavlick, R., D. T. Drewry, K. Bohn, B. Reu, and Kleidon. 2013. The Jena

Diversity-Dynamic Global Vegetation Model (JeDi-DGVM): a diverse

approach to representing terrestrial biogeography and biogeochemistry

based on plant functional trade-offs. Biogeosciences, 10(1): 4137-4177.

27

Vanlerberghe, G. C. 2013. Alternative Oxidase: A Mitocondrial Respiratory

Parthway to Maintain Metabolic and Signaling Homeostasis during Abiotic

and Biotic Stress in Plants. Molecular Sciences, 14(1): 6805-6847.

28

.

Rohmah, E. A. dan T. B Saputro. 2016. Analisis Pertumbuhan Tanaman Kedelai

(Glycine max L.) Varietas Grobogan pada Kondisi Cekaman Genangan.

Sains dan Seni ITS, 5(2):2337-3520.

29

Gandin, A., N. K. Koteyeva, E. V. Voznesenskaya, G. E. Edward, and A. B.

Cousins. 2014. The Acclimation of Photosynthesis and Respiration to

Temperature in the C3-C4 Intermediate Salsola divaricata: Induction of

High Respiratory CO2 Release under Low Temperature. Plant, Cell and

Environment, 37(1):2601-2612.